Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Triptolide tăng cường hiệu quả của RNA can thiệp 5-lipoxygenase trong việc ức chế sự phát triển khối u tuyến tụy trong mô hình chuột xenograft
Tóm tắt
Ung thư tuyến tụy có tỷ lệ tử vong cao nhất trong tất cả các loại ung thư, vì vậy cần có những chiến lược hoặc tác nhân mới để đối phó với căn bệnh này. Triptolide (TL) có khả năng ức chế mạnh mẽ sự phát triển của các tế bào khối u tuyến tụy trong môi trường nuôi cấy in vitro. Mặt khác, việc ức chế con đường 5-LOX có thể hữu ích trong điều trị ung thư tuyến tụy. Trong nghiên cứu hiện tại, chúng tôi đã thử nghiệm tác dụng của can thiệp RNA 5-LOX và TL, riêng lẻ hoặc kết hợp, trong việc ức chế sự phát triển của khối u tuyến tụy người trong mô hình chuột xenograft. Các vector RNA tóc ngắn 5-LOX (shRNA) đã được phát triển và sàng lọc để đánh giá hiệu quả của chúng trên dòng tế bào ung thư tuyến tụy người SW1990 in vitro. Các tác động chống khối u của chúng cũng được đánh giá bằng cách đo sự tăng sinh và apoptosis của tế bào. Một shRNA 5-LOX hiệu quả đã được sử dụng đơn lẻ hoặc kết hợp với TL để điều trị khối u xenograft tuyến tụy. Mức độ biểu hiện của 5-LOX và VEGF được đo bằng phương pháp Western blotting và nhuộm miễn dịch. Việc knockdown gene 5-LOX đã ức chế sự phát triển của tế bào ung thư in vitro và việc đưa shRNA 5-LOX vào trong khối u đã ức chế sự phát triển của khối u cấy ghép in vivo. Điều trị bằng TL đã gây ra sự ức chế khối u và nâng cao đáng kể tác dụng chống khối u của shRNA 5-LOX trong mô hình chuột. Can thiệp RNA 5-LOX hoặc điều trị bằng TL đều làm giảm biểu hiện VEGF trong mô hình mô khối u, và việc điều trị kết hợp càng làm giảm biểu hiện này hơn. Cả hai phương pháp điều trị đều có tác dụng chống khối u in vivo, và việc sử dụng kết hợp hai phương pháp này mang lại hiệu quả cao hơn. Hiệu ứng cộng sinh của điều trị kết hợp trong biểu hiện VEGF có thể góp phần vào cơ chế của những hiệu ứng chống khối u mạnh mẽ này.
Từ khóa
#ung thư tuyến tụy #Triptolide #5-lipoxygenase #RNA can thiệp #mô hình chuột xenograftTài liệu tham khảo
Hidalgo M (2010) Pancreatic cancer. N Engl J Med 362:1605–1617
Jemal A, Siegel R, Xu J, Ward E (2010) Cancer statistics, 2010. CA Cancer J Clin 60:277–300
Maitra A, Hruban RH (2008) Pancreatic cancer. Annu Rev Pathol 3:157–188
Wong HH, Lemoine NR (2009) Pancreatic cancer: molecular pathogenesis and new therapeutic targets. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 6:412–422
Zhou GX, Ding XL, Huang JF, Zhang H, Wu SB, Cheng JP, Wei Q (2008) Apoptosis of human pancreatic cancer cells induced by triptolide. World J Gastroenterol 14:1504–1509
Zhou ZL, Luo ZG, Yu B, Jiang Y, Chen Y, Feng JM, Dai M, Tong LJ, Li Z, Li YC, Ding J, Miao ZH (2010) Increased accumulation of hypoxia-inducible factor-1alpha with reduced transcriptional activity mediates the antitumor effect of triptolide. Mol Cancer 9:268
Mujumdar N, Mackenzie TN, Dudeja V, Chugh R, Antonoff MB, Borja-Cacho D, Sangwan V, Dawra R, Vickers SM, Saluja AK (2010) Triptolide induces cell death in pancreatic cancer cells by apoptotic and autophagic pathways. Gastroenterology 139:598–608
Yang S, Chen J, Guo Z, Xu XM, Wang L, Pei XF, Yang J, Underhill CB, Zhang L (2003) Triptolide inhibits the growth and metastasis of solid tumors. Mol Cancer Ther 2:65–72
Carter BZ, Mak DH, Schober WD, Dietrich MF, Pinilla C, Vassilev LT, Reed JC, Andreeff M (2008) Triptolide sensitizes AML cells to TRAIL-induced apoptosis via decrease of XIAP and p53-mediated increase of DR5. Blood 111:3742–3750
Chang WT, Kang JJ, Lee KY, Wei K, Anderson E, Gotmare S, Ross JA, Rosen GD (2001) Triptolide and chemotherapy cooperate in tumor cell apoptosis. A role for the p53 pathway. J Biol Chem 276:2221–2227
Comba A, Pasqualini ME (2009) Primers on molecular pathways—lipoxygenases: their role as an oncogenic pathway in pancreatic cancer. Pancreatology 9:724–728
Tong WG, Ding XZ, Talamonti MS, Bell RH, Adrian TE (2007) Leukotriene B4 receptor antagonist LY293111 induces S-phase cell cycle arrest and apoptosis in human pancreatic cancer cells. Anticancer Drugs 18:535–541
Pidgeon GP, Lysaght J, Krishnamoorthy S, Reynolds JV, O’Byrne K, Nie D, Honn KV (2007) Lipoxygenase metabolism: roles in tumor progression and survival. Cancer Metast Rev 26:503–524
Hennig R, Ding XZ, Tong WG, Schneider MB, Standop J, Friess H, Buchler MW, Pour PM, Adrian TE (2002) 5-Lipoxygenase and leukotriene B(4) receptor are expressed in human pancreatic cancers but not in pancreatic ducts in normal tissue. Am J Pathol 161:421–428
Hennig R, Grippo P, Ding XZ, Rao SM, Buchler MW, Friess H, Talamonti MS, Bell RH, Adrian TE (2005) 5-Lipoxygenase, a marker for early pancreatic intraepithelial neoplastic lesions. Cancer Res 65:6011–6016
Mao YP, Tao XL, Lipsky PE (2000) Analysis of the stability and degradation products of triptolide. J Pharm Pharmacol 52:3–12
Riccardi C, Nicoletti I (2006) Analysis of apoptosis by propidium iodide staining and flow cytometry. Nat Protoc 1:1458–1461
Cuendet M, Pezzuto JM (2000) The role of cyclooxygenase and lipoxygenase in cancer chemoprevention. Drug Metabol Drug Interact 17:109–157
Tucker ON, Dannenberg AJ, Yang EK, Zhang F, Teng L, Daly JM, Soslow RA, Masferrer JL, Woerner BM, Koki AT, Fahey TJ 3rd (1999) Cyclooxygenase-2 expression is up-regulated in human pancreatic cancer. Cancer Res 59:987–990
Grosch S, Tegeder I, Niederberger E, Brautigam L, Geisslinger G (2001) COX-2 independent induction of cell cycle arrest and apoptosis in colon cancer cells by the selective COX-2 inhibitor celecoxib. FASEB J 15:2742–2744
Patel MI, Subbaramaiah K, Du B, Chang M, Yang P, Newman RA, Cordon-Cardo C, Thaler HT, Dannenberg AJ (2005) Celecoxib inhibits prostate cancer growth: evidence of a cyclooxygenase-2-independent mechanism. Clin Cancer Res 11:1999–2007
Dhawan D, Jeffreys AB, Zheng R, Stewart JC, Knapp DW (2008) Cyclooxygenase-2 dependent and independent antitumor effects induced by celecoxib in urinary bladder cancer cells. Mol Cancer Ther 7:897–904
Jimeno A, Amador ML, Kulesza P, Wang X, Rubio-Viqueira B, Zhang X, Chan A, Wheelhouse J, Kuramochi H, Tanaka K, Danenberg K, Messersmith WA, Almuete V, Hruban RH, Maitra A, Yeo CJ, Hidalgo M (2006) Assessment of celecoxib pharmacodynamics in pancreatic cancer. Mol Cancer Ther 5:3240–3247
Melstrom LG, Bentrem DJ, Salabat MR, Kennedy TJ, Ding XZ, Strouch M, Rao SM, Witt RC, Ternent CA, Talamonti MS, Bell RH, Adrian TA (2008) Overexpression of 5-lipoxygenase in colon polyps and cancer and the effect of 5-LOX inhibitors in vitro and in a murine model. Clin Cancer Res 14:6525–6530
Matsuyama M, Yoshimura R, Mitsuhashi M, Tsuchida K, Takemoto Y, Kawahito Y, Sano H, Nakatani T (2005) 5-Lipoxygenase inhibitors attenuate growth of human renal cell carcinoma and induce apoptosis through arachidonic acid pathway. Oncol Rep 14:73–79
Yoshimura R, Matsuyama M, Tsuchida K, Kawahito Y, Sano H, Nakatani T (2003) Expression of lipoxygenase in human bladder carcinoma and growth inhibition by its inhibitors. J Urol 170:1994–1999
Furstenberger G, Krieg P, Muller-Decker K, Habenicht AJ (2006) What are cyclooxygenases and lipoxygenases doing in the driver’s seat of carcinogenesis? Int J Cancer 119:2247–2254
Fischer AS, Metzner J, Steinbrink SD, Ulrich S, Angioni C, Geisslinger G, Steinhilber D, Maier TJ (2010) 5-Lipoxygenase inhibitors induce potent anti-proliferative and cytotoxic effects in human tumour cells independently of suppression of 5-lipoxygenase activity. Br J Pharmacol 161:936–949
Page P, Yang LX (2010) Novel chemoradiosensitizers for cancer therapy. Anticancer Res 30:3675–3682
Lev-Ari S, Strier L, Kazanov D, Madar-Shapiro L, Dvory-Sobol H, Pinchuk I, Marian B, Lichtenberg D, Arber N (2005) Celecoxib and curcumin synergistically inhibit the growth of colorectal cancer cells. Clin Cancer Res 11:6738–6744
Wang W, Yang S, Su Y, Xiao Z, Wang C, Li X, Lin L, Fenton BM, Paoni SF, Ding I, Keng P, Okunieff P, Zhang L (2007) Enhanced antitumor effect of combined triptolide and ionizing radiation. Clin Cancer Res 13:4891–4899
Fidler JM, Li K, Chung C, Wei K, Ross JA, Gao M, Rosen GD (2003) PG490–88, a derivative of triptolide, causes tumor regression and sensitizes tumors to chemotherapy. Mol Cancer Ther 2:855–862
Zhou GX, Ding XL, Huang JF, Zhang H, Wu SB (2007) Suppression of 5-lipoxygenase gene is involved in triptolide-induced apoptosis in pancreatic tumor cell lines. Biochim Biophys Acta 1770:1021–1027
He MF, Huang YH, Wu LW, Ge W, Shaw PC, But PP (2010) Triptolide functions as a potent angiogenesis inhibitor. Int J Cancer 126:266–278
Shamon LA, Pezzuto JM, Graves JM, Mehta RR, Wangcharoentrakul S, Sangsuwan R, Chaichana S, Tuchinda P, Cleason P, Reutrakul V (1997) Evaluation of the mutagenic, cytotoxic, and antitumor potential of triptolide, a highly oxygenated diterpene isolated from Tripterygium wilfordii. Cancer Lett 112:113–117
Kitzen JJ, de Jonge MJ, Lamers CH, Eskens FA, van der Biessen D, van Doorn L, Ter Steeg J, Brandely M, Puozzo C, Verweij J (2009) Phase I dose-escalation study of F60008, a novel apoptosis inducer, in patients with advanced solid tumours. Eur J Cancer 45:1764–1772
Tiemann K, Rossi JJ (2009) RNAi-based therapeutics-current status, challenges and prospects. EMBO Mol Med 1:142–151
Aagaard L, Rossi JJ (2007) RNAi therapeutics: principles, prospects and challenges. Adv Drug Deliv Rev 59:75–86
Kim DH, Rossi JJ (2007) Strategies for silencing human disease using RNA interference. Nat Rev Genet 8:173–184
De Vincenzo J, Lambkin-Williams R, Wilkinson T, Cehelsky J, Nochur S, Walsh E, Meyers R, Gollob J, Vaishnaw A (2010) A randomized, double-blind, placebo-controlled study of an RNAi-based therapy directed against respiratory syncytial virus. Proc Natl Acad Sci USA 107:8800–8805
Hickerson RP, Leachman SA, Pho LN, Gonzalez–Gonzalez E, Smith FJ, McLean WH, Contag CH, Leake D, Milstone LM, Kaspar RL (2011) Development of quantitative molecular clinical end points for siRNA clinical trials. J Invest Dermatol 131:1029–1036