Độc tố của vi khuẩn lam
Tóm tắt
Vi khuẩn lam được tìm thấy trong hồ, ao, sông và vùng nước lợ trên toàn thế giới. Trong trường hợp phát triển quá mức như hình thành tảo nở, những vi khuẩn này có thể sản xuất độc tố tự nhiên với số lượng gây độc cho động vật có vú, bao gồm cả con người. Các cyanotoxin này bao gồm peptide vòng và alcaloid. Trong số các peptide vòng có microcystins và nodularins. Các alcaloid bao gồm anatoxin-a, anatoxin-a(S), cylindrospermopsin, saxitoxin (STXs), aplysiatoxins và lyngbyatoxin. Cả phương pháp sinh học và hóa học đều được sử dụng để xác định cyanotoxin. Các thử nghiệm sinh học và thử nghiệm hóa sinh là không đặc hiệu, do đó chỉ có thể được sử dụng như là phương pháp sàng lọc. HPLC có một số triển vọng tốt. Để phát hiện những độc tố này, có thể sử dụng các thiết bị phát hiện khác nhau, từ quang phổ UV đơn giản tới phát hiện huỳnh quang và nhiều loại MS khác nhau. Vấn đề lớn nhất trong việc xác định độc tố vi khuẩn lam là sự thiếu hụt tài liệu tham khảo cho tất cả các độc tố liên quan. Nói chung, dữ liệu độc tính về cyanotoxin khá hiếm. Phần lớn dữ liệu độc tính được biết đến là của microcystin-LR. Đối với nodularins, dữ liệu từ một vài nghiên cứu trên động vật có sẵn. Đối với các alcaloid, dữ liệu độc tính giới hạn tồn tại cho anatoxin-a, cylindrospermopsin và STX. Đánh giá rủi ro cho việc tiếp xúc cấp tính có thể liên quan đến một số loại tiếp xúc. Tuy nhiên, chưa có liều tham khảo cấp tính nào được phát deriv chính thức cho đến nay. Đối với STX(s), nhiều quốc gia đã thiết lập các mức độ tolérance trong động vật hai mảnh vỏ, nhưng các giới hạn này được đặt ra với quan điểm STX(s) như là biotoxins, tích lũy trong hải sản. Các quy định chính thức cho các cyanotoxin khác chưa được thiết lập, mặc dù một số giá trị hướng dẫn (tạm thời) đã được đưa ra cho microcystins trong nước uống bởi WHO và một số quốc gia.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Tyagi M. B., 1999, Cyanobacterial toxins, the current status, J. Microbiol. Biotechnol., 9, 9
Chorus I. Bartram J.(Eds.) Toxic Cyanobacteria in WaterA Guide to Their Public Health Consequences Monitoring and Management Published by WHO Spon Press London 1999.
Duy T. N., 2000, Toxicology and risk assessment of freshwater cyanobacterial (blue‐green algal) toxins in water, Rev. Environ. Contam. Toxicol., 163, 113
Pitois S., 2001, Sources of the eutrophication problems associated with toxic algae, an overview, J. Environ. Health, 64, 25
Hitzfeld B. C., 2000, Cyanobacterial toxins, removal during drinking water treatment, and human risk assessment, Environ. Health Perspect, 108, 113
Nicholson B. C. Burch M. D. Evaluation of analytical methods for detection and quantification of cyanotoxins in relation to Australian drinking water guidelines A report prepared for the National Health and Medical Research Council of Australia the Water Services Association of Australia and the Cooperative Research Centre for Water Quality and Treatment October 2001 ISBN (print) 1864960949.
Meriluoto J. Codd G. A. TOXIC Cyanobacterial Monitoring and Cyanotoxin Analysis 2005 65 ISBN 951‐765‐259‐3.
Gago‐Martinez A. Pineiro N. Aguete E. Vaquero E.et al. Immunoaffinity chromatography a promising technique for the sample pre‐treatment of algal toxins from microcystins to domoic acid 119th AOAC Annual Meeting & Exposition Final Program2005 S‐512 72–72.
WHO Toxic Cyanobacteria in Water A Guide to Their Public Health Consequences Monitoring and Management1999.
Lawrence J. F., 2001, Comparison of liquid chromatography/mass spectrometry, ELISA, and phosphatase assay for the determination of microcystins in blue‐green algae products, J. AOAC Int., 84, 1035, 10.1093/jaoac/84.4.1035
Lee T. H., 1999, Toxicity assay of cyanobacterial strains using Artemia salina in comparison with the mouse bioassay, Acta Zool. Taiwanica, 10, 1
Anonymous 2002 Cyanobacterial Toxins – Microcystin‐LR Guidelines for Canadian Drinking Water Quality Supporting Documentation Otober 1999 Updated April 2002 (edited May 2002).
Rao P. V. L., 2002, Toxins and bioactive compounds from cyanobacteria and their implications on human health, J. Environ. Biol., 23, 215
WHO Guidelines for Drinking‐Water Quality 1998 2nd Edn Addendum to Volume 2 Health criteria and other supporting information Geneva 1998 pp. 94–110.
Milutinovic A., 2002, Renal injuries induced by chronic intoxication with microcystins, Cell. Mol. Biol. Lett., 7, 139
Suzuki H., 1998, Mutagenicity of microcystin‐LR in human RSa cells, Int. J. Mol. Med., 2, 109
Weiß J., 2000, Influence of microcystin‐RR on growth and photosynthetic capacity of the duckweed Lemna minor L., J. Appl. Bot., 74, 100
Wolfstein K. Wildlife research in the Netherlands. 3.2. Ecological effects of cyanobacterial toxins DWHC Newsletter Vol. 2 October 2003 p. 4.
Codd G. A., 2003, Susceptibility of flamingos to cyanobacterial toxins via feeding, Vet. Record, 7, 722
Health Canada Guidelines for Canadian Drinking Water Quality supporting Documentation C Cyanabacterial Toxins‐Microcystin‐LR Water Quality and Health Bureau Healthy Environments and Consumer Safety Branch Health Canada 2002 Ottawa Ontario.
Flury T. Heinze R. Wirsing B. Fastner J.et al. Comparative evaluation of methods for assessing microcystin concentrations with a variety of field samples Cyanotoxins occurrence causes consequences 2001 330–339. ISBN 3540649999.
Metcalf J., 2002, Cross‐reactivity and performance assessment of four microcystin immunoassays with detoxication products of the cyanobacterial toxin, microcystin‐LR, J. Water Supply Res. Technol. Aqua, 51, 145, 10.2166/aqua.2002.0012
Mazur H., 2003, Nodularia spumigena blooms and the occurrence of hepatotoxin in the Gulf of Gdansk, Oceanologia, 45, 305
Lehtimäki J. Characterisation of cyanobacterial strains originating from the Baltic Sea with emphasis onNodulariaand its toxin nodularin Academic Dissertation University of Helsinki Faculty of Agriculture and Forestry September 2000.
Haugen J., 1994, Rapid analysis of cyanophyte neurotoxins, an improved method for quantitative analysis of anatoxin‐a and homoanatoxin‐a in the sub‐ppb to ppb range, Algological, 75, 111
Jefferies M., 1994, Determination of anatoxin‐a, homoanatoxin and propylanatoxin in cyanobacterial extracts by HPLC, GC‐mass spectrometry and capillary electrophoresis, Dummy magazine, 149, 34
Shaw G. R. Seawright A. A. Moore M. R. Toxicology and human health implications of the cyanobacterial toxin cylindrospermopsin in: De Koe W. J. Samson R. A. Van Egmond H. P. Gilbert J. Sabino M. (Eds.) Mycotoxins and Phycotoxins in Perspective at the Turn of the Millennium Proceedings of the Xth International IUPAC Symposium on Mycotoxins and Phycotoxins 21–25 May 2000 Guarujá (Brazil) Wageningen The Netherlands Ponsen & Looyen pp. 435–443.
USEPA Creating a Cyanotoxin Target List for the Unregulated Contaminant Monitoring Rule USEPA Technical Service Center Cincinnati Ohio USA Meeting Summary May 17–18 2001.
Lawrence J., 1995, Evaluation of prechromatographic oxidation for liquid chromatographic determination of paralytic shellfish poisons in shellfish, J. AOAC Int., 78, 514, 10.1093/jaoac/78.2.514
Oshima Y., 1995, Postcolumn derivatisation liquid chromatographic method for paralytic shellfish toxins, J. AOAC Int., 78, 528, 10.1093/jaoac/78.2.528
Lehane L. Paralytic Shellfish Poisoning A Review National Office of Animal and Plant Health Agriculture Fisheries and Forestry Canberra Australia 2000.
Sasner J. J. Ikawa M. Foxall T. L. Studies onAphanizomenonandMicrocystistoxins in: Ragelis E. P. (Ed.) Seafood Toxin ACS publications Washington DC 1984 pp. 391–406.
Aune T. Risk assessment of toxins associated with DSP PSP and ASP in seafood in: De Koe W. J.et al.(Eds.) Mycotoxins and Phycotoxins in Perspective at the Turn of the Millennium Proceedings of the Xth International IUPAC symposium on Mycotoxins and Phycotoxins – 21–25 May 2000 Guarujá (Brazil) Wageningen the Netherlands 2001 Ponsen & Looyen pp. 515–526.