Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Điện tâm đồ bình thường ở cừu non trong giai đoạn sơ sinh và sự tiến triển của nó
Tóm tắt
Chuyên ngành tim mạch thú y, đặc biệt là điện tâm đồ, đã có những tiến bộ lớn cho tất cả các loài động vật. Do đó, số lượng loài cừu được sử dụng làm động vật thí nghiệm đã tăng lên đến nay. Một số ít nghiên cứu đã được công bố về điện tâm đồ hệ thống ở cừu, đặc biệt liên quan đến sinh lý và sơ sinh của cừu non. Nghiên cứu này nhằm tiêu chuẩn hóa các giá trị của sóng, phức hợp và khoảng thời gian bình thường của điện tâm đồ (ECG) ở cừu non Bergamasca khỏe mạnh về mặt lâm sàng, được sử dụng làm động vật thí nghiệm. Điện tâm đồ được thực hiện bằng máy tính tuần tự trên 10 cừu non đực và 12 cừu non cái vào ngày 1, 7, 14, 21, 28 và 35 sau sinh. Các thông số sau đây được phân tích: nhịp tim và nhịp, thời gian và biên độ của sóng, thời gian của các khoảng và trục điện tim. Trong 35 ngày đầu đời, (1) nhịp tim xoang chiếm ưu thế, (2) có sự giảm dần nhịp tim và biên độ sóng R và T, và (3) sự gia tăng dần dần của các khoảng PR, QT và RR. Cuối cùng, chúng tôi xác nhận rằng các thành phần khác nhau của sự tiến triển sơ sinh được nhận thấy rõ hơn ở các điện cực đơn cực tăng cường (aVF), mà chúng tôi khuyến nghị nên được sử dụng ưu tiên trong các nghiên cứu trong tương lai. Không có sự thay đổi thống kê có ý nghĩa nào được quan sát thấy giữa các con đực và con cái liên quan đến các thông số đã phân tích. Thông tin được tiếp nhận trong nghiên cứu này dự kiến sẽ cải thiện chẩn đoán nhiều khiếm khuyết tim bẩm sinh ở cừu non Bergamasca và có thể được áp dụng trong các nghiên cứu sử dụng loài cừu như là mô hình thí nghiệm.
Từ khóa
#tim mạch thú y #điện tâm đồ #cừu non #sinh lý #sơ sinh #nhịp tim #khoảng thời gian khí quảnTài liệu tham khảo
Amer-Wahlin I, Ingemarsson I, Marsal K, Herbst A. Fetal heart rate patterns and ECG ST segment changes preceding metabolic acidaemia at birth. Inter J Obst Gynaecol. 2005;112:160–5.
Brazilian Society of Cardiology. Diretrizes de Interpretação do eletrocardiograma de Repouso. Arq Bras Cardiol. 2003;80(Suppl3):1–18.
Davignon A, Rautaharju P, Barselle E. Normal ECG standards for infants and children. Pediatr Cardiol. 1979;1:123–34.
Abreu DC, Feldman J, Deccache W, Goldwasser GP. Elementos significativos do eletrocardiograma nos recém-natos e na primeira infância: suas utilidades clínicas. Revista da SOCERJ. 2004;17(4):257–61.
Yiallourou SR, Sands SA, Walker AM, Horne R. Maturation of heart rate and blood pressure variability during sleep in term-born infants. Sleep. 2012;35:177–86.
Yiallourou SR, Witcombe NB, Sands SA, Walker AM, Horne SC. The development of autonomic cardiovascular control is altered by preterm birth. Early Hum Dev. 2013;89:145–52.
Pladys P, Arsenault J, Reix P, Lafond JR, Moreau-Bussière F, Praud JP. Influence of prematurity on postnatal maturation of heart rate and arterial pressure responses to hypoxia in lambs. Neonatol. 2008;93:197–05.
Cook CD, Drinker PA, Jacobson HN, Levison H, Strang LB. Control of pulmonary blood flow in the foetal and newly born lamb. J Physiol. 1963;169:10–29.
Dawes GS, Mott JC, Widdicombe JG. The patency of the ductus arteriosus in newborn lambs and its physiological consequences. J Physiol. 1955;128:361–7.
Tovar P, Santisteban R, Porras A, Castejon FM. Electrocardiographic analysis of auricular electric systole in the sheep. Rev Esp Fisiol. 1985;41:317–24.
Schultz RA, Pretorius PJ, Terblanche M. An electrocardiographic study of normal sheep using a modified technique. Onderstepoort J Vet Res. 1972;39:97–106.
Schultz RA, Coetzer JA, Kellerman TS, Naudé TW. Observation on clinical, cardiac and histopathology effects of fluoroacetate in sheep. Onderstepoort J Vet Res. 1982;49:237–45.
Zugaib M, Forsythe AB, Nuwayhid B, Lieb SM, Tabsh K, Erkkola R. Mechanisms of beat-to-beat variability in the heart rate of the neonatal lamb. Influence of the autonomic nervous system. Am J Obstet Gynecol. 1980;138:444–52.
Patural H, St-Hilaire M, Pichot V, Beuchée A, Samson N, Piccione G. Physiological parameters in lamb during the first 30 days postpartum. Small Rum Res. 2007;72:57–60.
Beuchée A, Hernández AI, Duvareille C, Daniel D, Samson N, Pladys P. Influence of hypoxia and hypercapnia on sleep state dependent heart rate variability behavior in newborn lambs. Sleep. 2012;35(11):1541–9.
Sill B, Roy N, Hammer PE, Triedman JK, Sigg DC, Kelly Mark F. Development of an ovine model of pediatric complete heart block. J Surg Res. 2011;166:e103–8.
Liebman J. The normal electrocardiogram in the newborn and neonatal period and its progression. J Electrocardiol. 2010;43:524–9.
Resende JG, Zaconeta CAM, Ferreira ACP, Silva CAM, Rodrigues MP, Rebello CM. Avaliação do pico de pressão, do volume corrente e da frequência respiratória durante ventilação de carneiros prematuros utilizando balão auto-inflável. J Pediatr. 2006;82(4):279–83.
Heir CR, Hampton TG, Wang D, DiDonato CJ. Development of electrocardiogram intervals during growth of FVB/N neonate mice. BMC Physiol. 2010;10:1–10.
Greiveldinger L, Veissier I, Boissy A. Behavioural and physiological responses of lambs to controllable vs. uncontrollable aversive events. Psychoneuroendocrinology. 2009;34:805–14.
Montoya AJA, Ponce VJ. Normal cardiac rhythms in goats. MedVet. 1986;3:227–31.
Pourjafar M, Badiei K, Chalmeh AA, Sanati AR, Shahbazi A, Badkobeh M. Age-related cardiac arrhythmias in clinically healthy iranian najdi goats. Bulg J Vet Med. 2013;15:37–43.
Rezakhani A, Ejtehadi M. Some electrocardiographic parameters of the fat tailed sheep. Zen Bl Vet Med. 1980;27:152–6.
Mir SA, Nazki AR, Raina R. Comparative electrocardiographic studies and differing effects of pentazocine on ECG, heart and respiratory rates in young sheep and goats. Small Rum Res. 2000;37:13–7.
Torío R, Cano M, Montes A, Prieto F, Benedito JL. Comparison of two methods for electrocardiographic analysis in Gallega sheep. Small Rum Res. 1997;24:239–46.
Ker J, Webb EC, Ker JA, Bekker PA. Cardiac Memory T wave Frequency as an Electrocardiographic Surrogate for Structural Myocardial Alteration in the Hearts of Dorper Sheep. J Vet Res. 2003;70:299–05.
Piccione G, Borruso M, Fazio F, Giannetto C, Caola G. Physiological parameters in lambs during the first 30 days postpartum. Small Rum Res. 2007;72:57–60.
Lima CCV, Silva DFM, Costa JN, Costa Neto AO, Souza TS. Parâmetros fisiológicos de cordeiros mestiços (1/2 e ¾ Dorper) do nascimento aos 90 dias de idade. Rev Bras Saúde Prod Anim. 2010;11:354–61.
Grundy SA. Clinically relevant physiology of the neonate. Vet Clin North Am Small An Pract. 2006;36:443–59.
Ferrer MI. The evolution of the electrocardiogram in the developing heart. J Insur Med. 1985;1:1–5.
Selig FA, Tonolli ER, Silva EVCM, Godoy MF. Variabilidade da frequência cardíaca em neonatos prematuros e de termo. Arq Bras Cardiol. 2011;96(6):443–9.
Cunningham JG. Tratado de Fisiologia Veterinária. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan; 2008.
Duvareille C, Praud JP. Postnatal autonomic activity in the preterm lamb. Res Vet Sci. 2010;89:241–9.
Tanaka K, Zlochiver S, Vikstrom KL, Yamazaki M, Moreno J, Klos M, et al. Spatial distribution of fibrosis governs fibrillation wave dynamics in the posterior left atrium during heart failure. Circ Res. 2007;101(8):839–47.
Berenfeld O, Ennis S, Hwang E, Hooven B, Grzeda K, Mironov S, et al. Time- and frequency-domain analyses of atrial fibrillation activation rate: The optical mapping reference. Heart Rhythm. 2011;8(11):1758–65.
Butters TD, Aslanidi OV, Zhao J, Smaill B, Zhang H. A novel computational sheep atria model for the study of atrial fibrillation. Interface Focus. 2013;3(2):20120067.
Zhao J, Krueger MW, Seemann G, Meng S, Zhang H, Dössel O, et al. Myofiber orientation and electrical activation in human and sheep atrial models. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 2012;2012:6365–8.
Tilley LP. Essentials of canine and feline electrocardiography interpretation and treatment. Philadelphia: Lea & Febiger; 1992.
Ferasin L, Amodo A, Murray JL. Lack of correlation between canine heart rate and body size in veterinary clinical practice. J Small Anim Pract. 2010;51:412–8.
Noujaim SF, Lucca E, Munoz V, Persaud D, Berenfeld O, Meijler FL, et al. From mouse to whale: a universal scaling relation for the PR interval of the electrocardiogram of mammals. Circulation. 2004;110:2802–8.
Milnor W. Aortic wavelength as a eterminant of the relation between heart rate and body size in mammals. Ame J Physiol. 1979;237(1):R3–6.
Tovar P, Castejon FM, Santisteban R. Analísis de la sístole eléctrica ventricular de ovinos. I Fenómeno de despolarización. J Am Vet Med Assoc. 1986;33:365–72.
Tovar P, Castejon FM, Santisteban R. Analísis de la sístole eléctrica ventricular de ovinos. II Repolarización. J Am Vet Med Assoc. 1986;33:474–80.
Tovar P, Santisteban R. Effects of maturational changes upon the orientation of auricular vector in sheep. J Am Vet Med Assoc. 1987;34:13–7.
Tovar P, Santisteban R. Maturation effects on the activation and recuperation ventricular vectors from sheep. J Am Vet Med Assoc. 1987;34:18–24.
Keunen H, van Wijngaarden WJ, Sahota DS, Hasaart TH. The PR interval-fetal heart rate relationship during repetitive umbilical cord occlusions in immature fetal sheep. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2000;89:69–74.
Atmaca N, Simsek O, Emre B. Some electrocardiographic values of Angora goats. Ankara Oniv Vet Fak Derg. 2014;61:15–9.
Westgate JA, Wassink G, Bennet L, Gunn AJ. Spontaneous hypoxia in multiple pregnancies is associated with early fetal decompensation and enhanced T-wave elevation during brief repeated cord occlusion in near-term fetal sheep. Am J Obst Gynecol. 2005;193:1526–33.
El-Gamal A, Gallagher D, Nawras A, Gandhi P, Gomez J, Allison DV, et al. Effects of obesity on QT, RR and Qtc intervals. Am J Cardiol. 1995;75:956–9.
Aytemir K, Ozer N, Atalar E, Sade E, Aksöyek S, Ovünç K, et al. P-wave dispersion on 12-lead electrocardiography in patients with paroxysmal atrial fibrillation. Pacing Clin Electrophysiol. 2000;23:1109–12.
Dilaveris PE, Gialafos EJ, Sideris SK, Theopistou AM, Andrikopoulos GK, Kyriakidis M, et al. Simple electrocardiographic markers for the prediction of paroxysmal idiopathic atrial fibrillation. Am Heart J. 1998;135:733–8.
Bu’Lock FA, Mott MG, Martin RP. Left ventricular diastolic function in children measured by Doppler echocardiography: normal values and relation with growth. Br Heart J. 1995;73:334–9.
de Simone G, Daniels SR, Devereux RB, Meyer RA, Roman MJ, de Divitiis O, et al. Left ventricular mass and body size in normotensive children and adults: assessment of allometric relations and impact of overweight. J Am Coll Cardiol. 1992;20:1251–60.
Zhendong Y. Effects of age and respiration on right ventricular diastolic filling patterns in normal children. Pediatr Cardiol. 1998;19:218–20.
Maron BJ, Leyhe III MJ, Casey SA, Gohman TE, Lawler CM, Crow RS, et al. Assessment of QT dispersion as a prognostic marker for sudden death in a regional nonreferred hypertrophic cardiomyopathy cohort. Am J Cardiol. 2001;87:114–5.
Zaidi M, Robert A, Fesler R, Derwael C, Brohet C. Dispersion of ventricular repolarization in hypertrophic cardiomyopathy. J Electrocardiol. 1996;29:89–94.
Vialle E, Albalkhi R, Zimmerman M, Friedli B. Normal values of signal-averaged electrocardiographic parameters and QT dispersion in infants and children. Cardiol Young. 1999;9:556–61.
Akyuz A, Alpsoy S, Akkoyun DC, Nalbantoglu B, Ozdilek B, Donma MM. Does low birth weight affect P-wave and QT dispersion in childhood? Pacing Clin Electrophysiol. 2013;36(12):1481–7.
Nigro G, Russo V, Rago A, Papa AA, Cioppa ND, Di Meo F, et al. Heterogeneity of ventricular repolarization in newborns with severe aortic coarctation. Pediatr Cardiol. 2012;33(2):302–6.
Price GS, Frazier DL. Use of Body Surface Area (BSA)-Based Dosages to Calculate Chemotherapeutic Drug Dose in Dogs: I. Potential Problems with Current BSA Formulae. J Vet Intern Med. 1998;12:267–71.
Hill RC, Scott KC. Energy requirements and body surface area of cats and dogs. J Am Vet Med Assoc. 2004;225(5):689–94.
Kojouri GA, Rezakhani A, Ahmadi H. Arrhythmias in advance stiff lamb disease. Small Rum Res. 2009;84:65–9.
Van de Water A, Verheyeu J, Xhoneux R, Reneman R. An improved method to correct the QT interval of the electrocardiogram for changes in heart rate. J Pharmacol Methods. 1989;22:207–17.