Nội dung và hồ sơ của các hợp chất hoạt tính sinh học có mặt trong từng phần của hoa anh túc (Tropaeolum majus L.): nghiên cứu toàn diện

Lenka Česlová1, Jitka Klikarová1, Tereza Šalomounová1
1Department of Analytical Chemistry, Faculty of Chemical Technology, University of Pardubice, Pardubice, Czech Republic

Tóm tắt

Hoa anh túc (Tropaeolum majus L.) chứa nhiều hợp chất hoạt tính sinh học với những tác dụng rất hứa hẹn đối với sức khỏe con người. Chúng tôi đã chú ý đến glucotropaeolin và các hợp chất phenolic được xác định đồng thời trong các phần khác nhau của hoa anh túc bằng phương pháp sắc ký lỏng hiệu năng cao đảo ngược kết hợp với phổ khối lượng. Các đồng phân chính của axit hydroxycinnamic và các dẫn xuất axit quinic, kaempferol, và quercetin đã được phát hiện. Hơn nữa, nhiều hợp chất thuộc nhóm này lần đầu tiên được xác định. Tỷ lệ của chúng thay đổi đáng kể tùy theo phần của hoa anh túc (hoa, thân, hạt và lá). Mặc dù nồng độ tổng hợp hợp chất mục tiêu cao nhất được tìm thấy trong lá, tất cả các hợp chất được giám sát đều có mặt trong hoa với nồng độ cao hơn giới hạn định lượng của chúng. Hơn nữa, tác động của việc xử lý mẫu (sấy khô và đông lạnh) đối với hàm lượng của chúng đã được điều tra. Thật bất ngờ, các mẫu đông lạnh cho thấy sự giảm đáng kể hàm lượng glucotropaeolin. Cuối cùng, khả năng chống oxi hóa, tổng hàm lượng phenolic và tổng hàm lượng anthocyanin đã được xác định bằng các kỹ thuật quang phổ và kết quả đã được so sánh với dữ liệu sắc ký.

Từ khóa

#hoa anh túc #Tropaeolum majus L. #glucotropaeolin #hợp chất phenolic #sắc ký lỏng hiệu năng cao #khả năng chống oxi hóa.

Tài liệu tham khảo

Bazylko A, Granica S, Filipek A, Piwowarski J, Stefańska J, Osińska E, Kiss AK (2013) Comparison of antioxidant, anti-inflammatory, antimicrobial activity and chemical composition of aqueous and hydroethanolic extracts of the herb of Tropaeolum majus L. Ind Crops Prod 50:88–94. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2013.07.003 Brondani J, Cuelho C, Marangoni L, Lima R, Guex C, Bonilha I, Manfron M (2016) Traditional usages, botany, phytochemistry, biological activity and toxicology of Tropaeolum majus L. - A review. Bol Latinoam Caribe Plant Med Aromat 15(4):264–273 Garzón GA, Wrolstad RE (2009) Major anthocyanins and antioxidant activity of Nasturtium flowers (Tropaeolum majus). Food Chem 114(1):44–49. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2008.09.013 Jakubczyk K, Janda K, Watychowicz K, Łukasiak J, Wolska J (2018) Garden nasturtium (Tropaeolum majus L.) - a source of mineral elements and bioactive compounds. Rocz Panstw Zakl Hig 69(2):119–126 Gasparotto Junior A, Boffo MA, Lourenço EL, Stefanello ME, Kassuya CA, Marques MC (2009) Natriuretic and diuretic effects of Tropaeolum majus (Tropaeolaceae) in rats. J Ethnopharmacol 122(3):517–522. https://doi.org/10.1016/j.jep.2009.01.021 Garzón GA, Manns DC, Riedl K, Schwartz SJ, Padilla-Zakour O (2015) Identification of phenolic compounds in petals of nasturtium flowers (Tropaeolum majus) by high-performance liquid chromatography coupled to mass spectrometry and determination of oxygen radical absorbance capacity (ORAC). J Agric Food Chem 63(6):1803–1811. https://doi.org/10.1021/jf503366c Koike A, Barreira JCM, Barros L, Santos-Buelga C, Villavicencio ALCH, Ferreira ICFR (2015) Irradiation as a novel approach to improve quality of Tropaeolum majus L. flowers: Benefits in phenolic profiles and antioxidant activity. Innov Food Sci Emerg Technol 30:138–144. https://doi.org/10.1016/j.ifset.2015.04.009 Navarro-González I, González-Barrio R, García-Valverde V, Bautista-Ortín AB, Periago MJ (2015) Nutritional composition and antioxidant capacity in edible flowers: characterisation of phenolic compounds by HPLC-DAD-ESI/MSn. Int J Mol Sci 16(1):805–822. https://doi.org/10.3390/ijms16010805 Gasparotto Junior A, Gasparotto FM, Lourenço EL, Crestani S, Stefanello ME, Salvador MJ, da Silva-Santos JE, Marques MC, Kassuya CA (2011) Antihypertensive effects of isoquercitrin and extracts from Tropaeolum majus L.: evidence for the inhibition of angiotensin converting enzyme. J Ethnopharmacol 134(2):363–372. https://doi.org/10.1016/j.jep.2010.12.026 Bazylko A, Parzonko A, Jeż W, Osińska E, Kiss AK (2014) Inhibition of ROS production, photoprotection, and total phenolic, flavonoids and ascorbic acid content of fresh herb juice and extracts from the leaves and flowers of Tropaeolum majus. Ind Crops Prod 55:19–24. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2014.01.056 Barros RGC, Andrade JKS, Pereira UC, de Oliveira CS, Rezende YRRS, Oliveira Matos Silva T, Nogueira JP, Gualberto NC, Caroline Santos Araujo H, Narain N (2020) Phytochemicals screening, antioxidant capacity and chemometric characterization of four edible flowers from Brazil. Food Res Int 130:108899. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2019.108899 Kandil MAM, Sabry RM, Ahmed SS (2016) Influence of drying methods on the quality of sage (Salvia officinalis), parsley (Petroselinum crispum) and nasturtium (Tropaeolum majus). Res J Pharm, Biol Chem Sci 7(4):1112–1123 Ares AM, Nozal MJ, Bernal JL, Bernal J (2014) Optimized extraction, separation and quantification of twelve intact glucosinolates in broccoli leaves. Food Chem 152:66–74. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.11.125 Kleinwächter M, Schnug E, Selmar D (2008) The glucosinolate – myrosinase system in nasturtium (Tropaeolum majus L.): Variability of biochemical parameters and screening for clones feasible for pharmaceutical utilization. J Agric Food Chem 56(23):11165–11170. https://doi.org/10.1021/jf802053n Thomas M, Badr A, Desjardins Y, Gosselin A, Angers P (2018) Characterization of industrial broccoli discards (Brassica oleracea var. italica) for their glucosinolate, polyphenol and flavonoid contents using UPLC MS/MS and spectrophotometric methods. Food Chem 245:1204–1211. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2017.11.021 Jo JS, Bhandari SR, Kang GH, Lee JG (2016) Comparative analysis of individual glucosinolates, phytochemicals, and antioxidant activities in broccoli breeding lines. Hortic Environ Biotechnol 57(4):392–403. https://doi.org/10.1007/s13580-016-0088-7 Radošević K, Srček VG, Bubalo MC, Brnčić SR, Takács K, Redovniković IR (2017) Assessment of glucosinolates, antioxidative and antiproliferative activity of broccoli and collard extracts. J Food Compos Anal 61:59–66. https://doi.org/10.1016/j.jfca.2017.02.001 Rutnakornpituk B, Boonthip C, Sanguankul W, Sawangsup P, Rutnakornpituk M (2018) Study in total phenolic contents, antioxidant activity and analysis of glucosinolate compounds in cruciferous vegetables. Naresuan Univ J: Sci Technol 26(2):27–37 Taverniers I, De Loose M, Van Bockstaele E (2004) Trends in quality in the analytical laboratory, II: analytical method validation and quality assurance. TrAC-Trends Anal Chem 23(8):535–552. https://doi.org/10.1016/j.trac.2004.04.001 Thompson M, Ellison S, Wood R (2002) Harmonized guidelines for single-laboratory validation of methods of analysis (IUPAC Technical Report). Pure Appl Chem 74(5):835–855. https://doi.org/10.1351/pac200274050835 AOAC International (2016). Guidelines for Standard Method Performance Requirements. In G.W. Latimer, Jr. (Ed.), Official Methods of Analysis of AOAC International (20th ed., Appendix F). AOAC International. http://www.eoma.aoac.org/app_f.pdf. Accessed 1 June 2022 Šilarová P, Česlová L, Meloun M (2017) Fast gradient HPLC/MS separation of phenolics in green tea to monitor their degradation. Food Chem 237:471–480. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2017.05.133 Rivero-Pérez MD, Muňiz P, González-Sanjose ML (2007) Antioxidant profile of red wines evaluated by total antioxidant capacity, scavenger activity, and biomarkers of oxidative stress methodologies. J Agric Food Chem 55:5476–5483. https://doi.org/10.1021/jf070306q Giusti MM, Wrolstad RE (2001) Characterization and measurement of anthocyanins by UV-visible spectroscopy. Curr Protoc Food Analytical Chem. https://doi.org/10.1002/0471142913.faf0102s00 Clifford MN, Kirkpatrick J, Kuhnert N, Roozendaal H, Salgado PR (2008) LC–MSn analysis of the cis isomers of chlorogenic acids. Food Chem 106:379–385. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2007.05.081 Ncube EN, Mhlongo MI, Piater LA, Steenkamp PA, Dubery IA, Madala NE (2014) Analyses of chlorogenic acids and related cinnamic acid derivatives from Nicotiana tabacum tissues with the aid of UPLC-QTOF-MS/MS based on the in-source collision-induced dissociation method. Chem Central J. https://doi.org/10.1186/s13065-014-0066-z Platzer M, Kiese S, Herfellner T, Schweiggert-Weisz U, Miesbauer O, Eisner P (2021) Common trends and differences in antioxidant activity analysis of phenolic substances using single electron transfer based assays. Molecules 26(5):1244. https://doi.org/10.3390/molecules26051244 Fukalova Fukalova T, García Martínez MD, Raigón MD (2021) Five undervalued edible species inherent to autumn-winter season: nutritional composition, bioactive constituents and volatiles profile. PeerJ 9:e12488. https://doi.org/10.7717/peerj.12488 Rop O, Mlcek J, Jurikova T, Neugebauerova J, Vabkova J (2012) Edible flowers—a new promising source of mineral elements in human nutrition. Molecules 17(6):6672–6683. https://doi.org/10.3390/molecules17066672