Tính chất ức chế sự phát triển của màng globul mỡ sữa bị ảnh hưởng bởi quá trình gia nhiệt kéo dài

Springer Science and Business Media LLC - Tập 94 - Trang 439-453 - 2014
Romina Zanabria1,2, Angela M. Tellez3, Mansel W. Griffiths1,2, Milena Corredig1
1Food Science Department, University of Guelph, Guelph, Canada
2Canadian Research Institute for Food Safety (CRIFS), Guelph, Canada
3Toronto, Canada

Tóm tắt

Màng globul mỡ sữa (MFGM), chất liệu bao quanh các globul mỡ trong sữa, không chỉ thú vị về mặt công nghệ mà còn cho thấy tiềm năng lớn như một thành phần sức khoẻ, vì nó có tác dụng gây độc tế bào và tác động gây apoptosis đối với các tế bào ung thư đại tràng. Mặc dù những ảnh hưởng của quá trình chế biến sữa lên thành phần và chức năng của MFGM đã được tài liệu hóa tốt, nhưng việc chế biến có thể ảnh hưởng đến tính sinh học của MFGM thì vẫn chưa được hiểu rõ. Nghiên cứu này nhằm xác định xem quá trình gia nhiệt có thể ảnh hưởng đến khả năng ức chế sự phát triển của MFGM hay không. Để thực hiện điều này, MFGM đã được chiết xuất từ sữa được gia nhiệt ở nhiệt độ 80 °C trong 10 phút, vì chế độ nhiệt độ/thời gian này được biết đến là gây ra các tương tác protein-protein mạnh mẽ với sự thay đổi trong chức năng chế biến của sữa. Hai dòng tế bào, với những đặc điểm hình thái đại diện cho hai giai đoạn khác nhau của sự hình thành khối u đại tràng (HT-29 và Caco-2), đã được sử dụng để thử nghiệm khả năng ức chế sự phát triển của các mẫu MFGM thu được từ sữa chưa được xử lý hoặc đã gia nhiệt. Phân tích sự phát triển của tế bào cho thấy sự giảm tỷ lệ phụ thuộc vào liều lượng tương tự của sự tổng hợp DNA trong cả hai dòng tế bào tiếp xúc với 6,25–200 μg protein MFGM.mL−1, chiết xuất từ sữa không gia nhiệt. Việc xử lý nhiệt đã làm giảm hiệu quả của các mẫu MFGM, chỉ có nồng độ cao nhất của MFGM được thử nghiệm sau gia nhiệt cho thấy tác động đáng kể đến sự phát triển của tế bào. Khả năng giảm của các mẫu MFGM trong việc tác động đến sự phát triển khối u được quy cho những thay đổi về thành phần, chủ yếu là sự mất phospholipid. Những thay đổi về cấu trúc siêu phân tử của MFGM do gia nhiệt cũng có thể đã đóng vai trò. Nghiên cứu này chứng minh tầm quan trọng của lịch sử chế biến trong việc đánh giá chức năng sinh học của MFGM.

Từ khóa

#Màng globul mỡ sữa #tính khả dụng sinh học #chế biến sữa #ung thư đại tràng #gia nhiệt.

Tài liệu tham khảo

Corredig, M. (1998). Properties of the milk fat globule membrane derived from buttermilks from different sources. Thesis. University of Guelph Dalgleish DG, Banks JM (1991) The formation of complexes between serum-proteins and fat globules during heating of whole milk. Milchwissenschaft 46(2):75–78 Danthine S, Blecker C, Paquot M, Innocente N, Deroanne C (2000) Progress in milk fat globule membrane research: a review. Lait 80(2):209–222 Dommels YEM, Haring MMG, Keestra NGM, Alink GM, van Bladeren PJ, van Ommen B (2003) The role of cyclooxygenase in n-6 and n-3 polyunsaturated fatty acid mediated effects on cell proliferation, PGE (2) synthesis and cytotoxicity in human colorectal carcinoma cell lines. Carcinogenesis 24(3):385–392 Estrada, R., Stolowich, N., & Yappert, M. C. (2008). Influence of temperature on P-31 NMR chemical shifts of phospholipids and their metabolites I. In chloroform-methanol–water. Anal. Biochem., 380(1), 41–50. Evers JM (2004) The milk fat globule membrane—compositional and structural changes post secretion by the mammary secretory cell. Int Dairy J 14(8):661–674 Folch J, Lees M, Sloane Stanley H (1957) A Simple method for the Isolation and purification of total lipids from animal tissues. J, Biol Chem 226:497–509 Garcia C, Lutz NW, Confort-Gouny S, Cozzone PJ, Armand M, Bernard M (2012) Phospholipid fingerprints of milk from different mammalians determined by P-31 NMR: towards specific interest in human health. Food Chem 135(3):1777–1783 Guyomarc’h F, Law AJ, Dalgleish D (2003) Formation of soluble and micelle-bound protein aggregates in heated milk. J Agric Food Chem 51(16):4652–4660 Helmerich G, Koehler P (2003) Comparison of methods for the quantitative determination of phospholipids in lecithins and flour improvers. J Agr Food Chem 51(23):6645–6651 Hintze, K. J., Snow, D., Burtenshaw, I., & Ward, R. E. (2011). Nutraceutical properties of milk fat globular membrane. In M. Elnashar (Ed.), Biotechnol. Biopolymers. (pp. 321–342) InTech. doi: 10.5772/683 Houlihan AV, Goddard PA, Kitchen BJ, Masters CJ (1992a) Changes in structure of the bovine-milk fat globule-membrane on heating whole milk. J Dairy Res 59(3):321–329 Houlihan AV, Goddard PA, Nottingham SM, Kitchen BJ, Masters CJ (1992b) Interactions between the bovine-milk fat globule-membrane and skim milk components on heating whole milk. J Dairy Res 59(2):187–195 Keenan TW, Patton S (1995) The milk fat globule membrane. In: Jensen RG (ed) Handbook of milk composition. Academic, San Diego, pp 5–50 Kim HHY, Jimenez Flores R (1995) Heat-induced interactions between the proteins of milk-fat globule-membrane and skim milk. J Dairy Sc 78(1):24–35 Larijani B, Poccia DL, Dickinson LC (2000) Phospholipid identification and quantification of membrane vesicle subfractions by P-31-H-1 two-dimensional nuclear magnetic resonance. Lipids 35(11):1289–1297 Lee SJE, Sherbon JW (2002) Chemical changes in bovine milk fat globule membrane caused by heat treatment and homogenization of whole milk. J Dairy Res 69(4):555–567 Mather IH (2000) A review and proposed nomenclature for major proteins of the milk-fat globule membrane. J Dairy Sci 83(2):203–247 McPherson AV (1984) Isolation and composition of milk fat globule membrane matrial I. From pasteurized milks and creams. J Dairy Res 51(2):279–287 Michalski MC, Januel C (2006) Does homogenization affect the human health properties of cow's milk? Trends Food Sci Tech 17(8):423–437 Michalski MC, Michel F, Sainmont D, Briard V (2002) Apparent zeta-potential as a tool to assess mechanical damages to the milk fat globule membrane. Colloid Surface B 23(1):23–30 Morin P, Jimenez-Flores R, Pouliot Y (2007) Effect of processing on the composition and microstructure of buttermilk and its milk fat globule membranes. Int Dairy J 17(10):1179–1187 Murgia S, Mele S, Monduzzi M (2003) Quantitative characterization of phospholipids in milk fat via 31P NMR using a monophasic solvent mixture. Lipids 38(5):585–591 Sanchez-Juanes F, Alonso JM, Zancada L, Hueso P (2009) Distribution and fatty acid content of phospholipids from bovine milk and bovine milk fat globule membranes. Int Dairy J 19(5):273–278 Sharma SK, Dalgleish DG (1994) Effect of heat-treatments on the incorporation of milk serum -proteins into the fat globule-membrane of homogenized milk. J Dairy Res 61(3):375–384 Simon KW, Roberts PC, Vespremi MJ, Manchen S, Schmelz EM (2009) Regulation of beta-catenin and connexin-43 expression: targets for sphingolipids in colon cancer prevention. Mol Nutr Food Res 53(3):332–340 Ye A, Singh H, Taylor MW, Anema S (2002) Characterization of protein components of natural and heat-treated milk fat globule membranes. Int Dairy J 12(4):393–402 Ye AQ, Singh H, Oldfield DJ, Anema S (2004a) Kinetics of heat-induced association of beta-lactoglobulin and alpha-lactalbumin with milk fat globule membrane in whole milk. Int Dairy J 14(5):389–398 Ye AQ, Singh H, Taylor MW, Anema S (2004b) Interactions of whey proteins with milk fat globule membrane proteins during heat treatment of whole milk. Lait 84(3):269–283 Zanabria R, Tellez AM, Griffiths M, Corredig M (2013) Milk fat globule membrane isolate induces apoptosis in HT-29 human colon cancer cells. Food Func 4 2:222–30