Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tác động cấp tính của việc bổ sung rau diếp hoặc cải xoong vào bữa ăn chứa chất béo vừa phải đối với lipid sau ăn, phản ứng glycemic và cytokine viêm trong huyết tương ở nam giới trẻ khỏe mạnh: một thử nghiệm chéo ngẫu nhiên
Tóm tắt
Phản ứng sau ăn với thức ăn chủ yếu phụ thuộc vào thành phần của bữa ăn và việc tiêu thụ rau quả có thể điều chỉnh trạng thái sau ăn này. Trong nghiên cứu này, các tác động của việc tiêu thụ rau diếp hoặc cải xoong với một bữa ăn có chất béo trung bình cao (40% kcal từ chất béo) đối với lipemia, glycemia và các cytokine viêm sau ăn được xác định ở nam giới khỏe mạnh. Nghiên cứu ngẫu nhiên, thiết kế ba nhánh và chéo này được thực hiện trên mười sáu nam giới trẻ khỏe mạnh với độ tuổi trung bình ± SEM và chỉ số khối cơ thể (kg/m2) lần lượt là 22.8 ± 0.5 tuổi và 23.7 ± 1.16. Rau diếp và cải xoong được thêm vào bữa ăn thử nghiệm với lượng 100 g và cellulose được thêm vào bữa ăn đối chứng. Sau đó, mẫu máu đã được thu thập vào các thời điểm 0, 1, 2, 3, và 4 giờ để phân tích. Phản ứng sau ăn được đo bằng glucose huyết tương, triglycerides (TG), cholesterol toàn phần, cholesterol lipoprotein mật độ cao (HDL-C) và cholesterol lipoprotein mật độ thấp (LDL-C), dưới dạng diện tích dưới đường cong sau ăn (AUC). Hơn nữa, nồng độ TNF-α (yếu tố hoại tử khối u) và IL-6 (interleukin-6) trong huyết tương được xác định một lần trước và một lần 4 giờ sau khi tiêu thụ bữa ăn. AUC từ 0-4 giờ cho glucose (385.7, 361.9 và 382.3 mg/dL cho các bữa ăn đối chứng, rau diếp, và cải xoong, tương ứng) được tính toán là thấp hơn khi bữa ăn được tiêu thụ với rau diếp so với bữa đối chứng (P < 0.05) và bữa cải xoong (P < 0.01). Giá trị tối đa của insulin được thu thập là 43.8 ± 18.8, 33.5 ± 19.5 và 42.8 ± 17.7 μIU/mL cho các bữa ăn đối chứng, rau diếp và cải xoong, tương ứng. Ngoài ra, bữa ăn chứa rau diếp làm giảm AUC cho insulin hơn so với bữa đối chứng (P < 0.05), nhưng không khác biệt với bữa cải xoong. Đáng chú ý, mức TG huyết tương, cholesterol toàn phần, HDL-C và LDL-C không có sự khác biệt đáng kể giữa các bữa ăn. Hơn nữa, nồng độ IL-6 và TNF-α trong huyết tương không khác nhau giữa các bữa ăn. Trong nghiên cứu này với nam giới khỏe mạnh, việc bổ sung rau diếp vào bữa ăn chứa chất béo vừa phải đã làm chậm phản ứng glycemic sau ăn. Tuy nhiên, tác động của việc tiêu thụ những loại rau này đối với phản ứng sau ăn ở các đối tượng có yếu tố nguy cơ tim mạch vẫn cần được làm sáng tỏ.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Garber AJ. Postprandial dysmetabolism and the heart. Heart Fail Clin. 2012;8(4):563.
Blaak EE, Antoine JM, Benton D, Bjorck I, Bozzetto L, Brouns F, et al. Impact of postprandial glycaemia on health and prevention of disease. Obes Rev. 2012;13(10):923–84. https://doi.org/10.1111/j.1467-789X.2012.01011.x.
Burton-Freeman B. Postprandial metabolic events and fruit-derived phenolics: a review of the science. Brit J Nutr. 2010;104(S3):S1–S14. https://doi.org/10.1017/S0007114510003909.
Bansal S, Buring JE, Rifai N, Mora S, Sacks FM, Ridker PM. Fasting compared with nonfasting triglycerides and risk of cardiovascular events in women. Jama. 2007;298(3):309–16. https://doi.org/10.1001/jama.298.3.309.
Higgins V, Adeli K. Postprandial dyslipidemia: pathophysiology and cardiovascular disease risk assessment. Ejifcc. 2017;28(3):168–84.
Cavalot F, Petrelli A, Traversa M, Bonomo K, Fiora E, Conti M, et al. Postprandial blood glucose is a stronger predictor of cardiovascular events than fasting blood glucose in type 2 diabetes mellitus, particularly in women: lessons from the san Luigi Gonzaga diabetes study. J Clin Endocrinol Metab. 2006;91(3):813–9. https://doi.org/10.1210/jc.2005-1005.
Bjorck I, Elmstahl HL. The glycaemic index: importance of dietary fibre and other food properties. P Nutr Soc. 2003;62(1):201–6. https://doi.org/10.1079/PNS2002239.
Dias CB, Moughan PJ, Wood LG, Singh H, Garg ML. Postprandial lipemia: factoring in lipemic response for ranking foods for their healthiness. Lipids Health Dis. 2017;16(1):178. https://doi.org/10.1186/s12944-017-0568-5.
Jackson KG, Poppitt SD, Minihane AM. Postprandial lipemia and cardiovascular disease risk: interrelationships between dietary, physiological and genetic determinants. Atherosclerosis. 2012;220(1):22–33. https://doi.org/10.1016/j.atherosclerosis.2011.08.012.
Emerson SR, Kurti SP, Harms CA, Haub MD, Melgarejo T, Logan C, et al. Magnitude and timing of the postprandial inflammatory response to a high-fat meal in healthy adults: a systematic review. Adv Nutr. 2017;8(2):213–25. https://doi.org/10.3945/an.116.014431.
O'Keefe JH, Gheewala NM, O’Keefe JO. Dietary strategies for improving post-prandial glucose, lipids, inflammation, and cardiovascular health. J Am Coll Cardiol. 2008;51(3):249–55. https://doi.org/10.1016/j.jacc.2007.10.016.
Nicolle C, Cardinault N, Gueux E, Jaffrelo L, Rock E, Mazur A, et al. Health effect of vegetable-based diet: lettuce consumption improves cholesterol metabolism and antioxidant status in the rat. Clin Nutr. 2004;23(4):605–14. https://doi.org/10.1016/j.clnu.2003.10.009.
Llorach R, Martinez-Sanchez A, Tomas-Barberan FA, Gil MI, Ferreres F. Characterisation of polyphenols and antioxidant properties of five lettuce varieties and escarole. Food Chem. 2008;108(3):1028–38. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2007.11.032.
Pinto E, Almeida AA, Aguiar AARM, Ferreira IMPLVO. Changes in macrominerals, trace elements and pigments content during lettuce (Lactuca sativa L.) growth: influence of soil composition. Food Chem. 2014;152:603–11. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2013.12.023.
Kang HM, Saltveit ME. Antioxidant capacity of lettuce leaf tissue increases after wounding. J Agric Food Chem. 2002;50(26):7536–41. https://doi.org/10.1021/jf020721c.
Aguiar J, Gonçalves JL, Alves VL, Câmara JS. Chemical Fingerprint of Free Polyphenols and Antioxidant Activity in Dietary Fruits and Vegetables Using a Non-Targeted Approach Based on QuEChERS Ultrasound-Assisted Extraction Combined with UHPLC-PDA. Antioxidants (Basel). 2020;9(4):305. https://doi.org/10.3390/antiox9040305.
Klimek-Szczykutowicz M, Szopa A, Ekiert H. Chemical composition, traditional and professional use in medicine, application in environmental protection, position in food and cosmetics industries, and biotechnological studies of Nasturtium officinale (watercress) - a review. Fitoterapia. 2018;129:283–92. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2018.05.031.
Marchioni I, Martinelli M, Ascrizzi R, Gabbrielli C, Flamini G, Pistelli L, Pistelli L. Small Functional Foods: Comparative Phytochemical and Nutritional Analyses of Five Microgreens of the Brassicaceae Family. Foods. 2021;10(2):427. https://doi.org/10.3390/foods10020427.
Bahramikia S, Yazdanparast R. Effect of hydroalcoholic extracts of Nasturtium officinale leaves on lipid profile in high-fat diet rats. J Ethnopharmacol. 2008;115(1):116–21. https://doi.org/10.1016/j.jep.2007.09.015.
Sadeghi H, Mostafazadeh M, Sadeghi H, Naderian M, Barmak MJ, Talebianpoor MS, et al. In vivo anti-inflammatory properties of aerial parts of Nasturtium officinale. Pharm Biol. 2014;52(2):169–74. https://doi.org/10.3109/13880209.2013.821138.
Faul F, Erdfelder E, Lang AG, Buchner A. G*power 3: a flexible statistical power analysis program for the social, behavioral, and biomedical sciences. Behav Res Methods. 2007;39(2):175–91. https://doi.org/10.3758/BF03193146.
Sun LJ, Ranawana DV, Leow MKS, Henry CJ. Effect of chicken, fat and vegetable on glycaemia and insulinaemia to a white rice-based meal in healthy adults. Eur J Nutr. 2014;53(8):1719–26. https://doi.org/10.1007/s00394-014-0678-z.
Mowri HO, Patsch JR, Ritsch A, Foger B, Brown S, Patsch W. High density lipoproteins with differing apolipoproteins: relationships to postprandial lipemia, cholesteryl ester transfer protein, and activities of lipoprotein lipase, hepatic lipase, and lecithin: cholesterol acyltransferase. J Lipid Res. 1994;35(2):291–300. https://doi.org/10.1016/S0022-2275(20)41218-0.
Patsch JR, Prasad S, Gotto AM Jr, Patsch W. High density lipoprotein2. Relationship of the plasma levels of this lipoprotein species to its composition, to the magnitude of postprandial lipemia, and to the activities of lipoprotein lipase and hepatic lipase. J Clin Invest. 1987;80(2):341–7. https://doi.org/10.1172/JCI113078.
de Bruin TW, Brouwer CB, van Linde-Sibenius TM, Jansen H, Erkelens DW. Different postprandial metabolism of olive oil and soybean oil: a possible mechanism of the high-density lipoprotein conserving effect of olive oil. Am J Clin Nutr. 1993;58(4):477–83. https://doi.org/10.1093/ajcn/58.4.477.
Santangelo A, Peracchi M, Conte D, Fraquelli M, Porrini M. Physical state of meal affects gastric emptying, cholecystokinin release and satiety. Br J Nutr. 1998;80(6):521–7. https://doi.org/10.1017/S0007114598001615.
Mineo S, Noguchi A, Nagakura Y, Kobori K, Ohta T, Sakaguchi E, et al. Boysenberry polyphenols suppressed elevation of plasma triglyceride levels in rats. J Nutr Sci Vitaminol. 2015;61(4):306–12. https://doi.org/10.3177/jnsv.61.306.
Kobayashi M, Ichitani M, Suzuki Y, Unno T, Sugawara T, Yamahira T, et al. Black-tea polyphenols suppress postprandial Hypertriacylglycerolemia by suppressing lymphatic transport of dietary fat in rats. J Agr Food Chem. 2009;57(15):7131–6. https://doi.org/10.1021/jf900855v.
Nsor-Atindana J, Chen MS, Goff HD, Zhong F, Sharif HR, Li Y. Functionality and nutritional aspects of microcrystalline cellulose in food. Carbohydr Polym. 2017;172:159–74. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2017.04.021.
Zhu RX, Liu MM, Han Y, Wang LL, Ye T, Lu JC, et al. Acute effects of non-homogenised and homogenised vegetables added to rice-based meals on postprandial glycaemic responses and in vitro carbohydrate digestion. Brit J Nutr. 2018;120(9):1023–33. https://doi.org/10.1017/S0007114518002489.
Kim DE, Shang XM, Assefa AD, Keum YS, Saini RK. Metabolite profiling of green, green/red, and red lettuce cultivars: variation in health beneficial compounds and antioxidant potential. Food Res Int. 2018;105:361–70. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2017.11.028.
Gopal SS, Lakshmi MJ, Sharavana G, Sathaiah G, Sreerama YN, Baskaran V. Lactucaxanthin - a potential anti- diabetic carotenoid from lettuce (Lactuca sativa) inhibits alpha-amylase and alpha-glucosidase activity in vitro and in diabetic rats. Food Funct. 2017;8(3):1124–31. https://doi.org/10.1039/C6FO01655C.
Ono-Moore KD, Snodgrass RG, Huang S, Singh S, Freytag TL, Burnett DJ, et al. Postprandial inflammatory responses and free fatty acids in plasma of adults who consumed a moderately high-fat breakfast with and without blueberry powder in a randomized placebo-controlled trial. J Nutr. 2016;146(7):1411–9. https://doi.org/10.3945/jn.115.223909.
Emerson SR, Kurti SP, Teeman CS, Emerson EM, Cull BJ, Haub MD, Rosenkranz SK. Realistic Test-Meal Protocols Lead to Blunted Postprandial Lipemia but Similar Inflammatory Responses Compared with a Standard High-Fat Meal. Curr Dev Nutr. 2017;1(4):e000232. https://doi.org/10.3945/cdn.116.000232.
Gutierrez-Salmean G, Ortiz-Vilchis P, Vacaseydel CM, Rubio-Gayosso I, Meaney E, Villarreal F, et al. Acute effects of an oral supplement of (−)-epicatechin on postprandial fat and carbohydrate metabolism in normal and overweight subjects. Food Funct. 2014;5(3):521–7. https://doi.org/10.1039/c3fo60416k.
Samkani A, Skytte M, Thomsen M, Astrup A, Deacon C, Holst J, et al. Acute effects of dietary carbohydrate restriction on glycemia, lipemia and appetite regulating hormones in normal-weight to obese subjects. Nutrients. 2018;10(9):14.
Saito Y, Kajiyama S, Nitta A, Miyawaki T, Matsumoto S, Ozasa N, Kajiyama S, Hashimoto Y, Fukui M, Imai S. Eating Fast Has a Significant Impact on Glycemic Excursion in Healthy Women: Randomized Controlled Cross-Over Trial. Nutrients. 2020;12(9):2767. https://doi.org/10.3390/nu12092767.