Tối ưu hóa các thông số chế biến nhằm nâng cao hoạt tính chống oxy hóa và chất lượng cảm quan của trà lá mướp đắng rừng

Thuan Nguyen Van1, Musliar Kasim2, Tuty Anggraini2, Nha Van Duong1, Thi Vo Thi Cam1, Linh Nhut Doan 1, Quyen Pham Thi Kim1
1Kien Giang University, Vietnam
2Andalas University, Indonesia

Tóm tắt

Lá mướp đắng rừng (Momordica charantia var. abbreviata) là nguồn nguyên liệu chưa được khai thác hiệu quả, giàu polyphenol và flavonoid có tiềm năng chống oxy hóa, tuy nhiên các thông số chế biến để tạo ra sản phẩm trà thảo dược có hoạt tính sinh học cao và hương vị dễ chấp nhận vẫn chưa được xác định rõ. Nghiên cứu này nhằm tối ưu hóa ba yếu tố then chốt — độ tuổi thu hoạch, nhiệt độ sấy chân không và tỷ lệ phối trộn với cỏ ngọt — để tối đa hóa khả năng giữ lại hợp chất phenolic, tăng cường hoạt tính chống oxy hóa và cải thiện chất lượng cảm quan. Lá mướp đắng được trồng tại Trường Đại học Kiên Giang, thu hoạch ở các mốc 60, 80, 100 và 120 ngày, sau đó sấy chân không ở 45, 55 hoặc 65 °C (70 kPa, 24 giờ; độ ẩm cuối ~6–7%). Tổng hàm lượng polyphenol và flavonoid được xác định lần lượt bằng phương pháp Folin–Ciocalteu và NaNO₂–AlCl₃–NaOH, trong khi hoạt tính chống oxy hóa được đánh giá bằng phép thử DPPH, với giá trị ức chế 50% (IC₅₀) biểu thị dưới dạng mg chất khô trên mL dịch chiết (mg/mL). Đánh giá cảm quan đối với trà pha từ hỗn hợp lá–cỏ ngọt (tỷ lệ 9,5:0,5 đến 7,5:2,5, w/w) được thực hiện theo tiêu chuẩn TCVN 3218:2012 với nhóm đánh giá được huấn luyện (n = 10). Kết quả cho thấy thu hoạch ở 80 ngày cho hàm lượng polyphenol tổng số cao nhất (29,36 mg đương lượng acid gallic/g chất khô) và giá trị IC₅₀ thấp nhất (1,34 mg/mL). Sấy ở 55 °C cho giá trị polyphenol tổng số (47,67 mg GAE/g chất khô) và flavonoid tổng số (123,48 mg QE/g chất khô) cao nhất, đồng thời giá trị IC₅₀ thấp nhất (1,23 mg/mL). Hỗn hợp lá–cỏ ngọt ở tỷ lệ 8,5:1,5 đạt điểm cảm quan cao nhất (16,27; mức “Tốt”), thể hiện sự cân bằng hài hòa giữa vị đắng và vị ngọt. Những thông số tích hợp này cung cấp cơ sở khoa học cho việc nâng cao giá trị sử dụng của lá mướp đắng rừng, hướng tới phát triển sản phẩm trà thảo dược chức năng có hoạt tính sinh học cao và được người tiêu dùng chấp nhận.

Từ khóa

#Wild bitter melon #Vacuum drying #Evaluation #Antioxidant activity #Sensory quality

Tài liệu tham khảo

N. T. Yen and T. N. Khan, “Chemical composition and antioxidant capacity of bitter melon,” Vietnam Journal of Food Science and Technology, vol. 10, no. 2, pp. 55–62, 2014. (in Vietnamese)

F. Saeed, M. Afzaal, B. Niaz, M. U. Arshad, and T. Tufail, “Bitter melon (Momordica charantia): A natural healthy vegetable,” International Journal of Food Properties, vol. 21, no. 1, pp. 1270–1289, 2018, doi: 10.1080/10942912.2018.1477480.

J. L. Perez et al., “Bitter melon extracts and cucurbitane-type triterpenoid glycosides antagonize lipopolysaccharide-induced inflammation via suppression of the NLRP3 inflammasome,” Journal of Functional Foods, vol. 86, art. 104720, 2021, doi: 10.1016/j.jff.2021.104720.

N. T. Hue, “Study on antioxidant activity of bitter melon leaves,” Journal of Agriculture and Food, vol. 11, no. 3, pp. 22–28, 2013. (in Vietnamese)

P. T. Thao, “Phenolic composition of bitter melon leaves and their antioxidant activity,” Vietnam Journal of Biotechnology, vol. 14, no. 2, pp. 45–52, 2016. (in Vietnamese)

C. Arena, L. Vitale, and B. H. Mele, “Leaf age-related changes in photosynthetic and antioxidant capacity in Cistus incanus,” Plant Physiology and Biochemistry, vol. 141, pp. 541–550, 2019, doi: 10.1016/j.plaphy.2019.06.007.

H. Thomas, “Senescence, ageing and death of the whole plant,” New Phytologist, vol. 197, no. 3, pp. 696–711, 2013, doi: 10.1111/nph.12047.

M. Zhang, J. Tang, A. S. Mujumdar, and S. Wang, “Trends in microwave-related drying of fruits and vegetables,” Trends in Food Science & Technology, vol. 17, no. 10, pp. 524–534, 2006, doi: 10.1016/j.tifs.2006.04.011.

T. T. Nguyen, T. N. Le, and M. H. Tran, “Influence of drying conditions on phenolic content and antioxidant activity of guava leaves,” Vietnam Journal of Food Control, vol. 6, no. 2, pp. 45–53, 2022. (in Vietnamese)

F. Al Juhaimi, M. M. Özcan, K. Ghafoor, and E. E. Babiker, “Effect of drying methods on quality attributes of citrus seed powders,” Journal of Food Science and Technology, vol. 55, no. 6, pp. 2163–2169, 2018, doi: 10.1007/s13197-018-3137-5.

S. K. Goyal and Samsher, “Stevia (Stevia rebaudiana): A bio-sweetener—A review,” International Journal of Food Sciences and Nutrition, vol. 61, no. 1, pp. 1–10, 2010, doi: 10.3109/09637480903193049.

E. Gupta, S. Purwar, S. Sundaram, and P. Tripathi, “Nutritional and therapeutic values of Stevia rebaudiana,” Journal of Medicinal Plants Research, vol. 7, no. 46, pp. 3343–3353, 2013, doi: 10.5897/JMPR2013.5276.

T. N. Nhu, “Formulation study of wild bitter melon–stevia tea bags,” Vietnam Journal of Food Science and Technology, vol. 12, no. 1, pp. 33–40, 2024. (in Vietnamese)

V. L. Singleton and J. A. Rossi, “Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic–phosphotungstic acid reagents,” American Journal of Enology and Viticulture, vol. 16, no. 3, pp. 144–158, 1965.

V. L. Singleton, R. Orthofer, and R. M. Lamuela-Raventós, “Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin–Ciocalteu reagent,” Methods in Enzymology, vol. 299, pp. 152–178, 1999, doi: 10.1016/S0076-6879(99)99017-1.

C. C. Chang, M. H. Yang, H. M. Wen, and J. C. Chern, “Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods,” Journal of Food and Drug Analysis, vol. 10, no. 3, pp. 178–182, 2002.

W. Brand-Williams, M. E. Cuvelier, and C. Berset, “Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity,” LWT—Food Science and Technology, vol. 28, no. 1, pp. 25–30, 1995, doi: 10.1016/S0023-6438(95)80008-5.

L. P. Thien et al., “Growth stage-dependent variation in phytochemicals of Centella asiatica,” Industrial Crops and Products, vol. 172, art. 113999, 2021, doi: 10.1016/j.indcrop.2021.113999.

F. C. Mizobutsi, L. B. Finger, J. M. Puschmann, R. R. Neves, and E. A. Silva, “Effect of drying temperature on polyphenol oxidase activity and phenolic content in fruits,” Postharvest Biology and Technology, vol. 56, no. 1, pp. 56–62, 2010, doi: 10.1016/j.postharvbio.2009.11.005.

M. A. Madrau et al., “Effect of drying temperature on polyphenolic content and antioxidant activity of apricots,” European Food Research and Technology, vol. 228, no. 3, pp. 441–448, 2009, doi: 10.1007/s00217-008-0943-0.

T. Dragovic-Uzelac, B. Levaj, V. Mrkic, D. Bursac, and M. Boras, “The content of polyphenols and carotenoids in three apricot cultivars depending on stage of maturity and drying conditions,” Food Chemistry, vol. 102, no. 2, pp. 966–975, 2007, doi: 10.1016/j.foodchem.2006.04.001.

K. Żbik, E. Górska-Horczyczak, A. Onopiuk, M. Kurek, and M. Zalewska, “Vacuum and convection drying effects on volatile compounds profile and physicochemical properties of selected herbs from Lamiaceae family,” European Food Research and Technology, vol. 249, pp. 2569–2581, 2023, doi: 10.1007/s00217-023-04427-y.

M. A. Mansour, “Using vacuum drying system for drying some leafy medicinal plants,” Misr Journal of Agricultural Engineering, vol. 40, no. 4, pp. 377–392, 2023, doi: 10.21608/mjae.2023.187612.