Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Vận chuyển stachyose và mannitol trong cây ô liu (Olea europaea L.)
Tóm tắt
Lá nguồn gốc của Olea europea L. (cây ô liu) đã được đánh dấu quang hợp bằng 14CO2 và sau đó được chuyển tới dung dịch 20 mM EDTA để cho phép sự rò rỉ của nhựa phloem. Chất đánh dấu trong nhựa phloem được thu hồi chủ yếu dưới dạng stachyose (50–60% tổng chất đánh dấu) trong khi chỉ một lượng nhỏ chất đánh dấu được thu hồi trong đường alcohol mannitol (dưới 5%). Ngược lại, trong mô lá, stachyose chỉ chiếm 5% tổng lượng chất đánh dấu của lá trong khi mannitol chiếm 30%. Việc thấm chân không vào các lá đang rò rỉ với 1 mM p-chloromercuriphenylsulfonic acid không ảnh hưởng đến sự rò rỉ tiếp theo hoặc đến sự phân bố của chất đánh dấu trong stachyose hoặc mannitol trong cả mô lá và nhựa phloem. Ngược lại, một phương pháp điều trị tương tự đã hạn chế sự hấp thụ của [14C]stachyose và [14C]sucrose từ bên ngoài vào các đĩa lá. Sau các thí nghiệm theo dõi ngắn hạn với 14CO2 (15 giây tiêm, 5 giây-20 phút theo dõi), sucrose, mannitol và galactinol đã được đánh dấu nhanh chóng trong 2 phút đầu tiên sau tiêm. Stachyose và raffinose, mặt khác, không được đánh dấu đáng kể cho đến 10 phút sau khi tiêm. Tổng hợp lại, dữ liệu cho thấy rằng việc đóng gói phloem của oligosaccharides raffinose hoặc mannitol có thể không yêu cầu một bước apoplastic. Ngoài ra, có vẻ như có sự phân tách không gian của quá trình tổng hợp những đường này trong lá, với việc tổng hợp mannitol diễn ra trong mô mesophyll quang hợp và tổng hợp oligosaccharides raffinose xảy ra gần, và có thể là trong, các tĩnh mạch nhỏ.
Từ khóa
#Oleaceae #stachyose #mannitol #phloem sap #photosynthesis #carbohydrate metabolismTài liệu tham khảo
Bieleski, R.L. (1982) Sugar alcohols. In: Encyclopedia of plant physiology, N.S., vol. 13A, pp. 158–192, Loewus, F.A., Tanner, W., eds. Springer-Verlag, New York
Bourquin, S., Bonnemain, J.L., Delrot, S. (1990) Inhibition of loading of 14C-assimilates by p-chloromercuribenzenesulfonic acid. Localization of the apoplastic pathway in Vicia faba. Plant Physiol. 92, 97–102
Daie, J. (1987) Sucrose uptake in isolated phloem of celery is a single saturable transport system. Planta 171, 474–482
Fisher, D.G. (1986) Ultrastructure, plasmodesmatal frequency and solute concentration in green areas of variegated Coleus blumei Benth. leaves. Planta 169, 141–152
Gamalei, Y.V. (1989) Structure and function of leaf minor veins in trees and herbs: a taxonomic review. Trees 3, 96–110
Gamalei, Y.V. (1991) Phloem loading and its development related to plant evolution from trees to herbs. Trees 5, 50–64
Giaquinta, R.T. (1976) Evidence for phloem loading from the apoplast. Chemical modification of membrane sulfhydryl groups. Plant Physiol. 57, 872–875
Girousse, C., Bonnemain, J-L., Delrot, S., Bournoville, R. (1991) Sugar and amino acid composition of phloem sap of Medicago sativa: a comparative study of two collecting methods. Plant Physiol. Biochem. 29, 41–48
Holthaus, U., Schmitz, K. (1991) Distribution of stachyose synthase in Cucumis melo L. Planta 185, 479–486
Kandler, O. (1967) Biosynthesis of polyand oligosaccharides during photosynthesis in green plants. In: Harvesting the sun: photosynthesis and plant life, pp. 131–152, San Pietro, A., Greer, F.A., Army, T.J., eds. Academic Press, New York
Karnovsky, M.J. (1965) A formaldehyde-glutaraldehyde fixative of high osmolarity for use in electron microscopy. J. Cell Biol. 27, 137A-138A
King, R.W., Zeewart, J.A.D. (1974) Enhancement of phloem exudation from cut petioles by chelating agents. Plant Physiol. 53, 96–103
Loescher, W.H., Tyson, R.H., Everard, J.D., Redgwell, R.J., Bieleski, R.L. (1992) Mannitol synthesis in higher plants. Plant Physiol. 98, 1396–1402
Madore, M.A. (1990) Carbohydrate metabolism in photosynthetic and nonphotosynthetic tissues of variegated leaves of Coleus blumei Benth. Plant Physiol. 93, 617–622
Madore, M.A. (1992) Nocturnal stachyose metabolism in leaf tissues of Xerosicyos danguyi H. Humb. Planta 187, 537–541
Madore, M.A., Webb, J.A. (1981) Leaf free space analysis and minor vein loading in Cucurbita pepo. Can. J. Bot. 59, 2550–2557
Madore, M.A., Webb, J.A. (1982) Stachyose synthesis in isolated mesophyll cells of Cucurbita pepo. Can. J. Bot. 60, 126–130
Madore, M.A., Mitchell, D.E., Boyd, C.M. (1988) Stachyose synthesis in source leaf tissues of the CAM plant Xerosicyos danguyi H.. Humb. Plant Physiol. 87, 588–591
Mitchell, D.E., Madore, M.A. (1992) Patterns of assimilate production and translocation in muskmelon (Cucumis melo L.) II. Low temperature effects. Plant Physiol. 99, 966–971
Mitchell, D.E., Gadus, M.V., Madore, M.A. (1992) Patterns of assimilate production and translocation in muskmelon (Cucumis melo L.) I. Diurnal patterns. Plant Physiol. 99, 959–965
Schmitz, K., Holthaus, U. (1986) Are sucrosyl-oligosaccharides synthesized in mesophyll protoplasts of mature leaves of Cucumis melo? Planta 169, 529–535
Schmitz, K., Cuypers, B., Moll, M. (1987) Pathways and assimilate transfer between mesophyll cells and minor veins in leaves of Cucumis melo L. Planta 171, 19–29
Spurr, A.R. (1969) A low-viscosity epoxy resin embedding medium for electron microscopy. J. Ultrastruct. Res. 26, 31–43
Turgeon, R., Beebe, D.U. (1991) The evidence for symplastic phloem loading. Plant Physiol. 96, 349–354
Turgeon, R., Hepler, P.K. (1989) Symplastic continuity between mesophyll and companion cells in minor veins of mature Cucurbita pepo leaves. Planta 179, 24–31
Turgeon, R., Gowan, E. (1990) Phloem loading in Coleus blumei in the absence of carrier-mediated uptake of export sugar from the apoplast. Plant Physiol. 94, 1244–1249
Turgeon, R., Gowan, E. (1992) Sugar synthesis and phloem loading in Coleus blumei leaves. Planta 187, 388–394
Turgeon, R., Wimmers, L. (1988) Different patterns of vein loading of exogenous [14C]-sucrose in leaves of Pisum sativum and Coleus blumei. Plant Physiol. 87, 179–182
Turgeon, R., Webb, J.A., Evert, R.F. (1975) Ultrastructure of minor veins in Cucurbita pepo leaves. Protoplasma 83, 217–232
Van Bel, A.J.E., Gamalei (1992) Ecophysiology of phloem loading in source leaves. Plant Cell Environ. 15, 265–270
Van Bel, A.J.E., Gamalei, Y.V., Ammerlaan, A., Bik, L.P.M. (1992) Dissimilar phloem loading in leaves with symplasmic or apoplasmic minor-vein configurations. Planta 186, 518–525
Weisberg, L.A., Wimmers, L.E., Turgeon, R. (1988) Photoassimilate-transport characteristics of nonchlorophyllous and green tissue in variegated leaves of Coleus blumei Benth. Planta 175, 1–8
Zimmermann, M.H., Ziegler, H. (1975) List of sugars and sugar alcohols in seive-tube exudates. In: Encyclopedia of plant physiology, N.S., vol. 1: Transport in plants, pp. 482–503, Zimmermann, M.H., Milburn, J.A., eds. Springer-Verlag, Heidelberg