Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tính chất hòa tan của ubiquinone-10 trong các dung môi có độ phân cực khác nhau
Tóm tắt
Bài báo này trình bày các đặc tính hòa tan của ubiquinone-10 và ubiquinol-10 trong một loạt dung môi có độ phân cực thay đổi từ ankan đến nước. Sự hòa tan cao nhất được quan sát thấy trong các dung môi có độ phân cực trung bình và đặc biệt là ở những dung môi có độ phân cực thấp kết hợp với xu hướng tương tác rõ rệt với nhóm thay thế benzoquinone của phân tử ubiquinone. Điều này bao gồm các dung môi như chloroform và benzene. Ubiquinone-10 có tính phân cực thấp hơn một chút so với ubiquinol-10 theo như đánh giá sự hòa tan so sánh của hai phân tử này. Các phép đo độ dịch hóa proton-NMR và nghiên cứu sự tụ tập trong các dung môi đã chọn cho thấy rằng trong ubiquinone-10 trong pha lỏng và trong dung dịch trong các hydrocarbon như dodecan, các phân tử có khả năng kết hợp ưu tiên có thể liên quan đến sự xếp chồng của các vòng benzoquinone. Nghiên cứu cân bằng bề mặt chỉ ra rằng tính chất hoạt động bề mặt của ubiquinone-10 là tương đối yếu và chỉ trong một dung môi có độ phân cực tương đối cao và cấu trúc phức tạp, formamide, mới có bằng chứng về ảnh hưởng lên sức căng bề mặt của dung môi. Nồng độ micelle tới hạn trong dung môi này được ước tính khoảng 5 μM dựa trên các phép đo sức căng bề mặt. Ubiquinone-10 được biết đến là có khả năng tạo thành các lớp đơn phân tử gần như không hòa tan tại giao diện không khí/nước. Các nghiên cứu về sự phân chia của ubiquinone-10 trong các hỗn hợp dung môi nhị phân cho thấy rằng sự tương tác của nhóm thay thế vòng benzoquinone với các dung môi phân cực có cấu trúc yếu hơn đáng kể so với sự cohesion nội tại giữa các phân tử dung môi. Không có bằng chứng nào dựa trên các phép đo nhiễu xạ tia X góc rộng cho thấy rằng các phân tử dung môi là một thành phần của lưới tinh thể của ubiquinone-10 đã kết tủa từ các hỗn hợp dung môi.
Từ khóa
#Ubiquinone-10 #Ubiquinol-10 #độ phân cực #phân tử dung môi #sức căng bề mặtTài liệu tham khảo
Yu, C. A., Nagoaka, S., Yu, L., and King, T. E. (1980).Arch. Biochem. Biophys. 204:59–70.
Yu, C. A. and Yu, L. (1980).Biochemistry 19:3579–3585.
Nagoaka, S., Yu, L. and King, T. E. (1981).Arch. Biochem. Biophys. 208:334–343.
Lenaz, G., Degli-Esposti, M., Bertoli, E., Parenti-Castelli, G., Mascarello, S., Fato, R. and Casali, C. (1982). In:Functions of Quinones in Energy Conserving Systems (B. L. Trumpower, Ed.), Academic Press, New York, pp. 111–124.
Lenaz, G. and Degli-Esposti, M. (1985). In:Coenzyme Q (G. Lenaz, Ed.), John Wiley, Chichester, pp. 83–105.
Degli-Esposti, M., Ferri, E. and Lenaz, G. (1981).Ital. J. Biochem. 30:437–452.
Degli-Esposti, M., Bertoli, E., Parenti-Castelli, G., Fato, R., Mascarello, S. and Lenaz, G. (1981).Arch. Biochem. Biophys. 210:21–32.
Ondarroa, M. and Quinn, P. J. (1986).Eur. J. Biochem. 155:353–361.
Lester, R. L., Hatefi, Y., Widmer, C. and Crane, F. L. (1959).Biochim. Biophys. Acta 33:169–185.
Rich, P. R. (1981).Biochim. Biophys. Acta 637:28–33.
Snyder, L. R. (1974).J. Chromatogr. 92:223–230.
Snyder, L. R. (1978).J. Chromatogr. Sci. 16:223–234.
Ray A. (1971).Nature (London) 231:313–315.
Zahler, P. and Niggli, V. (1977).Meth. Membr. Biol. 8:1–50.
Kingsley, P. B. and Feigenson, G. W. (1981).Biochim. Biophys. Acta 635:602–618.
Gale, P. H., Arison, B. H., Trenner, N. R., Page, A. C. and Folkers, K. (1963).Biochemistry 2:196–200.
Ulrich, E. L., Girrin, M. E., Cramer, W. A. and Markley, J. L. (1985).Biochemistry 24:2501–2508.
Katsikas, H. and Quinn, P. J. (1982).Biochim. Biophys. Acta 689:363–369.
Stidham, M. A., McIntosh, J. L. and Siedow, J. N. (1984).Biochim. Biophys. Acta 767: 423–431.
Katsikas, H. and Quinn, P. J. (1982).Eur. J. Biochem. 124: 165–169.
Quinn, P. J. (1980).Biochem. Int. 1:77–83.
Katsikas, H. and Quinn, P. J. (1981).FEBS Lett. 133:230–234.
Alonso, A., Gomez-Fernandez, J. C., Aranda, F. J., Belda, F. J. F. and Goni, F. M. (1981).FEBS Lett. 132:19–22.