Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Vi khuẩn ở âm đạo của phụ nữ trong độ tuổi sinh sản thay đổi theo nhiễm trùng phụ khoa và chu kỳ kinh nguyệt
Tóm tắt
Nghiên cứu này được thực hiện để khám phá xem liệu vi khuẩn âm đạo của phụ nữ trong độ tuổi sinh sản có khác nhau giữa các nhóm được xác định bởi nhiễm trùng đường tiết niệu sinh dục, lịch sử sinh đẻ và chu kỳ kinh nguyệt hay không. Đây là một nghiên cứu so sánh nhiều trường hợp đối chứng của phụ nữ trong độ tuổi sinh sản được phân loại vào nhóm trường hợp hoặc nhóm đối chứng theo tình trạng nhiễm trùng đường tiết niệu sinh dục của họ. Những người tham gia cũng được nhóm theo lịch sử sinh đẻ và chu kỳ kinh nguyệt. Mẫu lấy dịch âm đạo đã được thu thập và bảo quản ở nhiệt độ −70 °C cho đến khi được kiểm tra. Vùng V3-V4 của gen 16S rRNA đã được khuếch đại bằng phương pháp PCR và được giải trình tự trên nền tảng Illumina MiSeq. Chúng tôi đã kiểm tra giả thuyết về việc sự phong phú tương đối của các loài vi sinh vật trong vi khuẩn âm đạo có thay đổi theo nhiễm trùng đường tiết niệu sinh dục, lịch sử sinh đẻ và chu kỳ kinh nguyệt hay không. Sự phong phú của vi khuẩn âm đạo (độ đa dạng Alpha đo bằng PD_whole tree) đã giảm ở phụ nữ bình thường (không có nhiễm trùng đường sinh sản) so với những người có bệnh viêm âm đạo do vi khuẩn (BV), và giảm ở phụ nữ mang thai so với các nhóm khác không mang thai. Tương tự, phụ nữ từ các nhóm bình thường và mang thai có độ đa dạng beta thấp hơn khi đo bằng khoảng cách unweighted_unifrac so với những người bị nhiễm và không mang thai. Mười giống vi khuẩn hàng đầu có sự phong phú tương đối, đặc biệt là Lactobacillus, là giống chi chiếm ưu thế nhất với sự phong phú tương đối là 71.55% trong tất cả các mẫu, không khác biệt đáng kể giữa các nhóm về lịch sử sinh đẻ và chu kỳ kinh nguyệt được phân tích bằng ANOVA và kruskal_wallis phi tham số. Lactobacillus iners và Lactobacillus helveticus có sự phong phú cao nhất, chiếm tổng cộng 97.92% sự phong phú tương đối của giống Lactobacillus. Chúng tôi cũng phát hiện rằng tỷ lệ L.helveticus/L.iners cao hơn có nhiều khả năng xuất hiện ở phụ nữ bình thường hơn là ở những người bị nhiễm và ở phụ nữ mang thai hơn là không mang thai, mặc dù những so sánh này không có ý nghĩa thống kê. Sự phong phú tương đối của các taxon vi khuẩn chiếm ưu thế trong các cộng đồng vi khuẩn âm đạo của phụ nữ trong độ tuổi sinh sản không khác nhau giữa các nhóm về lịch sử sinh đẻ và chu kỳ kinh nguyệt. Phụ nữ từ các nhóm mang thai và không có nhiễm trùng đường sinh sản có độ đa dạng alpha và beta thấp hơn. Thành phần của các loài Lactobacillus chính có thể thay đổi trong các giai đoạn của chu kỳ kinh nguyệt và tình trạng nhiễm trùng đường sinh sản.
Từ khóa
#vi khuẩn âm đạo #phụ nữ #độ tuổi sinh sản #nhiễm trùng đường sinh dục #chu kỳ kinh nguyệt #LactobacillusTài liệu tham khảo
Group NIHHMPW, Peterson J, Garges S, et al. The NIH human microbiome project. Genome Res. 2009;19(12):2317–23. https://doi.org/10.1101/gr.096651.109.
Hillier SL, Krohn MA, Cassen E, Easterling TR, Rabe LK, Eschenbach DA. The role of bacterial vaginosis and vaginal bacteria in amniotic-fluid infection in women in preterm labor with intact fetal membranes. Clin Infect Dis. 1995;20(Supplement_2):S276–8. https://doi.org/10.1093/clinids/20.Supplement_2.S276.
Krohn MA, Thwin SS, Rabe LK, Brown Z, Hillier SL. Vaginal colonization by Escherichia coli as a risk factor for very low birth weight delivery and other perinatal complications. J Infect Dis. 1997;175(3):606–10. https://doi.org/10.1093/infdis/175.3.606.
Regan JA, Klebanoff MA, Nugent RP, Eschenbach DA, Blackwelder WC, Lou Y, et al. Colonization with group B streptococci in pregnancy and adverse outcome. VIP study group. Am J Obstet Gynecol. 1996;174(4):1354–60. https://doi.org/10.1016/S0002-9378(96)70684-1.
Jayshree RS, Kumar RV. Contribution of the gut and vaginal microbiomes to gynecological cancers. In: Mehta S, Singla A, editors. Preventive oncology for the gynecologist. Singapore: Springer; 2019. p. 399–416. https://doi.org/10.1007/978-981-13-3438-2_31.
Uscher-Pines L, Hanlon AL, Nelson DB. Racial differences in bacterial vaginosis among pregnant women: The Relationship between demographic and behavioral predictors and individual bv-related microorganism levels. Matern Child Health J. 2009;13(4):512–9. https://doi.org/10.1007/s10995-008-0372-y.
Torondel B, Sinha S, Mohanty JR, et al. Association between unhygienic menstrual management practices and prevalence of lower reproductive tract infections: a hospital-based cross-sectional study in Odisha, India. BMC Infect Dis. 2018;18:1–12.
Brotman RM, He X, Gajer P, et al. Association between cigarette smoking and the vaginal microbiota: a pilot study. BMC Infect Dis. 2014;14:1–11.
Eschenbach DA, Thwin SS, Patton DL, Hooton TM, Stapleton AE, Agnew K, et al. Influence of the normal menstrual cycle on vaginal tissue, discharge, and microflora. Clin Infect Dis. 2000;30(6):901–7. https://doi.org/10.1086/313818.
Song SD, Acharya KD, Zhu JE, et al. Daily vaginal microbiota fluctuations associated with natural hormonal cycle, contraceptives, diet, and exercise. mSphere. 2020;5:e00593–20.
Chaban B, GLinks M, Jayaprakash TP, et al. Characterization of the vaginal microbiota of healthy Canadian women through the menstrual cycle. Microbiome. 2014;2:23.
Romero R, Hassan SS, Gajer P, et al. The composition and stability of the vaginal microbiota of normal pregnant women is different from that of non-pregnant women. Microbiome. 2014;2:4.
Borges S, Silva J, Teixeira P. The role of lactobacilli and probiotics in maintaining vaginal health. Arch Gynecol Obstet. 2014;289(3):479–89. https://doi.org/10.1007/s00404-013-3064-9.
Petrova MI, Lievens E, Malik S, et al. Lactobacillus species as biomarkers and agents that can promote various aspects of vaginal health. Front Physiol. 2015;6:81.
Schock H, Zeleniuch-Jacquotte A, Lundin E, et al. Hormone concentrations throughout uncomplicated pregnancies: a longitudinal study. BMC Pregnancy Childbirth. 2016;16:146.
Nuriel-Ohayon M, Neuman H, Koren O. Microbial changes during pregnancy, birth, and infancy. Front Microbiol. 2016;7:1031.
Chen Y, Hong Z, Wang W, et al. Association between the vaginal microbiome and high-risk human papillomavirus infection in pregnant Chinese women. BMC Infect Dis. 2019;19:677.
Kaur H, Merchant M, Haque MM, et al. Crosstalk between female Gonadal Hormones and vaginal microbiota across various phases of women Gynecological lifecycle. Front Microbiol. 2020;11:551.
Zhong H, Lehtovirta-Morley L, Liu J, et al. Novel insights into the Thaumarchaeota in the deepest oceans: their metabolism and potential adaptation mechanisms. Microbiome. 2020;8:78.
Costa OY, De Hollander M, Pijl A, et al. Cultivation-independent and cultivation-dependent metagenomes reveal genetic and enzymatic potential of microbial community involved in the degradation of a complex microbial polymer. Microbiome. 2020;8:76.
Wu J, Peters BA, Dominianni C, et al. Cigarette smoking and the oral microbiome in a large study of American adults. ISME J. 2016;10:1–12.
Ravel J, Gajer P, Abdo Z, Schneider GM, Koenig SSK, McCulle SL, et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proc Natl Acad Sci. 2011;108(Suppl1):4680–7. https://doi.org/10.1073/pnas.1002611107.
Gajer P, Brotman RM, Bai G, et al. Temporal dynamics of the human vaginal microbiota. Sci Transl Med. 2012;4(132):132 ra152.
Hickey RJ, Abdo Z, Zhou X, Nemeth K, Hansmann M, Osborn TW III, et al. Effects of tampons and menses on the composition and diversity of vaginal microbial communities over time. BJOG. 2013;120(6):695–704. https://doi.org/10.1111/1471-0528.12151.
Verstraelen H, Verhelst R, Claeys G, de Backer E, Temmerman M, Vaneechoutte M. Longitudinal analysis of the vaginal microflora in pregnancy suggests that L.crispatus promotes the stability of the normal vaginal microflora and that L.gasseri and/or L.iners are more conducive to the occurrence of abnormal vaginal microflora. BMC Microbiol. 2009;9(1):116. https://doi.org/10.1186/1471-2180-9-116.
Witkin SS, Mendes-Soares H, Linhares IM, et al. Influence of vaginal bacteria and D- and L- lactic acid isomers on vaginal Extracellular matrix metalloproteinase inducer: implications for protection against upper genital tract infections. mBio. 2013;4:e00460–13.
Fredricks DN. Molecular methods to describe the spectrum and dynamics of the vaginal microbiota. Anaerobe. 2011;17(4):191–5. https://doi.org/10.1016/j.anaerobe.2011.01.001.
Mitchell C, Manhart LE, Thomas K, et al. Behavioral predictors of colonization with Lactobacillus crispatus or Lactobacillus jensenii after treatment for bacterial vaginosis: a cohort study. Infect Dis Obstet Gynecol. 2012;2012:706540.
Ravel J, Brotman RM, Gajer P, Ma B, Nandy M, Fadrosh DW, et al. Daily temporal dynamics of vaginal microbiota before, during and after episodes of bacterial vaginosis. Microbiome. 2013;1(1):29. https://doi.org/10.1186/2049-2618-1-29.
Kaewsrichan J, Peeyananjarassri K, Kongprasertkit J. Selection and identification of anaerobic lactobacilli producing inhibitory compounds against vaginal pathogens. FEMS Immunol Med Microbiol. 2006;48(1):75–83. https://doi.org/10.1111/j.1574-695X.2006.00124.x.
Jakobsson T, Forsum U. Lactobacillus iners: a marker of changes in the vaginal flora? J Clin d Microbiol. 2007;45(9):3145. https://doi.org/10.1128/JCM.00558-07.
Tachedjian G, O'Hanlon DE, Ravel J. The implausible “in vivo” role of hydrogen peroxide as an antimicrobial factor produced by vaginal microbiota. Microbiome. 2018;6(1):29. https://doi.org/10.1186/s40168-018-0418-3.
Borgdorff H, Armstrong SD, Tytgat HL, et al. Unique Insights in the Cervicovaginal Lactobacillus iners and L crispatus Proteomes and Their Associations with Microbiota Dysbiosis. PLoS One. 2016;11:e0150767.
Niu XX, Li T, Zhang X, et al. Lactobacillus crispatus Modulates Vaginal Epithelial Cell Innate Response to Candida albicans. Chin Med J. 2017;130:273.
Pirke KM, Wuttke W, Schweiger U. The menstrual cycle and its disorders. Berlin: Springer; 1989. ISBN (online): 978–3–642-74631-4
Nugent RP, Krohn MA, Hillier SL. Reliability of diagnosing bacterial vaginosis is improved by a standardized method of gram stain interpretation. J Clin Microbiol. 1991;29(2):297–301. https://doi.org/10.1128/jcm.29.2.297-301.1991.
Xia Q, Cheng L, Zhang H, Sun S, Liu F, Li H, et al. Identication of vaginal bacteria diversity and it's association with clinically diagnosed bacterial vaginosis by denaturing gradient gel electrophoresis and correspondence analysis. Infect Genet Evol. 2016;44:479–86. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2016.08.001.
Diao Y, Fang X, Xia Q, Chen S, Li H, Yang Y, et al. Organism diversity between women with and without bacterial vaginosis as determined by polymerase chain reaction denaturing gradient gel electrophoresis and 16S rRNA gene sequence. Obst Gynaecol Res. 2011;37(10):1438–46. https://doi.org/10.1111/j.1447-0756.2011.01564.x.
Callahan BJ, McMurdie PJ, Rosen MJ, Han AW, Johnson AJA, Holmes SP. DADA2: high-resolution sample inference from Illumina amplicon data. Nat Methods. 2016;13(7):581–3. https://doi.org/10.1038/nmeth.3869.
Bolyen E, Rideout JR, Dillon MR, et al. QIIME 2: Reproducible, interactive, scalable, and extensible microbiome data science. Peer J. 2018. https://doi.org/10.7287/peerj.preprints.27295v2.
Shannon CE. The mathematical theory of communication. MD Comput. 1997;14(4):306–17.
Faith DP, Baker AM. Phylogenetic diversity (PD) and biodiversity conservation: some bioinformatics challenges. Evol Bioinforma. 2006;2:121–8.
Lozupone C, Lladser ME, Knights D, Stombaugh J, Knight R. UniFrac: an effective distance metric for microbial community comparison. ISME J. 2011;5(2):169–72. https://doi.org/10.1038/ismej.2010.133.
Caporaso JG, Kuczynski J, Stombaugh J, Bittinger K, Bushman FD, Costello EK, et al. QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data. Nat Methods. 2010;7(5):335–6. https://doi.org/10.1038/nmeth.f.303.