Chiết xuất đậu đỏ bảo vệ chuột chống lại tổn thương viêm ruột

Springer Science and Business Media LLC - Tập 25 - Trang 349-353 - 2016
Ki-Choon Choi1, Seong-Wan Cho2, Jeong-Chae Lee3
1Grassland and Forage Division, National Institute of Animal Science, Rural Development Administration, Cheonan, Chungnam, Korea
2Department of Pharmaceutical Engineering, Konyang University, Nonsan, Chungnam, Korea
3Research Center of Bioactive Materials, Institute of Oral Biosciences and School of Dentistry, Chonbuk National University, Jeonju, Jeonbuk, Korea

Tóm tắt

Đậu đỏ là một phần trong chế độ ăn uống của văn hóa Hàn Quốc. Các hoạt động chống viêm và chống nhiễm khuẩn của phân đoạn butanol trong chiết xuất ethanol từ đậu đỏ (BF-RBEE) được biết đến. Hoạt động chống viêm ở ruột của BF-RBEE và các cơ chế liên quan đã được nghiên cứu bằng cách sử dụng mô hình chuột bị viêm đại tràng do axit axetic. Việc điều trị bằng đường miệng với BF-RBEE (100 mg/kg trọng lượng cơ thể) đã ức chế sự giảm cân và tổn thương viêm ruột ở chuột bị viêm đại tràng. Điều trị bằng BF-RBEE cũng làm giảm hoạt động myeloperoxidase và nồng độ malondialdehyde tăng lên ở chuột bị viêm đại tràng, và phục hồi mức glutathione bị giảm. BF-RBEE cũng ức chế sự tăng lên của nồng độ mRNA của nitric oxide synthase, interleukin-1β và yếu tố hoại tử khối u-α do axit axetic gây ra. Tương tự, việc điều trị với 1 mg/kg prednisolone đã bảo vệ chuột chống lại tổn thương viêm đại tràng với sự giảm tương ứng của các chỉ số viêm này. Đậu đỏ có thể có lợi trong việc điều trị các bệnh viêm ruột.

Từ khóa

#đậu đỏ #chiết xuất ethanol #BF-RBEE #viêm ruột #mô hình chuột #axit axetic #myeloperoxidase #glutathione #nitric oxide synthase #interleukin-1β #yếu tố hoại tử khối u

Tài liệu tham khảo

Neuman MG. Immune dysfunction in inflammatory bowel disease. Transl. Res. 149: 173–186 (2007) Kho YH, Pool MO, Jansman FG, Harting JW. Pharmacotherapeutic options in inflammatory bowel disease: An update. Pharm. World Sci. 23: 17–21 (2001) Weizman AV, Ahn E, Thanabalan R, Leung W, Croitoru K, Silverberg MS, Steinhart AH, Nguyen GC. Characterization of complementary and alternative medicine use and its impact on medication adherence in inflammatory bowel disease. Aliment Pharm. Ther. 35: 342–349 (2012) Algieri F, Zorrilla P, Rodriguez-Nogales A, Garrido-Mesa N, Bañuelos O, González-Tejero MR, Casares-Porcel M, Molero-Mesa J, Zarzuelo A, Utrilla MP, Rodriguez-Cabezas ME, Galvez J. Intestinal anti-inflammatory activity of hydroalcoholic extracts of Phlomis purpurea L. and Phlomis lychnitis L. in the trinitrobenzenesulphonic acid model of rat colitis. J. Ethnopharmacol. 146: 750–759 (2013) Zhao QW, Huang X, Lou YJ, Weber N, Proksch P. Effects of ethanol extracts from Adzuki bean (Phaseolus angularis Wight.) and Lima bean (Phaseolus lunatus L.) on estrogen and progesterone receptor phenotypes of MCF-7/BOS cells. Phytother. Res. 21: 648–652 (2007) Fang M, Lee SY, Park SM, Choi KC, Lee YJ, Cho HK, Cho SW, Whang WK, Lee JC. Anti-inflammatory potential of Phaseolus calcaratus Roxburgh, an oriental medicine, on LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages. J. Pharm. Pharmacol. 63: 120–128 (2011) Park S, Choi KC, Fang M, Lim YC, Jeon YM, Lee JC. Red bean extract reduces inflammation and increases survival in a murine sepsis model. Food Sci. Biotechnol. 20: 1125–1131 (2011) Baek JA, Son YO, Fang M, Lee YJ, Cho HK, Whang WK, Lee JC. Catechin-7-O-β-D-glucopyranoside scavenges free radicals and protects human Blymphoma BJAB cells on H2O2-mediated oxidative stress. Food Sci. Biotechnol. 20: 151–158 (2011) Camuesco D, Peran L, Comalada M, Nieto A, Di Stasi LC, Rodriguez-Cabezas ME, Concha A, Zarzuelo A, Galvez J. Preventative effects of lactulose in the trinitrobenzenesulphonic acid model of rat colitis. Inflamm. Bowel Dis. 11: 265–271 (2005) Arribas B, Suárez-Pereira E, Ortiz Mellet C, García Fernández JM, Buttersack C, Rodríguez-Cabezas ME, Garrido-Mesa N, Bailon E, Guerra-Hernández E, Zarzuelo A, Gálvez J. Di-D-fructose dianhydride-enriched caramels: Effect on colon microbiota, inflammation, and tissue damage in trinitrobenzenesulfonic acid-induced colitic rats. J. Agr. Food Chem. 58: 6476–6484 (2010) Krawisz JE, Sharon P, Stenson WF. Quantitative assay for acute intestinal inflammation based on myeloperoxidase activity assessment of inflammation in rat and hamster models. Gastroenterolog. 87: 1344–1350 (1984) Rosillo MA, Sanchez-Hidalgo M, Cárdeno A. Protective effect of ellagic acid, anatural polyphenolic compound, in a murine model of Crohn’s disease. Biochem. Pharmacol. 82: 737–745 (2011) González-Mauraza H, Martín-Cordero C, Alarcón-de-la-Lastra C, Rosillo MA, León-González AJ, Sánchez-Hidalgo M. Anti-inflammatory effects of Retama monosperma in acute ulcerative colitis in rats. J. Physiol. Biochem. 70: 163–172 (2014) Kannan N, Guruvayoorappan C. Protective effect of Bauhinia tomentosa on acetic acid induced ulcerative colitis by regulating antioxidant and inflammatory mediators. Int. Immunopharmacol. 16: 57–66 (2013) V VP, Guruvayoorappan C. Protective effect of marine mangrove Rhizophora apiculata on acetic acid induced experimental colitis by regulating antioxidant enzymes, inflammatory mediators and nuclear factor-kappa B subunits. Int. Immunopharmacol. 18: 124–134 (2014) Nagib MM, Tadros MG, El Sayed MI, Khalifa AE. Anti-inflammatory and antioxidant activities of olmesartan medoxomil ameliorate experimental colitis in rats. Toxicol. Appl. Pharm. 271: 106–113 (2013) Peterson CG, Sangfelt P, Wagner M, Hansson T, Lettesjö H, Carlson M. Fecal levels of leukocyte markers reflect disease activity in patients with ulcerative colitis. Scand. J. Clin. Lab. Inv. 67: 810–820 (2007) Strober W, Fuss IJ. Proinflammatory cytokines in the pathogenesis of inflammatory bowel diseases. Gastroenterolog. 140: 1756–1767 (2011) Hasnat MA, Pervin M, Park SR, Jang YC, Lim JH, Kim YJ, Kim YO, Kweon HJ, Lim BO. Anti-inflammatory, counteractive, and preventive effects of orally administrated oat extracts on dextran sulfate sodium-induced colitis in mice. Food Sci. Biotechnol. 24: 619–628 (2015) Youn GS, Kwon DJ, Ju SM, Choi SY, Park J. Curcumin ameliorates TNF-α-induced ICAM-1 expression and subsequent THP-1 adhesiveness via the induction of heme oxygenases-1 in the HaCa T cells. BMB Rep. 46: 410–415 (2013) Tytgat KM, Bovelander FJ, Opdam FJ, Einerhand AW, Buller HA, Dekker J. Biosynthesis of rat MUC2 in colon and its analogy with human MUC2. Biochem. J. 309: 221–229 (1995) Su L, Shen L, Clayburgh DR, Nalle SC, Sullivan EA, Meddings JB, Abraham C, Turner JR. Targeted epithelial tight junction dysfunction causes immune activation and contributes to development of experimental colitis. Gastroenterolog. 136: 551–563 (2009) Koboziev I, Karlsson F, Zhang S, Grisham MB. Pharmacological intervention studies using mouse models of the inflammatory bowel diseases: Translating preclinical data into new drug therapies. Inflamm. Bowel Dis. 17:1229–1245 (2011)