Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Phản ứng trong lục lạp, tế bào chất và ti thể của lát lá dưới căng thẳng thẩm thấu
Tóm tắt
Ảnh hưởng của sự khử nước thẩm thấu đối với các phản ứng chuyển hóa trong ba khoang tế bào khác nhau (lục lạp, tế bào chất và ti thể) đã được nghiên cứu trên các lát lá mỏng từ nhiều loại cây không có sự kiểm soát của khí khổng. Các phản ứng được thử nghiệm là sự cố định CO2 trong ánh sáng (lục lạp), sự cố định CO2 trong bóng tối (tế bào chất) và sự hấp thu O2 trong bóng tối (ti thể). Ở hầu hết các loài thực vật, độ nhạy của việc cố định CO2 trong bóng tối đối với sự khử nước tương tự như độ nhạy của quá trình quang hợp. Trong các lát lá từ một loài thực vật có quá trình chuyển hóa axit Crassulacean (Kalanchoe pinnata), sự cố định CO2 trong bóng tối (đạt được tỷ lệ tương tự như cố định trong ánh sáng) có độ nhạy hơn một chút với căng thẳng thẩm thấu so với quang hợp. Hô hấp tối (được đo bằng sự hấp thu O2) có độ kháng lại với căng thẳng ưu trương đáng kể hơn so với cả hai loại cố định CO2. Trong các chiết xuất lá thô từ rau chân vịt, phản ứng của các enzyme hòa tan từ ba khoang tế bào khác nhau đối với nồng độ cao của các điện phân và hợp chất trung tính đã được kiểm tra và so sánh với dữ liệu in-vivo.
Từ khóa
#khử nước thẩm thấu #lục lạp #tế bào chất #ti thể #chuyển hóa #cố định CO2 #hô hấp tốiTài liệu tham khảo
Arnon, D.J. (1949) Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in Beta vulgaris. Plant Physiol. 24, 1–15
Beer, S., Shomer-Ilan, A., Waisel, Y. (1975) Salt-stimulated Phosphoenolpyruvate carboxylase in Cakile maritima. Physiol. Plant. 34, 293–295
Bergmeyer, H.U., Gawehn, K., Graßl, M. (1970) Enzyme I. In: Methoden der enzymatischen Analyse, vol. 1, pp. 411–412, Bergmeyer, H.U., ed. Verlag Chemie, Weinheim
Böcher, M., Kluge, M. (1977) Der C4-Weg der C-Fixierung bei Spinacia oleracea. I. 14C-Markierungsmuster suspendierter Blattstreifen unter dem Einfluß des Suspensionsmediums. Z. Pflanzenphysiol. 83, 347–361
Clarkson, D.T., Hanson, J.B. (1980) The mineral nutrition of higher plants. Annu. Rev. Plant Physiol. 31, 239–298
Coughlan, S.J., Wyn Jones, R.G. (1980) Some responses of Spinacia oleracea to salt stress. J. Exp. Bot. 31, 883–893
Flowers, T.J., Hanson, J.B. (1969) The effect of reduced water potential on soybean mitochondria. Plant Physiol. 44, 939–945
Flowers, T.J., Troke, P.F., Yeo, A.R. (1977) The mechanism of salt tolerance in halophytes. Annu. Rev. Plant Physiol. 28, 89–121
Hanson, A.D., Hitz, W.D. (1982) Metabolic responses of mesophytes to plant water deficits. Annu. Rev. Plant Physiol 33, 163–203
Hsiao, T.C. (1973) Plant responses to water stress. Annu. Rev. Plant Physiol. 24, 519–570
Kaiser, W.M. (1982) Correlation between changes in photosynthetic activity and changes in total protoplast volume in leaf tissue from hygro-, meso- and xerophytes under osmotic stress. Planta 154, 538–545
Kaiser, W.M., Heber, U. (1981) Photosynthesis under osmotic stress. Effect of high solute concentrations on the permeability properties of the chloroplast envelope and on activities of stroma enzymes. Planta 153, 423–429
Kaiser, W.M., Kaiser, G., Prachuab, P.K., Wildman, S.G., Heber, U. (1981a) Photosynthesis under osmotic stress. Inhibition of photosynthesis of intact chloroplasts, protoplasts and leaf slices at high osmotic potentials. Planta 153, 416–422
Kaiser, W.M., Kaiser, G., Schöner, S., Neimanis, S. (1981b) Photosynthesis under osmotic stress. Differential recovery of photosynthetic activities of stroma enzymes, intact chloroplasts, protoplasts and leaf slices after exposure to high solute concentrations. Planta 153, 530–435
Kaiser, W.M., Paul, J., Bassham, J.A. (1979) Release of photosynthates from mesophyll cells in vitro and in vivo. Z. Pflanzenphysiol. 94, 377–385
O'Leary, M.H. (1982) Phosphoenolpyruvate carboxylase: an enzymologists view. Annu. Rev. Plant Physiol. 33, 297–315
Osmond, C.B. (1976) Ion absorption and carbon metabolism in cells of higher plants. In: Encyclopaedia of plant physiology, N.S., vol. 2 A: Transport in plants II, pp. 347–372, Lüttge, U., Pitman, M.G., eds. Springer, Berlin Heidelberg New York
Paleg, L.g., Douglas, T.J., v. Daal, A., Keech, D.B. (1981) Proline, Betaine and other organic solutes protect enzymes against heat inactivation. Aust. J. Plant Physiol. 8, 107–114
Pedersen, T.A., Kirk, M.R., Bassham, J.A. (1966) Light-dark transients in the levels of intermediate compounds during photosynthesis in air-adapted Chlorella. Physiol. Plant. 19, 219–231
Pollard, A., Wyn Jones, R.G. (1979) Enzyme activities in concentrated solutions of glycinebetaine and other solutes. Planta 144, 291–298
Stewart, C.R. (1981) Proline accumulation: biochemical aspects. In: The physiology and biochemistry of drought resistance in plants, pp. 243–259, Paleg, L.G., Aspinall, D., eds. Academic Press, Sydney New York London Toronto San Francisco
Winter, K., Lüttge, U. (1976) Malate accumulation in leaf slices of Mesembryanthemum cristallinum in relation to osmotic gradients between cells and the medium. Aust. J. Plant Physiol. 3, 653–663