Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Vỏ quả và u cục của Quercus infectoria và các rối loạn sinh dục nữ
Tóm tắt
Quercus infectoria (họ Fagaceae) từ lâu đã được sử dụng trong điều trị tình trạng ra khí hư, sa sinh dục, sự lỏng lẻo, và nhiều rối loạn sinh dục nữ khác. Hai bộ phận quan trọng của cây bao gồm vỏ quả sồi (Jaft-E-Baloot) và u cục sồi (Mazo) được khuyến khích sử dụng cho các rối loạn sinh dục nữ, mặc dù chúng còn có nhiều ứng dụng dược lý khác đối với da, đường tiết niệu và hô hấp. Tannin, thành phần chính của chi này, là đặc điểm chính cho các thuộc tính y học của chúng. Do đó, mục đích của bài tổng quan này được chọn nhằm tăng cường thông tin về Jaft-E-Baloot hoặc Mazo trong việc quản lý các rối loạn sinh dục nữ. Để chuẩn bị bản thảo, thông tin đã được thu thập từ các nguồn tài nguyên điện tử (PubMed, Science Direct, Wiley, Magiran, và Springer), sách, luận văn, v.v. tính đến tháng 2 năm 2020. Kết quả của chúng tôi cho thấy rằng Jaft-E-Baloot là vỏ gỗ mỏng bên trong của quả sồi, trong khi Mazo được hình thành như một phản ứng của cây đối với vết cắn của côn trùng. Mazo là một hợp chất phổ biến trong các nền y học cổ truyền khác nhau, trong khi Jaft-E-Baloot chỉ được biết đến ở Iran. Không có bất kỳ nghiên cứu nào về hai bộ phận này ở các quốc gia châu Âu. Trong y học cổ truyền, các ứng dụng tương tự được áp dụng cho hai bộ phận này, đặc biệt là cho các rối loạn sinh dục nữ, trong khi hầu hết các nghiên cứu hiện đại đều tập trung vào hiệu quả của Mazo đối với ung thư, nhiễm trùng âm đạo, viêm cổ tử cung, sa tử cung - âm đạo, và có một nghiên cứu lâm sàng về Jaft-E-Baloot đối với sự lỏng lẻo âm đạo. Liều an toàn của hai bộ phận này là cao và nhờ vào công dụng tốt của chúng trong việc quản lý các rối loạn sinh dục nữ, đặc biệt là viêm âm đạo - âm hộ, chúng có thể trở thành đối tượng của các nghiên cứu lâm sàng tiếp theo.
Từ khóa
#Quercus infectoria #Jaft-E-Baloot #Mazo #rối loạn sinh dục nữ #y học cổ truyền #tanninTài liệu tham khảo
Gardner Z. McGuffin M. American Herbal Products Association’s botanical safety handbook: CRC press; 2013.
Rakhsha M. Certain curative oak in some settlements in the Zagros region. J Medical History Journal. 2016;3(6):127–37.
Zargari A. Medicinal Plants. Tehran: Tehran University Publication; 1997.
Grieve M. A modern herbal: Courier Corporation; 2013.
Mahmoudvand H, Badparva E, Baharvand Z, Lalehmarzi SHJTB. Anti-Trichomonas vaginalis activities and apoptotic effects of some Iranian medicinal plants. Trop Biomed. 2018;35(2):347–53.
Ahmad W. Ethnopharmacology of Quercus infectoria galls: a review. Hippocratic J Unani Med. 2016;11:105–18.
Ma W, Guo A, Zhang Y, Wang H, Liu Y, Li H. A review on astringency and bitterness perception of tannins in wine. Trends Food Sci Technol. 2014;40(1):6–19. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2014.08.001.
Amin G. The most prevalent traditional medicinal plants in Iran. Tehran: Research Deputy of Iran, University of Medical Sciences and Health Services, Research Center for Ethics and Medical History; 2006.
Baharuddin NS, Abdullah H, Abdul Wahab WN. Anti-Candida activity of Quercus infectoria gall extracts against Candida species. Journal of pharmacy & bioallied sciences. 2015;7(1):15–20. https://doi.org/10.4103/0975-7406.148742.
Mosaddegh M, Naghibi F, Moazzeni H, Pirani A, SJJoe E. Ethnobotanical survey of herbal remedies traditionally used in Kohghiluyeh va Boyer Ahmad province of Iran. J Ethnopharmacol. 2012;141(1):80–95.
Rathod SD, Klausner JD, Krupp K, Reingold AL, Madhivanan P. Epidemiologic features of Vulvovaginal Candidiasis among reproductive-age women in India. Infect Dis Obstet Gynecol. 2012;2012:859071. https://doi.org/10.1155/2012/859071.
Tinh TH, Nuidate T, Vuddhakul V, Rodkhum C. Antibacterial activity of Pyrogallol, a polyphenol compound against Vibrio parahaemolyticus isolated from the central region of Thailand. Procedia Chemistry. 2016;18:162–8. https://doi.org/10.1016/j.proche.2016.01.025.
Lima VN, Oliveira-Tintino CDM, Santos ES, Morais LP, Tintino SR, Freitas TS, et al. Antimicrobial and enhancement of the antibiotic activity by phenolic compounds: Gallic acid, caffeic acid and pyrogallol. Microb Pathog. 2016;99:56–61. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2016.08.004.
Kissinger P. Epidemiology and treatment of trichomoniasis. Curr Infect Dis Rep. 2015;17(6):484. https://doi.org/10.1007/s11908-015-0484-7.
Brown D Jr. Gardnerella vaginalis vaginitis. Am J Obstet Gynecol. 1981;141(7):846–7. https://doi.org/10.1016/0002-9378(81)90720-1.
Chusri S. Voravuthikunchai SJJoam. Detailed studies on Quercus infectoria Olivier (nutgalls) as an alternative treatment for methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections. J Appl Microbiol. 2009;106(1):89–96.
Chung K-T, Wong TY, Wei C-I, Huang Y-W, Lin Y. Tannins and human health: a review. Crit Rev Food Sci Nutr. 1998;38(6):421–64. https://doi.org/10.1080/10408699891274273.
Kumar A, Kumar A. Chronic cervicitis. J Minim Invasive Gynecol. 2018;25(1):4–5. https://doi.org/10.1016/j.jmig.2017.02.015.
Anees S, Mustafa S. Clinical study for the efficacy of Unani formulation in the Management of Vaginal Discharge Associated with cervicitis (Iltehab-E-Unqur Rehm). Int Arch BioMed Clin Res. 2017;3(4):127–9.
Taylor SN, Lensing S, Schwebke J, Lillis R, Mena LA, Nelson AL, et al. Prevalence and treatment outcome of cervicitis of unknown etiology. Sex Transm Dis. 2013;40(5):379–85. https://doi.org/10.1097/OLQ.0b013e31828bfcb1.
Taylor SN. Cervicitis of unknown etiology. Curr Infect Dis Rep. 2014;16(7):409. https://doi.org/10.1007/s11908-014-0409-x.
Meena V, Bansal CL. Study to evaluate targeted management and Syndromic Management in Women Presenting with abnormal vaginal discharge. J Obstet Gynaecol India. 2016;66(Suppl 1):534–40. https://doi.org/10.1007/s13224-016-0879-x.
Swift S, Woodman P, O'Boyle A, Kahn M, Valley M, Bland D, et al. Pelvic organ support study (POSST): the distribution, clinical definition, and epidemiologic condition of pelvic organ support defects. Am J Obstet Gynecol. 2005;192(3):795–806. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2004.10.602.
Granica S, Piwowarski JP, Kiss AK. Ellagitannins modulate the inflammatory response of human neutrophils ex vivo. Phytomedicine. 2015;22(14):1215–22. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2015.10.004.
Paaver U, Matto V, Raal A. Total tannin content in distinct Quercus robur L. galls. J Med Plants Res. 2010;4(8):702–5.
Park M, Cho H, Jung H, Lee H, Hwang KT. Antioxidant and anti-inflammatory activities of tannin fraction of the extract from black raspberry seeds compared to grape seeds. J Food Biochem. 2014;38(3):259–70.
Chacón MR, Ceperuelo-Mallafré V, Maymó-Masip E, Mateo-Sanz JM, Arola L, Guitiérrez C, et al. Grape-seed procyanidins modulate inflammation on human differentiated adipocytes in vitro. Cytokine. 2009;47(2):137–42.
Wijesinghe W, Ahn G, Lee W-W, Kang M-C, Kim E-A, Jeon Y-J. Anti-inflammatory activity of phlorotannin-rich fermented Ecklonia cava processing by-product extract in lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 macrophages. J Appl Phycol. 2013;25(4):1207–13.
Liu J-B, Ding Y-S, Zhang Y, Chen J-B, Cui B-S, Bai J-Y, et al. Anti-inflammatory hydrolyzable tannins from Myricaria bracteata. J Nat Prod. 2015;78(5):1015–25.
Doshani A, Teo REC, Mayne CJ, Tincello DG. Uterine prolapse. BMJ (Clinical research ed). 2007;335(7624):819–23. https://doi.org/10.1136/bmj.39356.604074.BE.
Naim M, Begum W. Efficacy of Quercus infectoria Oliv. Galls in the Management of Uterovaginal Prolapse: A Randomized Clinical Trial International Journal of Science and Research. 2017;6(7):1690–4.
Torre LA, Islami F, Siegel RL, Ward EM, Jemal A. Global Cancer in Women: Burden and Trends. 2017;26(4):444–57. doi:https://doi.org/10.1158/1055-9965.EPI-16-0858 Cancer Epidemiology Biomarkers & Prevention.
MY H, WA WAN. Cytotoxicity effect of Quercus infectoria based vaginal cream on Hela cells and its preliminary in vivo toxicity evaluation towards female rats. Int Med J Malaysia 2018;17(2):746–751.
Zulkifly N. Antiproliferative Effevcts of Quercus infectoria galls extract and its mechanism of cell death on cervical Cancer (HELA) cells: Universiti Sains Malaysia; 2015.
Karcher C, Sadick N. Vaginal rejuvenation using energy-based devices. Int J Women's Dermatol. 2016;2(3):85–8. https://doi.org/10.1016/j.ijwd.2016.05.003.
Lorzadeh N, Sepavand F, Soleimaninezhad M, Kazemirad N. The effect of extract of oak gall for vaginal tightening and rejuvenation in women with vaginal relaxation. Open J Obstet Gynecol. 2016;6(13):879–87.
Mohamed Khir NJ. Toxicity evaluation of Quercus infectoria galls aqueous extract on fertility and embryonic development in female Sprague Dawley rats. Malays J Med Sci. 2016;23:144–55.
Umachigi S, Jayaveera K, Kumar CA, Kumar G, Kumar DK. Studies on wound healing properties of Quercus infectoria. J Trop J Pharmaceutical Res. 2008;7(1):913–9.
Iminjan M, Amat N, Li X-H, Upur H, Ahmat D, BJPo H. Investigation into the toxicity of traditional uyghur medicine Quercus infectoria galls water extract. PLoS One. 2014;9(3):e90756.
Scalbert A. Antimicrobial properties of tannins. Phytochemistry. 1991;30(12):3875–83. https://doi.org/10.1016/0031-9422(91)83426-L.
Redondo LM, Chacana PA, Dominguez JE, Fernandez Miyakawa ME. Perspectives in the use of tannins as alternative to antimicrobial growth promoter factors in poultry. Front Microbiol. 2014;5:118. https://doi.org/10.3389/fmicb.2014.00118.
Li H, Wang Z, Liu Y. Review in the studies on tannins activity of cancer prevention and anticancer. Zhong yao cai Zhongyaocai. 2003;26(6):444–8.