Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Định lượng histamine trong các mẫu cá khác nhau bằng phương pháp voltammetry loại bỏ sóng vuông
Tóm tắt
Mục tiêu của nghiên cứu này là mô tả một phương pháp mới và đơn giản để xác định histamine nhằm phục vụ cho việc phân tích thực phẩm hàng ngày. Phương pháp voltammetric loại bỏ sóng vuông (SWSV) đã được sử dụng để xác định gián tiếp histamine. Phương pháp này dựa trên việc tích lũy phức hợp đồng (II)-histamine lên điện cực giọt thủy ngân treo và quá trình khử phức hợp. Điều kiện tối ưu bao gồm một điện thế tích lũy là -420 mV (so với Ag/AgCl) và thời gian tích lũy là 10 giây. Hai đồ thị hiệu chuẩn tuyến tính đã được thu được với độ dốc lần lượt là 0.078 (μM/μA) và 0.014 (μM/μA). Giới hạn phát hiện được tìm thấy là 3 × 10−7 và 1 × 10−5 M đối với histamine (S/N = 3). Phương pháp SWSV đã được xác thực cho thấy tính tuyến tính tốt cũng như độ lặp lại và độ chính xác nhanh chóng thỏa mãn, cho cả thiết bị và phương pháp. Tác động của các tá dược thông thường và các ion kim loại đến độ cao đỉnh của phức hợp Cu-histamine đã được nghiên cứu. Phương pháp này đã được áp dụng thành công để xác định histamine trong cá mòi đóng hộp (Engraulis encrasicholus), cá Tinca tinca (L.) đông lạnh và cá Cyprinus carpio.
Từ khóa
#histamine #phương pháp voltammetry loại bỏ sóng vuông #phân tích thực phẩm #phức hợp Cu-histamine #độ lặp lạiTài liệu tham khảo
Abu-Zuhri AZ, Hussein AI, Musmar M, Yaish S (1999) Adsorptive stripping voltammetric determination of Albendazole at a hanging mercury drop electrode. Anal Lett 32(15):2965–2975
Akbari-Adergani B, Norouzi P, Ganjali MR, Dinarvand R (2010) Ultrasensitive flow-injection electrochemical method for determination of histamine in tuna fish samples. Food Res Int 43:1116–1122
Akbari-Adergani B, Hosseini H, Shekarchi M, Pirali-Hamedani M (2012) A competitive histamine evaluation of canned tuna fish samples by electrochemical and immunochemical methods for post market surveillance. Int J Food Prop 15:1336–1344
Alonso-Lomillo MA, Dominguez-Renedo O, Matos P, Arcos-Martinez MJ (2010) Disposable biosensors for determination of biogenic amines. Anal Chim Acta 665(1):26–31
Bozina TV, Pil LI, Pokhodzei VF (1999) Determination of histamine in fish products by thin-layer chromatography. J Anal Chem (Translat Zh Anal Khim) 54(12):1163–1166
Bueno-Solano C, López-Cervantes J, Sánchez-Machado DI, Campas-Baypoli ON (2012) HPLC determination of histamine, tyramine and amino acids in shrimp. J Braz Chem Soc 23(1):96–102
Chang SY, Jay T, Munoz J, Kim I, Lee KH (2012) Wireless fast-scan cyclic voltammetry measurement of histamine using WINCS – a proof-of-principle study. Analyst 137:2158–2165
Cunha SC, Faria MA, Fernandes JO (2011) Gas chromatography–mass spectrometry assessment of amines in port wine and grape juice after fast chloroformate extraction/derivatization. J Agric Food Chem 59:8742–8753
Di Fusco M, Federico R, Boffi A, Macone A, Favero G, Mazzei F (2011) Characterization and application of a diamine oxidase from Lathyrus sativus as component of an electrochemical biosensor for the determination of biogenic amines in wine and beer. Anal Bioanal Chem 401:707–716
Hwang BS, Wang JT, Choong YM (2003) A rapid gas chromatographic method for the determination of histamine in fish and fish products. Food Chem 82:329–334
Jadidi-Niaragh F, Mirshafiey A (2010) Histamine and histamine receptors in pathogenesis and treatment of multiple sclerosis. Neuropharmacology 59:180–189
Kim J, Chung TD, Kim H (2001) Determination of biologically active acids based on the electrochemical reduction of quinone in acetonitrile-water mixed solvent. J Electroanal Chem 499:78–84
Kiviranta T, Tuomisto L, Airaksinen EM (1995) Histamine in cerebrospinal fluid of children with febrile convulsions. Epilepsia 36:276–280
Kose S, Kaklikkaya N, Koral S, Tufan B, Buruk KC, Aydin F (2011) Commercial test kits and the determination of histamine in traditional (ethnic) fish products-evaluation against an EU accepted HPLC method. Food Chem 125:1490–1497
Kuklinski NJ, Berglund EC, Engelbrektsson J, Ewing AG (2010) Biogenic amines in microdissected brain regions of Drosophila melanogaster measured with micellar electrokinetic capillary chromatographys electrochemical detection. Anal Chem 82:7729–7735
Ladero V, Linares DM, Fernandez M, Alvarez MA (2008) Real time quantitative PCR detection of histamine-producing lactic acid bacteria in cheese: relation with histamine content. Food Res Int 41:1015–1019
Laviron E (1980) Electroanal Chem 112:1
Łuczak T, Bełtowska-Brzezinska M (2013) Quantitative determination of biogenic amine at gold in the presence of secondary amine during electrochemical oxidation in physiological solution containing ascorbic and uric acids. Electrochim Acta 90:634–640
Lund H, Hammerich O (eds) (2001) Organic electrochemistry, 4th edn. Marcel Dekker Inc, New York, pp 70–73
Mahajan RK, Walia TPS, Sumanjit, Lobana TS (2005) The versatility of salicylaldehyde thiosemicarbazone in the determination of copper in blood using adsorptive stripping voltammetry. Talanta 67:755–759
Mikulski D, Basinski K, Gasowska A, Bregier-Jarzebowska R, Molski M, Lomozik L (2012) Experimental and quantum-chemical studies of histamine complexes with copper (II) ion. Polyhedron 31:285–293
Muresan L, Valera RR, Frébort I, Popescu IC, Csoregi E, Nistor M (2008) Amine oxidase amperometric biosensor coupled to liquid chromatography for biogenic amines determination. Microchim Acta 163:219–225
Nevado Berzas JJ, Castañeda Penalvo G, Rodríguez Dorado RM (2011) Evaluation of non-aqueous capillary zone electrophoresis for the determination of histamine H2 receptor antagonists in pharmaceuticals. Anal Sci 27(4):427–432
Romano A, Klebanowski H, Guerche S, Beneduce L, Spano G, Murat M, Lucas P (2012) Determination of biogenic amines in wine by thin-layer chromatography/densitometry. Food Chem 135(3):1392–1396
Ruiz-Jimenez J, Luque De Castro MD (2006) Pervaporation as interface between solid samples and capillary electrophoresis - determination of biogenic amines in food. J Chromatogr A 1110:245–253
Simo C, Moreno-Arribas MV, Cifuentes A (2008) Ion-trap versus time-of-flight mass spectrometry coupled to capillary electrophoresis to analyze biogenic amines in wine. J Chromatogr A 1195:150–156
Švarc-Gajic J, Stojanovic Z (2011) Determination of histamine in cheese by chronopotentiometry on a thin film mercury electrode. Food Chem 124:1172–1176
U.S. Food and Drug Administration (2001) Fish and fisheries products hazards and controls guidance, 3rd ed
Wopschall RH, Shain I (1967) Adsorption effects in stationary electrode polarography with a chemical reaction following charge transfer. Anal Chem 39:1535–42
Yoshida T, Hamada H, Murakawa H, Yoshimoto H, Tobino Z, Toda K (2012) Determination of histamine in seafood by hydrophilic interaction chromatography/tandem mass spectrometry. Anal Sci 28:179–182
Yoshitake T, Yamaguchi M, Nohta H, Ichinose F, Yoshida H, Yoshitake S, Fuxe K, Kehr J (2003) Determination of histamine in microdialysis samples from rat brain by microbore column liquid chromatography following intramolecular excimer-forming derivatization with pyrene-labeling reagent. J Neurosci Methods 127:11–17
Yoshitake T, Ijiri S, Yoshitake S, Todoroki K, Yoshida H, Kehr J, Nohta H, Yamaguchi M (2012) Determination of histamine in microdialysis samples from guinea pig skin by high-performance liquid chromatography with fluorescence detection. Skin Pharmacol Physiol 25(2):65–72
Zhang Y, Tingley FD, Tseng E, Tella M, Yang X, Groeber E, Liu J, Li W, Schmidt CJ, Steenwyk R (2011) Development and validation of a sample stabilization strategy and a UPLC-MS/MS method for the simultaneous quantitation of acetylcholine (ACh), histamine (HA), and its metabolites in rat cerebrospinal fluid (CSF). J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci 879:2023–2033