Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tác dụng bảo vệ của Antigonon leptopus (Hook et. Arn) trong độc tính gan và thận do cadmium gây ra ở chuột
Tóm tắt
Antigonon leptopus là một loại cây thuốc, lá của nó chưa được báo cáo có tác dụng bảo vệ chống lại độc tính gan thận do cadmium gây ra. Cadmium (Cd) là kim loại độc không cần thiết, được sử dụng trong các quy trình công nghiệp, gây ra rủi ro nghiêm trọng cho sức khỏe con người ở mức cao. Nó chủ yếu tích tụ ở gan và thận. Chuột Wistar albino đực (200-250 g) được chia thành 6 nhóm (n = 6) và có quyền truy cập tự do vào chế độ ăn uống và nước. Cadmium chloride (5 mg/kg trọng lượng cơ thể/ngày) đã được cho uống trong 21 ngày, và chiết xuất methanolic của Antigonon leptopus (ALME) đã được cho nhóm chuột điều trị cadmium với liều hàng ngày là 100, 200 và 400 mg/kg trọng lượng cơ thể; p.o. trong 21 ngày. Cuối cùng, các chỉ số gan và thận cùng với các thông số chống oxy hóa được đánh giá. Kết quả cho thấy, việc sử dụng cadmium đã làm tăng đáng kể (p < 0.05) nồng độ enzym gan trong huyết thanh và nồng độ bilirubin, giảm tổng protein và albumin; ngoài ra, nồng độ axit uric, ure và creatinin cũng tăng trong huyết thanh. Nồng độ Glutathione (GSH) và hoạt động của enzym catalase đã giảm đáng kể (p < 0.05), trong khi đó, sự oxy hóa lipid đã tăng lên trong các mô gan và thận của chuột điều trị cadmium. Việc cho phép ALME trước với cả ba liều thử nghiệm đã làm giảm độc tính gan thận ở chuột điều trị cadmium, với Silymarin (100 mg/kg) được sử dụng làm tiêu chuẩn. Hơn nữa, điều trị ALME đã có khả năng đảo ngược các thay đổi histopathological trong mô gan và thận, và tăng số lượng tế bào máu đỏ, nội dung hemoglobin và giảm thời gian prothrombin và số lượng bạch cầu. Trong cả ba liều thử nghiệm, ALME ở liều 200 mg/kg đã cho thấy hiệu ứng chống oxy hóa đáng kể và cũng có tác dụng có lợi chống lại độc tính gan thận do cadmium gây ra.
Từ khóa
#Antigonon leptopus; độc tính gan; độc tính thận; cadmium; chuột Wistar; chiết xuất methanolic; chống oxy hóaTài liệu tham khảo
Mohamed A. Dkhil, Saleh Al-Quraishy, Marwa MS Diab, Mohamed S Othman, Ahmed M Aref, Ahmed E Abdel Moniem. Food Chem Toxicol. 2004;74:98–106.
El-Habit O, Abdel Moniem AE. Testing the genotoxicity, cytotoxicity, and oxidative stress of cadmium and nickel and their additive effect in male mice. Biol Trace Element Res. 2014;159:364–72.
Bellinger D, Bolger M, Egan K, Feeley M, Schlatter J, Tohyama C. Contaminants: cadmium. World Health Organisation Food Additives Series No 52; 2004.
Jarup L, Hellstrom L, Alfven T, CarlssonMd GA, Persson B. Low level exposure to cadmium and early kidney damage. Occup Environ Med. 2000;57:668–72.
Agency for Toxic substances and Disease Registry ATSDR. Toxicological profile for cadmium. Atlanta: Agency for Toxic substances and Disease Registry; 1999.
Swaroopa Rani V, Sujatha S, Krishna mohan G, Ravi kumar B. Antidiabetic effect of Antigonon leptopus Hook & Arn leaf on Streptozotocin–induced diabetic rats. Pharmacology. 2010;2:922–31.
Ohkawa H, Ohishi N, Yagi K. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbuturic acid reaction. Anal Chem. 1979;95:351–8.
Ellman GL. Tissue sulfhydral groups. Arch Biochem Biophys. 1959;82:70–7.
Kawamura N, Taniguchi N, Gutteridge JMC. Experimental protocols for reactive oxygen and nitrogen species. New York: Oxford University Press Inc; 2000.
Williamson EM, Okpako DT, Evans FJ. Pharmacological methods in phytotherapy: selection, preparation and pharmacological evaluation of plant material (1st edition). Chichester, England: Wiley; 1996. p. 131–54.
Renugadevi J, Prabhu SM. Cadmium induced hepatotoxicity in rats and the protective effect of naringenin. Exp Toxicol Pathol. 2010;62:171–18.
Moss DW, Butterworth PJ. Enzymology and medicine. Pitman Med London. 1974;6:3–11.
Liss G, Greenberg RA, Tamburro CH. Use of serum bile acids in the identification of vinyl chloride hepatotoxicity. Am J of Med. 1985;78:68–73.
Milton prabhu S, Selvrajan N, Hemalatha S, Ramesh Kumar T. Hepatoprotectiveeffect of Andrographis paniculata on cadmium induced toxicity in male wistar rats. Int J Toxicol. 2008;15:21–5.
Satyanarayana U, Chakrapani U. Essentials of biochemistry (2nd edition). New Delhi: Elsevier Health Sciences; 2008.
El B, Risha EF, et al. Protective effects of selenium against cadmium induced hematological disturbances, immunosuppressive, oxidative stress and hepatorenal damage in rats. J Trace Elem Med Biol. 2004;29:104–10.
Godt J, Scheidig F, Grosse-siestrup C, Esche V, Brandenburg P, Reich A, et al. The toxicity of cadmium and resulting hazards for human health. J Occup Med Toxicol. 2006;333:22–9.
Parks R. WebMD medical reference from Healthwise September 15; 2008.
Ashour TH. Preventative effects of caffeic acid phenyl ester on cadmium intoxication induced hematological and blood coagulation disturbances and hepatorenal damage in rats. ISRN Hematol. 2014;3:1–7.
Akinyemi AJ, OnyebuekeN FAO, Onikanni SA. Curcumin inhibits adenosine deaminase and arginase activities in cadmium induced renal toxicity in rat kidney. J Food Drug Analysis. 2016;355:1–9.
Thampi HBS, Manoj G, Leelamma S, Menon VP. Dietary fiber and lipid peroxidation: effect of dietary fiber on levels of lipids and lipid peroxides in high fat diet. India J of Experimental Biol. 1991;29:563–7.
Chance B, Greenstein DS, Roughton RJW. The mechanism of catalase action 1-steady state analysis. Arch Biochem Biophys. 1952;37:301–39.
Shimada T, Takamure Y, Shimada A, Yasutake A. Strain differences of cadmium induced hepatotoxicity in wistar-imamichi and fischer 344 rats: involvement of cadmium accumulation. Toxicology. 2014;203:189–97.