Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Ảnh Hưởng Bảo Vệ của Dịch Chiết Tỏi Aqueous đối với Sự Suy Giảm Do Căng Thẳng Tránh Nước Gây Ra ở Dạ Dày, Ruột Non và Gan: Nghiên Cứu Từ Cả Khía Cạnh Hình Thái và Hóa Sinh
Tóm tắt
Chúng tôi đã điều tra tác động của dịch chiết tỏi aqueous (AGE) đối với sự suy giảm lớp niêm mạc dạ dày và ruột non cũng như parenchyma gan do căng thẳng tránh nước (WAS) gây ra. Chuột Wistar albino được tiếp xúc với WAS (nhóm WAS) trong 5 ngày. Sau khi tiếp xúc với WAS, một liều 1 ml/kg dịch chiết tỏi aqueous (AGE) được tiêm vào khoang bụng (nhóm WAS+AGE). Mẫu dạ dày, ruột non và gan được khảo sát dưới kính hiển vi sáng nhằm phân tích hình thái tổng quát. Địa hình niêm mạc dạ dày và ruột non được khảo sát bằng kính hiển vi điện tử quét, và cấu trúc siêu vi tế bào gan bằng kính hiển vi điện tử truyền qua. Nồng độ malondialdehyde (MDA) và glutathione (GSH) của tất cả các mô cũng được xác định. Trong nhóm WAS, lớp biểu mô của dạ dày cho thấy sự loét ở một số khu vực, mở rộng các tuyến dạ dày và sự thoái hóa của các tế bào tuyến dạ dày. Sự tắc nghẽn mạch máu nghiêm trọng và sự thoái hóa của biểu mô ruột non đã được quan sát thấy. Sự tắc nghẽn mạch máu rõ rệt và các lỗ xoang giãn nở, tế bào Kupffer hoạt hóa với hình thái nổi bật, màng lưới nội bào tử giãn nở, và các nhân picnotic khu trú đã được quan sát trong parenchyma gan. Điều trị bằng AGE đã làm giảm sự thoái hóa của lớp niêm mạc dạ dày và ruột non cũng như parenchyma gan. Nồng độ MDA tăng cao và nồng độ GSH giảm trong nhóm WAS đã được phục hồi về giá trị kiểm soát sau khi điều trị bằng AGE. Dựa trên những kết quả này, việc điều trị bằng AGE đã ngăn chặn đáng kể sự suy giảm do WAS gây ra cả ở khía cạnh hình thái và hóa sinh của niêm mạc đường tiêu hóa và parenchyma gan nhờ khả năng quét gốc tự do mạnh mẽ và tính chất chống oxy hóa.
Từ khóa
#Stress #Dịch Chiết Tỏi Aqueous #SuY Giảm Niêm Mạc #Dạ Dày #Ruột Non #GanTài liệu tham khảo
Chrousos GP, Gold PW (1992) The concepts of stress system disorders: overview of behavioral and physical homeostasis. JAMA 267:1244–1452
Guth PH, Kozbur X (1968) Pathogenesis of gastric microcirculatory and mast cell changes in restraint stress. Am J Dig Dis 13:530–535
Guth PH (1972) Gastric blood flow in restraint stress. Am J Dig Dis 17:807–813
Hemmer J, Hofmann W (1980) Effect of cimetidine upon gastric secretion and mucosal blood flow in rat stressed by restraint. Res Exp Med 176:207–217
Garrick T, Buack S, Bass P (1986) Gastric motility is a major factor in cold restraint-induced lesion formation in rats. Am J Physiol 250:G191–G199
Erin N, Okar I, Oktay S, Ercan F, Arbak S, Yegen BC (1996) Cold-restraint and TRH induced ulcer models demonstrate di.erent biochemical and morphological manifestations in gastric and hepatic tissues in rats: role of calcitonin. Dig Dis Sci 40:55–64
Erin N, Ercan F, Yegen BC, Arbak S, Okar I, Oktay S (2000) The role of capsaicin sensitive nerves in gastric and hepatic injury induced by coldrestraint stress. Dig Dis Sci 45:1889–1899
Santos J, Benjamin M,Yang PC, Prior T, Perdue MH (2000) Chronic stress impairs rat growth and jejunal epithelial barrier function: role of mast cells. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 278:G847–G854
Alptekin N, Seckin S, Dogru-Abbasoglu S, Yelkenci F, Kocak-Toker N, Toker G, Uysal M (1996) Lipid peroxides glutathione, c-glutamylcysteine syntase and c-glutamyltranspeptidase activities in several tissues of rats following water-immersion stress. Pharmacol Res 34:167–169
Spitz JC, Ghandi S, Taveras M, Aoys E, Alverdy JC (1996) Characteristics of the intestinal epithelial barrier during dietary manipulation and glucocorticoid strss. Crit Care Med 24:635–641
Hye-Yeong Haa, Kyoung-Shim Kim, Young Il Yeom, Ja-Kyeong Lee, Pyung-Lim Han (2003) Chronic restraint stress massively alters the expression of genes important for lipid metabolism and detoxification in liver. Toxicol Lett 146:49–63
Dorant E, van den Brandt PA, Goldbohm R, Hermus RJ, Sturmans F (1993) Garlic and its significance for the prevention of cancer in humans: a critical view. Br J Cancer 67:424–429
Kleijnen J, Knipschild P, ter Riet G (1989) Garlic, onions and cardiovascular risk factors. A rewiew of the evidence from human experiments with emphasis on commercially available preparations. Br J Clin Pharmacol 28:535–544
Nakagawa S, Kasuga S, Matsuura H (1989) Prevention of liver damage by aged garlic extract. Phytother Res 3:50–53
Moriguchi T, Takashina K, Chu P, Saito H, Nishiyama N (1994) Prolongation of life span and improved learning in the senescence accelerated mouse produced by aged garlic extract. Biol Pharm Bull 17:1589–1594
Rietz B, Isensee H, Strobach H, Makdessi S, Jacob R (1993) Cardioprotective actions of wild garlic (Allium ursinum) in ischemia and reperfusion. Mol Cell Biochem 9:143–150
Numagami Y, Suto S, Ohnishi ST (1996) Attenuation of rat ischemic brain damage by aged garlic extracts: a possible protecting mechanism as antioxidants. Neurochem Int 29:135–143
Prasad K, Laxdal VA, Yu M, Raney BL (1996) Evaluation of hydroxyl radical-scavenging property of garlic. Mol Cell Biochem 154:55–63
Ide N, Matsuura H, Itakura Y (1996) Scavenging effect of aged garlic extract and its constituents on active oxygen species. Phytother Res 10:340–341
Rabinkov A, Miron T, Konstantinovski L, Wilchek M, Mirelman D, Weiner L (1998) The mode of action of allicin: trapping of radicals and interaction with thiol containing proteins. Biochim Biophys Acta 1379:233–244
Augusti KT, Sheela CG (1996) Antiperoxide effect of S-allyl cysteine sulfoxide, an insulin secretagogue, in diabetic rats. Experimentia 52:115–120
Iqbal M, Athar M (1998) Attenuation of iron-nitrilotriacetate (Fe-NTA)-mediated renal oxidative stress, toxicity and hyperproliferative response by the prophylatic treatment of rats with garlic oil. Food Chem Toxicol 36:485–495
Geng Z, Lau BHS (1997) Aged garlic extract modulates glutathione redox cycle and superoxide dismutase activity in vascular endothelial cells. Phytother Res 36:54–56
Wei Z, Lau BHS (1998) Garlic inhibits free radical generation and augments antioxidant enzyme activity in vascular endothelial cells. Nutr Res 18:61–70
Beuge JA, Aust SD (1978) Microsomal lipid peroxidation. Methods Enzymol 52:302–311
Beutler E (1975) Glutathione in red blood cell metabolism. A manual of biochemical methods. Grune and Stratton, New York, pp 112–114
Garrick T, Buack S, Bass P (1986) Gastric motility is a major factor in cold restraint-induced lesion formation in rats. Am J Physiol 250:G191–G199
Garrick T, Leung FW, Buack S, Hirabayashi K, Guth PH (1986) Gastric motility is stimulated but overall blood flow is unaffected during cold restraint in the rat. Gastroenterology 91:141–148
Bennett EJ, Tennant CC, Piesse C, Badcock CA, Kellow JE (1998) Level of chronic life stress predicts clinical outcome in irritable bowel syndrome. Gut 43:256–261
Collins SM, McHugh K, Jacobson K, Khan I, Riddell R, Murase K, Weingarten HP (1996) Previous inflammation alters the response of the rat colon to stress. Gastroenterology 111:1509–1515
Soderholm JD, Yang PC, Ceponis P, Vohra A, Riddell R, Sherman PM, Perdue MH (2002) Chronic stress induced mast cell-dependent bacterial adherence and initiates mucosal in.ammation in rat intestine. Gastroenterology 123:1099–1108
Saunders PR, Santos J, Hanssen NP, Yates D, Groot JA, Perdue MH (2002) Physical and psychological stress in rats enhances colonic epithelial permeability via peripheral CRH. Dig Dis Sci 47:208–215
Kleiman RI, Adair CG, Ephgrave KS (1988) Stress ulcers: current understanding of pathogenesis and prophylaxis. Drug Intell Clin Pharm 112:399–404
Szelenyi I, Brune K (1988) Possible role of oxygen free radicals in ethanol-induced gastric mucosal damage in rats. Dig Dis Sci 33:865–871
Poli G (1993) Liver damage due to free radicals. Br Med Bull 49:604–620
Del Soldato P, Foschi D, Benoni G, Scarpignato C (1986) Oxygen free radicals interact with indomethacin to cause gastrointestinal injury. Agents Actions 17:484–488
Robert A, Leung FW, Kaiser DG, Guth PH (1989) Potentiation of aspirin-induced gastric leisons by exposure to cold in rats. Role of acid sescretion, mucosal blood flow, and gastric mucosal prostanoid content. Gastroenterology 97:1147–1158
Ross D (1988) Glutathione, free radicals and chemotherapeutic agents. Pharmacol Ther 37:231–249
Hammond CL, Lee TK, Ballatori N (2001) Novel roles for glutathione in gene expression, cell death, and membrane transport of organic solutes. J Hepatol 34:946–954
Reiter RJ, Acuna-Castroviejo D, Tan DX, Burkhart S (2001) Free radicalmediated molecular damage. Ann NY Acad Sci 939:200–215
Inoue M, Kinne R, Tran T, Arias IM (1984) Glutathione transport across hepatocyte plasma membrane. Eur J Biochem 138:491–495
Hirota M, Inoue M, Ando Y, Hirayama K, Morino Y, Sakamoto K, Mori K, Akagi M (1989) Inhibition of stress induced injury in rat by glutathione. Gastoenterology 97:853–859
Khosla P, Karan RS, Bhargava VK (2004) Effect of garlic oil on ethanol induced gastric ulcers in rats. Phytother Res 18(1):87–91
Horie T, Awazu S, Itakura Y, Fuwa T (1992) Identified diallyl polysulfides from an aged garlic extract which protect the membranes from lipid peroxidation. Planta Med 58:468–469
Kourounakis PN, Rekka EA (1991) Effect on active oxygen species of alliin and allium sativum (garlic) powder. Res Commun Chem Pathol Pharmacol 74:249–252
Yamasaki T, Li I, Lau BHS (1994) Garlic compounds protect vascular endothelial cells from hydrogen peroxide-induced oxidant injury. Phytother Res 8:408–412
Banerjee SK, Maulik M, Mancahanda SC, Dinda AK, Gupta SK, Maulik SK (2002) Dose-dependent induction of endogenous antioxidants in rat heart by chronic administration of garlic. Life Sci 70:1509–1518
Pedraza-Chaverri J, Maldonado PD, Medina-Campos ON, Olivares-Corichi IM, Granados-Silvestre MA, Hernandez-Pando R, Ibarra-Rubio ME (2000) Garlic ameliorates gentamicin nephrotoxicity: relation to antioxidant enzymes. Free Radic Biol Med 29:602–611
Maldonado PD, Barrera D, Medina-Campos ON, Hernandez-Pando R, Ibarra-Rubio ME, Pedraza-Chaverri J (2003) Aged garlic extract attenuates gentamicin induced renal damage and oxidative stress in rats. Life Sci 73:2543–2556
Perez-Severiano F, Rodriguez-Perez M, Pedraza-Chaverri J, Maldonado PD, Medina-Campos ON, Ortiz-Plata A, Sanchez-Garcia A, Villeda-Hernandez J, Galvan-Arzate S, Aguilera P, Santamaria A (2004) S-Allylcysteine, a garlic derived antioxidant, ameliorates quinolinic acid-induced neurotoxicity and oxidative damage in rats. Neurochem Int 45:1175–1183
Maldonado PD, Barrera D, Rivero I, Mata R, Medina-Campos ON, Hernandez-Pando R, Pedraza-Chaverri J (2003) Antioxidant S-allylcsteine prevents gentamicin-induced oxidative stress and renal damage. Free Radic Biol Med 35:317–324
Anwar MM, Meki AR (2003) Oxidative stress in streptozotocin-induced diabetic rats: effects of garlic oil and melatonin. Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol 135(4):539–547