Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Sản Xuất Các Alcaloid Indolizidin Có Giá Trị Thực Phẩm Trong Các Chồi Securinega suffruticosa Giữ Trong Hệ Thống Nuôi Cấy Lỏng
Tóm tắt
Các môi trường nuôi cấy chồi vi mô của cây thuốc Trung Quốc Securinega suffruticosa (Pall.) Rehd. đã được thiết lập và đánh giá về sự hiện diện của các alcaloid indolizidin có liên quan đến điều trị, bao gồm securinine (S) và allosecurinine (AS). Các môi trường nuôi cấy được duy trì trong các bình lắc (SF) và một bộ phản ứng cột khí (BCB) sử dụng môi trường nhân giống chồi Murashige được bổ sung với 1.0 mg l−1 benzyladenine (BA), 3.0 mg l−1 2-isopentenyladenine (2iP) và 0.3 mg l−1 1-naphthaleneacetic acid (NAA). Ảnh hưởng của ánh sáng và các chiến lược bổ sung môi trường với precursor sinh tổng hợp (lysine (LY)) và các công thức dinh dưỡng (casein hydrolysate (CH) và nước dừa (CW)) đến sự phát triển sinh khối và sản xuất alcaloid đã được điều tra. Các văn hóa SF được nuôi trong điều kiện có ánh sáng đã mang lại sản lượng lên tới 6.02 mg g−1 trọng lượng khô (DW) cho S và 3.70 mg g−1 DW cho AS, tương ứng với các năng suất sản phẩm là 98.39 và 60.21 mg l−1. Trong số các thí nghiệm bổ sung, bổ sung nước dừa cho thấy hiệu quả nhất đối với các chồi nuôi cấy trong SF, tăng sản lượng sinh khối và năng suất AS tương ứng là 52 và 44%. Nồng độ cao nhất của securinine (3.25 mg g−1 DW) và allosecurinine (3.41 mg g−1 DW) trong các môi trường BCB được đạt được khi bổ sung 1.0 g l−1 LY. Các giá trị này tương ứng với năng suất 42.64 và 44.47 mg cho mỗi bộ phản ứng.
Từ khóa
#Securinega suffruticosa #alcaloid indolizidin #nuôi cấy vi mô #sản xuất sinh khối #dinh dưỡng trong nuôi cấy thí nghiệmTài liệu tham khảo
Yuan, W., Zhu, P., Cheng, K., Meng, C., Wu, F., & Zhu, H. (2007). Natural Product Research, 21, 234–242.
Raj, D., & Łuczkiewicz, M. (2008). Fitoterapia, 79, 419–427.
Zhang, W., Li, J., Lan, P., Sun, P., Wang, Y., Ye, W., & Chen, W. (2011). Journal of Chinese Pharmaceutical Sciences, 20, 203–217.
Rana, S., Gupta, K., Gomez, J., Matsuyama, S., Chakrabarti, A., Agarwal, M., Agarwal, A., Agarwal, M., & Wald, D. (2010). FEBS Journal, 24, 2126–2134.
Xia, Y.-H., Cheng, C.-R., Yao, S.-Y., Zhang, Q., Wang, Y., & Ji, Z.-N. (2011). Fitoterapia, 82, 1258–1264.
Hong, Y., Downey, T., Eu, K., Koh, P., & Cheah, P. (2010). Clinical and Experimental Metastasis, 27, 83–90.
Gupta, K., Chakrabarti, A., Rana, S., Ramdeo, R., Roth, B. L., Agarwal, M. L., Tse, W., Agarwal, M. K., & Wald, D. N. (2011). PLoS ONE, 6, e21203.
Holmes, M., Crater, A., Dhudshia, B., Thadani, A., & Ananvoranich, S. (2011). Experimental Parasitology, 127, 370–375.
Chen, J. H., Levine, S. R., Buergler, J. F., McMahon, T. C., Medeiros, M. R., & Wood, J. L. (2012). Organic Letters, 7, 4531–4533.
Murthy, H. N., Lee, E.-J., & Paek, K.-Y. (2014). Plant Cell Tissue Organ Culture, 118, 1–16.
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). Physiologia Plantarum, 15, 473–497.
Raj, D., Kokotkiewicz, A., Skorys, A., & Łuczkiewicz, M. (2009). Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica, 51(suppl. 1), S60.
Schenk, R. U., & Hildebrandt, A. C. (1972). Canadian Journal of Botany, 50, 199–204.
Huang, L.-C., & Murashige, T. (1976). Tissue Culture Association Management, 3, 539–548.
Jaremicz, Z., Luczkiewicz, M., Kokotkiewicz, A., Krolicka, A., & Sowinski, P. (2014). Biotechnology Letters, 36, 843–853.
Raj, D., Kokotkiewicz, A., & Łuczkiewicz, M. (2009). Journal of Planar Chromatography - Modern TLC, 22, 371–376.
Ide, A. (1991). Biotechnology in Agriculture and Forestry, vol. 15. In Y. P. S. Bajaj (Ed.), Medicinal and Aromatic Plants III (pp. 420–431). Berlin: Springer.
Smetanska, I. (2008). Advances in Biochemical Engineering/Biotechnology, 111, 187–228.
George, E. F., & De Klerk, G.-J. (2007). The Components of Plant Tissue Culture Media I: Macro- and Micro-Nutrients. In E. F. George, M. A. Hall, & G.-J. De Klerk (Eds.), Plant Propagation by Tissue Culture, The Background (3rd ed., Vol. 1, pp. 65–113). Dordrecht: Springer.
Thorpe, T., Stasolla, C., Yeung, E. C., De Klerk, G.-J., Roberts, A., George, E. F., et al. (2007). The Components of Plant Tissue Culture Media II: Organic Additions, Osmotic and pH Effects, and Support Systems. In E. F. George, M. A. Hall, & G.-J. De Klerk (Eds.), Plant Propagation by Tissue Culture, The Background (Vol. 1, pp. 115–173). Dordrecht: Springer.
Kokotkiewicz, A., Luczkiewicz, M., Kowalski, W., Badura, A., Piekus, N., & Bucinski, A. (2013). Applied Microbiology and Biotechnology, 97, 8467–8477.
Wysokińska, H. (1979). PhD Thesis, Medical University of Lodz, Lodz, Poland.
Steingroewer, J., Bley, T., Georgiev, V., Ivanov, I., Lenk, F., Marchev, A., & Pavlov, A. (2013). Engineering in Life Science, 13, 26–38.
Paek, K. Y., Chakrabarty, D., & Hahn, E. J. (2005). Plant Cell Tissue Organ Culture, 81, 287–300.
Hvoslef-Eide, A. K., & Preil, W. (2005). Liquid Culture Systems for in vitro Plant Propagation. Dordrecht: Springer.