Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Sự chuẩn bị trước với dung dịch muối ưu trương có thể làm tăng sự giải phóng interleukin 10 nội sinh để làm giảm tổn thương thiếu máu tái tưới máu ở gan
Tóm tắt
Tổn thương gan do thiếu máu tái tưới máu (I/R) xảy ra trong nhiều trường hợp lâm sàng. Nhiều bước liên quan đến tổn thương gan do I/R, bao gồm sự phóng thích nhiều phân tử viêm và sự xâm nhập của bạch cầu trung tính vào gan. Các nghiên cứu gần đây cho thấy dung dịch muối ưu trương (HTS) có tác dụng chống viêm mạnh mẽ và có thể ức chế nhiều chức năng của bạch cầu trung tính. Do đó, việc chuẩn bị trước với HTS có thể làm giảm tổn thương gan liên quan đến I/R. Trong nghiên cứu này, chuột được chia thành ba nhóm: nhóm giả phẫu (nhóm S), nhóm I/R gan (nhóm I/R), và nhóm chuẩn bị trước bằng HTS (nhóm HTS). Hoạt độ ALT huyết thanh và myeloperoxidase (MPO) được xác định. Nồng độ yếu tố hoại tử khối u α (TNF-α) và interleukin 10 (IL-10) trong huyết thanh được xác định bằng phương pháp ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay). Phân tích phản ứng chuỗi polymerase phiên bản ngược (RT-PCR) được sử dụng để đánh giá sự biểu hiện mRNA của TNF-α và IL-10. Sự biểu hiện protein của TNF-α, IL-10, STAT3 và STAT3 phosphorylated được phân tích bằng phương pháp Western blot. Kết quả cho thấy việc chuẩn bị trước bằng HTS có thể làm tăng sự giải phóng IL-10 nội sinh thông qua việc kích hoạt STAT3 trong quá trình tổn thương gan do I/R. Mức ALT huyết thanh, hoạt độ MPO trong gan, sự hình thành TNF-α và sự xâm nhập của bạch cầu trung tính vào gan được ức chế ở nhóm HTS. Do đó, chúng tôi kết luận rằng chuẩn bị trước bằng HTS làm giảm tổn thương gan do I/R bằng cách tăng cường sự giải phóng IL-10 nội sinh.
Từ khóa
#Ischemia #Reperfusion injury #Liver #Hypertonic saline #Neutrophils #Interleukin 10Tài liệu tham khảo
Jaeschke H (2003) Molecular mechanisms of hepatic ischemia-reperfusion injury and preconditioning. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol 284(1):15–26
Serracino-Inglott F, Habib NA, Mathie RT (2001) Hepatic ischemia-reperfusion injury. Am J Surg 181(2):160–166
Lentsch AB, Kato A, Yoshidome H, McMasters KM, Edwards MJ (2000) Inflammatory mechanisms and therapeutic strategies for warm hepatic ischemia/reperfusion injury. Hepatology 32(2):169–173
Staudenmayer KL, Maier RV, Jelacic S, Bulger EM (2005) Hypertonic saline modulates innate immunity in a model of systemic inflammation. Shock 23(5):459–463
Moore FA, McKinley BA, Moore EE (2004) The next generation in shock resuscitation. Lancet 363(9425):1988–1996
Attuwaybi B, Kozar RA, Gates KS, Moore-Olufemi S, Sato N, Weisbrodt NW, Moore FA (2004) Hypertonic saline prevents inflammation, injury, and impaired intestinal transit after gut ischemia/reperfusion by inducing heme oxygenase 1 enzyme. J Trauma 56(4):749–758
Gurfinkel V, Poggetti RS, Fontes B, da Costa Ferreira Novo F, Birolini D (2003) Hypertonic saline improves tissue oxygenation and reduces systemic and pulmonary inflammatory response caused by hemorrhagic shock. J Trauma 54(6):1137–1145
Wade CE (2002) Hypertonic saline resuscitation in sepsis. Crit Care 6(5):397–398
Okaya T, Lentsch AB (2003) Cytokine cascades and the hepatic inflammatory response to ischemia and reperfusion. J Invest Surg 16(3):141–147
Kataoka M, Shimizu H, Mitsuhashi N, Ohtsuka M, Wakabayashi Y, Ito H, Kimura F, Nakagawa K, Yoshidome H, Shimizu Y, Miyazaki M (2002) Effect of cold-ischemia time on C-X-C chemokine expression and neutrophil accumulation in the graft liver after orthotopic liver transplantation in rats. Transplantation 73(11):1730–1735
Yonezawa K, Yamamoto Y, Yamamoto H, Ishikawa Y, Uchinami H, Taura K, Nakajima A, Yamaoka Y (2001) Suppression of tumor necrosis factor-alpha production and neutrophil infiltration during ischemia-reperfusion injury of the liver after heat shock preconditioning. J Hepatol 35(5):619–627
Hisama N, Yamaguchi Y, Okajima K, Uchiba M, Murakami K, Mori K, Yamada S, Ogawa M (1996) Anticoagulant pretreatment attenuates production of cytokine-induced neutrophil chemoattractant following ischemia-reperfusion of rat liver. Dig Dis Sci 41(7):1481–1486
Takamatsu Y, Shimada K, Chijiiwa K, Kuroki S, Yamaguchi K, Tanaka M (2004) Role of leukotrienes on hepatic ischemia/reperfusion injury in rats. J Surg Res 119(1):14–20
Takeuchi D, Yoshidome H, Kato A, Ito H, Kimura F, Shimizu H, Ohtsuka M, Morita Y, Miyazaki M (2004) Interleukin 18 causes hepatic ischemia/reperfusion injury by suppressing anti-inflammatory cytokine expression in mice. Hepatology 39(3):699–710
Fondevila C, Busuttil RW, Kupiec-Weglinski JW (2003) Hepatic ischemia/reperfusion injury—a fresh look. Exp Mol Pathol 74(2):86–93
Welborn MB 3rd, Moldawer LL, Seeger JM, Minter RM, Huber TS (2003) Role of endogenous interleukin-10 in local and distant organ injury after visceral ischemia-reperfusion. Shock 20(1):35–40
Yang Z, Zingarelli B, Szabo C (2000) Crucial role of endogenous interleukin-10 production in myocardial ischemia/reperfusion injury. Circulation 101(9):1019–1026
Yoshidome H, Kato A, Edwards MJ, Lentsch AB (1999) Interleukin-10 suppresses hepatic ischemia/reperfusion injury in mice: implications of a central role for nuclear factor kappaB. Hepatology 30:203–208
Murao Y, Loomis W, Wolf P, Hoyt DB, Junger WG (2003) Effect of dose of hypertonic saline on its potential to prevent lung tissue damage in a mouse model of hemorrhagic shock. Shock 20:29–34
Rotstein OD (2000) Novel strategies for immunomodulation after trauma: revisiting hypertonic saline as a resuscitation strategy for hemorrhagic shock. J Trauma 49:580–583
Tone M, Powell MJ, Tone Y, Thompson SA, Waldmann H (2000) IL-10 gene expression is controlled by the transcription factors Sp1 and Sp3. J Immunol 165:286–291
Benkhart EM, Siedlar M, Wedel A, Werner T, Ziegler-Heitbrock HW (2000) Role of Stat3 in lipopolysaccharide-induced IL-10 gene expression. J Immunol 165:1612–1617