Huyết tương giàu tiểu cầu (PRP) là một chất kích thích sinh học trong điều trị viêm mũi teo nguyên phát
Tóm tắt
Viêm mũi teo nguyên phát (1ry AR) là một bệnh lý mũi mạn tính đặc trưng bởi sự mất đi khả năng làm sạch của màng nhầy và sự xuất hiện của dịch nhầy dính và các vết khô gây ra một mùi khó chịu đặc trưng, thường là hai bên. Đã có nhiều phương pháp điều trị khác nhau được thử nghiệm, nhưng vẫn chưa có sự thống nhất về một phương pháp điều trị chữa khỏi với hiệu quả lâu dài. Mục đích của nghiên cứu này là đánh giá giá trị của huyết tương giàu tiểu cầu như một chất kích thích sinh học trong việc tăng tốc độ lành bệnh ở viêm mũi teo nguyên phát.
Tổng cộng có 78 trường hợp được chẩn đoán lâm sàng mắc viêm mũi teo nguyên phát đã được đưa vào nghiên cứu. Nội soi mũi, bảng hỏi kết quả mũi xoang 25 (Sino-Nasal Outcome Test-25), đánh giá khả năng làm sạch màng nhầy bằng bài kiểm tra thời gian chuyển tiếp saccharine và mẫu sinh thiết đã được thực hiện trước 1 tháng và 6 tháng sau khi áp dụng huyết tương giàu tiểu cầu ở nhóm A (trường hợp) và huyết tương nghèo tiểu cầu ở nhóm B (đối chứng).
Tất cả bệnh nhân trong nhóm A đều cho thấy sự cải thiện nội soi và giảm tỷ lệ mắc phải các triệu chứng thường gặp trước khi tiêm huyết tương giàu tiểu cầu bao gồm vết khô mũi, 36 (92,30%); mùi hôi, 31 (79,48%); tắc nghẽn mũi, 30 (76,92%); không ngửi được, 17 (43,58%); và chảy máu mũi, 7 (17,94%) xuống còn vết khô mũi, 9 (23,07%); mùi hôi, 13 (33,33%); tắc nghẽn mũi, 14 (35,89%); không ngửi được, 13 (33,33%); và chảy máu mũi, 3 (7,69%), 6 tháng sau, và điều này được phản ánh qua sự giảm điểm số của bài kiểm tra kết quả mũi xoang (Sino-Nasal Outcome Test-25) với điểm trung bình từ 40 trước khi tiêm huyết tương giàu tiểu cầu xuống còn 9, 6 tháng sau, Tương tự, thời gian làm sạch màng nhầy đã được giảm đáng kể sau khi tiêm huyết tương giàu tiểu cầu; bài kiểm tra thời gian chuyển tiếp saccharine ban đầu có trung bình 1980 giây và giảm xuống còn 920 giây, 6 tháng sau tiêm huyết tương giàu tiểu cầu.
Việc sử dụng huyết tương giàu tiểu cầu như một chất kích thích sinh học có thể là một phương pháp sáng tạo ít xâm lấn, hiệu quả trong việc phục hồi sự thoái hóa mô thông qua các nghiên cứu trong tương lai.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Sampan S. Bist, Manisha Bisht and Jagdish P. Purohit: [Primary atrophic rhinitis: a clinical profile, microbiological and radiological study] ISRN Otolaryngology Volume 2012, Article ID 404075, 6 pages.
Lobo CJ, Hartley C, Farrington WT (1998) Closure of the nasal vestibule in atrophic rhinitis – a new non-surgical technique. J Laryngol Otol 112:543–546
Zohar Y, Talmi YP, Strauss M, Finkelstein Y, Shvilli Y (1990) Ozena revisited. J Otolaryngol 19:345–349
Dutt SN, Kameswaran M (2005) The aetiology and management of atrophic rhinitis. J Laryngol Otol 119(11):843–852
V. N. Chaturvedi, S. Kameswaran and M.Kameswaran: [Atrophic rhinitis and nasal miasis, in ENT disorders in a tropical environment ] MERF Publications, 1999 2nd edition: 119–128.
Bunnag C, Jareoncharsri P, Tansuriyawong P, Bhoth-isuwan W, Chantarakul N (1999) Characteristics of atrophic rhinitis in Thai patients at the Siriraj Hospital. Rhinology 37(3):125–130
Artiles F, Bordes A, Conde A, Dominguez S, Ramos JL, Suarez S (2000) Chronic atrophic rhinitis and Klebsiella ozaenae infection. Enfermedades Infecciosas y Microbiologia Clinica 18(6):299–300
Chen HS (1984) Desquamation and squamotransformation of rhinomucosa as a prodromal sign of atrophic rhinitis. J Otorhinolaryngol Its Related Specialties 46(6):327–328
Udrescu S, Firică D (1971) Proposed modification of the Lautenschläger method for re-calibration of the nasal fossae in ozena. Otorinolaringologie. 16:275–278
Sajjad A (2011) A new technique for nasal stent fabrication for atrophic rhinitis: a clinical report. J. Prosthodont 20:326–328
Taylor M, Young A (1961) Histopathological and histochemical studies on atrophic rhinitis. J Laryngol Otol 75:574–590
Goldenberg D, Danino J, Netzer A, Joachims HZ (2000) Plastipore implants in the surgical treatment of atrophic rhinitis: technique and results. Otolaryngol Head Neck Surg 122:794–797
SN Dutt, M Kameswaran: [ The aetiology and management of atrophic rhinitis]. J Laryngol Otol. 2005; 119: 843–852
El Kholy A, Habib O, Abdel-Monem MH, Abu SS (1998) Septal mucoperichondrial flap for closure of nostril in atrophic rhinitis. Rhinology 36:202–203
Sinha SM, Sardana DS, Rjvanshi VS (1977) A nine-year review of 273 cases of atrophic rhinitis and its management. J Laryngol Otol 91:591–600
Sclafani AP, Azzi J (2015) Platelet preparations for use in facial reju-venation and wound healing: a critical review of current literature. Aesthet Plast Surg 39:495–505
Friji MT, Gopalakrishnan S, Verma SK, Parida PK, Mohapatra DP (2014) New regenerative approach to atrophic rhinitis using autologous lipoaspirate transfer and platelet rich plasma in five patients. Clin Otolaryngol Oct 39(5):289–292. https://doi.org/10.1111/coa.12269
Payne SC.: [Empty nose syndrome: what are we really talking about?]. Otolaryngol Clin North Am 2009; 42:331—7 [ix-x].
Rodrigues F, Freire AP, Uzeloto J, Xavier R, Ito J, Rocha M, Calciolari R, Ramos D, Ramos E (2019) Particularities and Clinical Applicability of Saccharin Transit Time Test. Int Arch Otorhinolaryngol 23:229–240
Parkins CS, Fowler JF, Yu S (1983) [Murine model of lip epidermal/mucosal reactions to X-irradiation]. Radiother. Oncol. 1:159–165