Chuỗi amino acid một phần của ECP31, một protein tế bào phôi từ cà rốt, và sự gia tăng tích lũy của nó do axit abscisic trong các phôi sinh dưỡng

Planta - Tập 186 - Trang 337-342 - 1992
Tomohiro Kiyosue1, Jiro Nakayama2, Shinobu Satoh1, Akira Isogai2, Akinori Suzuki2, Hiroshi Kamada1, Hiroshi Harada1
1Institute of Biological Sciences, University of Tsukuba, Ibaraki, Japan
2Department of Agricultural Chemistry, Faculty of Agricultural Science, University of Tokyo, Tokyo, Japan

Tóm tắt

ECP31, một protein tế bào phôi từ cà rốt (Daucus carota L.), đã được tinh chế qua các bước sắc ký cột liên tiếp và được phân giải bằng protease V8 trên màng nitrocellulose. Các peptide thu được đã được tách ra bằng sắc ký cột đảo ngược và được xác định trình tự. Các trình tự thu được tương đồng 70–80% với các protein phong phú trong giai đoạn phôi muộn (D34) từ bông (Baker et al, 1988, Plant Mol. Biol. 11, 227–291). Mức độ ECP31 trong các phôi sinh dưỡng của cà rốt đã tăng lên khi điều trị các phôi với 3,7 · 10−6 M axit abscisic (ABA) trong 48 giờ, và không có sự thay đổi nào trong mức độ tăng cường này trong vòng 192 giờ khi có mặt của ABA. Không quan sát thấy hiệu ứng tăng cường tương tự của ABA đối với mức độ ECP31 trong callus phôi hoặc các phân đoạn của cuống cà rốt. Trong một phân tích miễn dịch mô học, ECP31 được tìm thấy trong mô biểu bì và trong hệ thống mạch của các phôi sinh dưỡng đã được điều trị bằng ABA.

Từ khóa

#ECP31 #protein tế bào phôi #cà rốt #abscisic acid #phôi sinh dưỡng #sắc ký cột #trình tự amino acid

Tài liệu tham khảo

Aebersold, R.H., Leavitt, J., Saavedra, R.A., Hood, L.E., Kent, S.B.H. (1987) Internal amino acid sequence analysis of proteins separated by one-or two-dimensional gel electrophoresis after in situ protease digestion on nitrocellulose. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84, 6970–6974 Baker, J.C., Steele, C., Dure, L., III (1988) Sequence and characterization of 6 Lea proteins and their genes from cotton. Plant Mol. Biol. 11, 277–291 Borkird, C., Choi, J., Jin, Z., Franz, G., Hatzopoulos, P., Chorneau, R., Bonas, U., Pelegri, F., Sung, Z.R. (1988) Developmental regulation of embryonic genes in plants. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85, 6399–6403 Choi, J.H., Liu, L.S., Borkird, C., Sung, Z.R. (1987) Cloning of genes developmentally regulated during plant embryogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84, 1906–1910 Close, T.J., Kortt, A.A., Chandler, P.M. (1989) A cDNA-based comparison of dehydration-induced proteins (dehydrins) in barley and corn. Plant Mol. Biol 13, 95–108 De Vries, S.C., Booij, H., Meyerink, P., Huisman, G., van Spanje, M., Wilde, D., Thomas, T.L., van Kammen, A. (1988a) Acquisition of embryogenic potential in carrot cell suspension cultures. Planta 176, 196–204 De Vries, S.C., Booij, H., Janssens, R., Vogels, R., Saris, L., Lo Schiavo, F., Terzi, M., van Kammen, A. (1988b) Carrot somatic embryogenesis depends on the phytohormone-controlled expression of correctly glycosylated extracellular proteins. Genes and Devel. 2, 462–476 Dure, L., III, Crouch, M., Harada, J., Ho, T-H.D., Mundy, J., Quatrano, R., Thomas, T., Sung, Z.R. (1989) Common amino acid sequence domains among the LEA proteins of higher plants. Plant Mol. Biol. 12, 475–486 Galau, G.A., Hughes, D.W., Dure, L. III (1986) Abscisic acid induction of cloned cotton late embryogenesis-abundant (Lea) mRNAs. Plant Mol. Biol. 7, 155–170 Kiyosue, T., Dong, J.G., Satoh, S., Kamada, H., Harada, H. (1990) Detection of an embryogenic cell antigen in carrot. Plant Cell Physiol. 31, 947–950 Kiyosue, T., Satoh, S., Kamada, H., Harada, H. (1991) Purification and immunohistochemical detection of an embryogenic cell protein in carrot. Plant Physiol. 95, 1077–1083 Laemmli, U.K. (1970) Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 227, 680–685 Lo Schiavo, F., Giuliano, G., De Vries, S.C., Genga, A., Bollini, R., Pitto, L., Cozzani, F., Nuti-Ronchi, V., Terzi, M. (1990) A carrot cell variant temperature-sensitive for somatic embryogenesis reveals a defect in the glycosylation of extracellular proteins. Mol. Gen. Genet. 223, 385–393 Murashige, T., Skoog, F. (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15, 473–497 Nomura, K., Komamine, A. (1986) Molecular mechanisms of somatic embryogenesis. Oxford. Surv. Plant Mol. Biol. 3, 456–466 Satoh, S., Kamada, H., Harada, H., Fujii, T. (1986) Auxin-controlled glycoprotein release into the medium of embryogenic carrot cells. Plant Physiol. 81, 931–933 Schnall, J.A., Cooke, T.J., Cress, D.E. (1988) Genetic analysis of somatic embryogenesis in carrot cell culture: Initial characterization of six classes of temperature-sensitive variants. Dev. Genet. 9, 49–67 Skriver, K., Mundy, J. (1990) Gene expression in response to abscisic acid and osmotic stress. Plant Cell 2, 503–512 Steward, F.C., Mapes, M.O., Smith, J. (1958) Growth and organized development of cultured cells. I. Growth and division of freely suspended cells. Am. J. Bot. 45, 693–703 Sung, Z.R., Feinberg, A., Chorneau, R., Borkid, C., Turner, I., Smith, J., Terzi, M., Lo Schiavo, F., Giuliano, G., Pitto, L., Nuti-Ronchi, V. (1984) Developmental biology of embryogenesis from carrot cultures. Plant Mol. Biol. Reptr. 2, 3–14 Wilen, R.W., Mandel, R.M., Pharis, R.P., Holbrook, L.A., Moloney, M.M. (1990) Effects of abscisic acid and high osmoticum on storage protein gene expression in microspore embryos of Brassica napus. Plant Physiol 94, 875–881 Wilde, H.D., Nelson, W.S., Booij, H., De Vries, S.C., Thomas, T.L. (1988) Gene-expression programs in embryogenic and nonembryogenic carrot cultures. Planta 176, 205–211