Sự biểu hiện quá mức của đồng hình NPR1 ở lúa dẫn đến việc kích hoạt liên tục phản ứng phòng thủ và nhạy cảm với ánh sáng

Molecular Plant-Microbe Interactions - Tập 18 Số 6 - Trang 511-520 - 2005
Mawsheng Chern1, Heather A. Fitzgerald, Patrick E. Canlas, Duroy A. Navarre, Pamela C. Ronald2,3
1Department of Plant Pathology, University of California, Davis 95616, USA
2E-mail Address: [email protected]
3e-mail:

Tóm tắt

NPR1/NIM1 của Arabidopsis là một yếu tố điều tiết chính trong khả năng kháng bệnh thu được theo hệ thống (SAR), mang lại khả năng kháng bền vững rộng rãi. Các báo cáo trước đây cho thấy lúa có một con đường kháng bệnh tương tự như con đường SAR của Arabidopsis. Ở đây, chúng tôi báo cáo việc phân lập và đặc tính hóa một đồng hình NPR1 ở lúa (NH1). Các cây lúa chuyển gen biểu hiện quá mức NH1 (NH1ox) đạt được mức độ kháng cao đối với Xanthomonas oryzae pv. oryzae. Biểu hiện kháng này có thể di truyền và tương quan với sự hiện diện của gen chuyển và sự giảm tăng trưởng của vi khuẩn. Phân tích Northern cho thấy rằng cây lúa NH1ox tự phát kích hoạt các gen phòng thủ, trái ngược với ngô Arabidopsis biểu hiện quá mức NPR1, nơi mà các gen phòng thủ không được kích hoạt cho đến khi có sự khởi động. NH1 kiểu hoang dã, nhưng không phải là một đột biến điểm tương ứng với npr1-1, tương tác mạnh mẽ với yếu tố phiên mã rTGA2.2 của lúa trong thí nghiệm lai hai thủy tinh. Các cây NH1ox trồng trong nhà kính phát triển các đốm giống như tổn thương trên lá ở giai đoạn trước ra hoa mặc dù không quan sát thấy các hiệu ứng phát triển khác. Tuy nhiên, khi được trồng trong các buồng tăng trưởng (GCs) dưới ánh sáng yếu, các cây NH1ox bị lùn lại, cho thấy có độ nhạy cảm cao hơn với ánh sáng. Các cây NH1ox trồng trong GC cho thấy mức axit salicylic (SA) cao hơn nhiều so với kiểu hoang dã, trong khi các cây NH1ox trồng trong nhà kính chứa ít SA hơn. Những kết quả này chỉ ra rằng NH1 có thể tham gia vào việc điều tiết SA phản ứng với thay đổi môi trường.

Từ khóa


Tài liệu tham khảo

10.1016/S0092-8674(00)81858-9

10.2307/3869945

10.1073/pnas.95.11.6531

10.1046/j.1365-313x.2001.01070.x

10.1007/BF01969712

10.1111/j.1365-313X.2004.02054.x

10.1073/pnas.92.14.6602

Dellaporta, S. L., Wood, J., and Hicks, J. B. 1984. Pages 36-37 in: Molecular Biology of Plants. A Laboratory Course Manual. M. Russell, ed. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY, U.S.A.

10.1105/tpc.12.2.279

10.1016/1369-5266(88)80053-0

10.1105/tpc.001628

10.1094/MPMI.2004.17.2.140

10.1094/MPMI.2001.14.9.1114

10.1046/j.1365-313X.1996.10010061.x

10.1046/j.1365-313X.2002.01338.x

10.1016/S1369-5266(00)00177-1

Glazebrook J., 1996, Genetics, 143, 973, 10.1093/genetics/143.2.973

10.1105/tpc.8.4.629

10.1105/tpc.012211

Kauffman H. E., 1973, Plant Dis. Rep., 57, 537

10.1105/tpc.12.12.2339

10.1016/S1369-5266(02)00275-3

10.1105/tpc.016980

10.1046/j.1365-313X.2002.01297.x

10.1016/S1360-1385(03)00108-0

10.1094/MPMI.1998.11.7.643

10.1046/j.1365-313x.2000.00836.x

10.1016/S0092-8674(03)00429-X

10.1016/j.tplants.2003.12.005

10.1105/tpc.10.9.1571

Qi, M., and Yang, Y. 1999. Differential expression of rice PR-1 and PR-10 genes induced by blast fungus, elicitor, and chemical treatments. (Abstr.) Phytopathology 89:S62

Rohilla R., 2002, Sci., 58, 63

10.2307/3870231

10.1105/tpc.9.3.425

10.1023/A:1008791223608

10.1094/MPMI.1997.10.1.69

10.1104/pp.108.2.633

10.1016/0885-5765(91)90011-6

10.1105/tpc.009159

10.1105/tpc.000679

10.1094/MPMI.2000.13.8.869

10.1073/pnas.96.11.6523

10.1105/tpc.014894

10.1094/MPMI.2000.13.2.191