Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tối ưu hóa quy trình chiết xuất các alcaloid sinh học và chất chống oxy hóa từ củ rễ coptis (Coptis Chinensis Franch) bằng phương pháp bề mặt đáp ứng
Tóm tắt
Điều kiện tối ưu cho việc chiết xuất các alcaloid sinh học và chất chống oxy hóa từ củ rễ coptis đã được xác định bằng cách sử dụng phương pháp bề mặt đáp ứng (RSM). Một thiết kế tổ hợp trung tâm nhỏ (SCD) đã được áp dụng để điều tra ảnh hưởng của 3 biến quy trình như thời gian chiết xuất (3–7 giờ), nồng độ ethanol (0–100%) và tỷ lệ dung môi so với mẫu (25–45 mL/g) trong quá trình chiết xuất. Phân tích phương sai cho thấy mô hình phù hợp có ý nghĩa thống kê cao, cho thấy mô hình này đáng tin cậy trong việc dự đoán. Các điều kiện tối ưu cho các alcaloid và khả năng chống oxy hóa được xác định bằng phân tích ridges, và dưới các điều kiện tối ưu, giá trị phản hồi dự đoán tương ứng cho hàm lượng berberine, hàm lượng palmatine và khả năng chống oxy hóa lần lượt là 747,2 μg tương đương chloride berberine/mL, 168,34 μg tương đương chloride palmatine/mL và 2,99 mmol/L tương đương Trolox, cho thấy sự phù hợp tốt với các giá trị dự đoán, chỉ ra sự thành công của RSM trong việc tối ưu hóa điều kiện chiết xuất.
Từ khóa
#alcaloid sinh học #chất chống oxy hóa #củ rễ coptis #phương pháp bề mặt đáp ứng #tối ưu hóa chiết xuấtTài liệu tham khảo
Wagner H. Chromatographic Fingerprint Analysis of Herbal Medicines. 2nd ed. Springer Wien, New York, NY, USA. p. 301 (2011)
Wang YM, Zhao LB, Lin SL, Dong SS, An DK. Determination of berberine and palmatine in Cortex phellodendron and Chinese patent medicines by HPLC. Acta Pharmacol. Sin. 24: 275–279 (1989)
Kuo CL, Chi CW, Liu TY. The anti-inflammatory potential of berberine in vitro and in vivo. Cancer Lett. 203: 127–137 (2004)
Kyoko H, Kazuki M, Yasuo N, Toshimitsu H, Shinichi U. Antiviral activity of berberine and related compounds against human cytomegalovirus. Bioorg. Med. Chem. Lett. 17: 1562–1564 (2007)
Kong W, Wei J, Abidi P, Lin M, Inaba S, Li C, Wang YL, Wang ZZ, Si SY, Pan HN, Wang SK, Wu JD, Wang Y, Li ZR, Liu JW, Jiang JD. Berberine is a novel cholesterol-lowering drug working through a unique mechanism distinct from statins. Nat. Med. 10: 1344–1351 (2004)
Zhou H, Mineshita S. The effect of berberine chloride on experimental colitis in rats in vivo and in vitro. J. Pharmacol. Exp. Ther. 294: 822–829 (2000)
Zhou L, Yang Y, Wang X, Liu S, Shang W, Yuan G, Li F, Tang J, Chen M, Chen J. Berberine stimulates glucose transport through a mechanism distinct from insulin. Metabolism 56: 405–412 (2007)
Hwang JM, Kuo HC, Tseng TH, Liu JY, Chu CY. Berberine induces apoptosis through a mitochondria/caspases pathway in human hepatoma cells. Arch. Toxicol. 80: 62–73 (2006)
Iizuka N, Miyamoto K, Okita K, Tangoku A, Hayashi H, Yosino S, Abe T, Morioka T, Hazama S, Oka M. Inhibitory effect of Coptidis rhizoma and berberine on the proliferation of human esophageal cancer cell lines. Cancer Lett. 148: 19–25 (2000)
Jantová S, Cipák L, Cernáková MJ, Kost’álová D. Effect of berberine on proliferation, cell cycle, and apoptosis in HeLa and L1210 cells. J. Pharm. Pharmacol. 55: 1143–1149 (2003)
Kettmann V, Kostalova D, Jantova S, Cernakova M, Drimal J. In vitro cytotoxicity of berberine against HeLa and L1210 cancer cell lines. Pharmazie 59: 548–551 (2004)
Inoue K, Kulsum U, Chowdhury SA, Fujisawa SI, Ishihara M, Yokoe I, Sakagami H. Tumor-specific cytotoxicity and apoptosisinducing activity of berberines. Anticancer Res. 25: 4053–4059 (2005)
Jia F, Zou G, Fan J, Yuan Z. Identification of palmatine as an inhibitor of west Nile virus. Arch. Virol. 155: 1325–1329 (2010)
Aruoma OI. Free radicals, oxidative stress, and antioxidants in human health and disease. J. Am. Oil Chem. Soc. 75: 199–212 (1998)
Jung HA, Min BS, Yokozawa T, Lee JH, Kim YS, Choi SC. Anti-Alzheimer and antioxidant activities of coptidis rhizome alkaloids. Biol. Pharm. Bull. 32: 1433–1438 (2009)
Chatuphonprasert W, Sangkawat T, Nemoto N, Jarukamjorn K. Suppression of β-naphthoflavone induced CYP1A expression and lipid-peroxidation by berberine. Eur. J. Pharmacol. 648: 162–170 (2010)
Ye X, Feng Y, Tong Y, Ng KM, Tsao S, Lau GK, Sze C, Zhang Y, Tang J, Shen J, Kobayashi S. Hepatoprotective effects of Coptidis rhizoma aqueous extract on carbon tetrachloride-induced acute liver hepatotoxicity in rats. J. Ethnopharmacol. 124: 130–136 (2009)
Ozgen M, Reese RN, Tulio AZ, Scheerens JC, Miller AR. Modified 2,2-azino-bis-3-ethylbenzothizothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) method to measure antioxidant capacity of selected small fruits and comparison to ferric reducing antioxidant power (FRAP) and 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) methods. J. Agr. Food Chem. 54: 1151–1157 (2006)
Myers RH. Response Surface Methodology: Process and Product Optimization Using Designed Experiments. 3rd ed. John Wiley & Sons, lnc., Toronto, Canada. pp. 1–12 (2009)
Chen JH, Wang FM, Liu J, Lee FSC, Wang XR, Yang HH. Analysis of alkaloids in Coptis chinensis Franch by accelerated solvent extraction combined with ultra performance liquid chromatographic analysis with photodiode array and tandem mass spectrometry detections. Anal. Chim. Acta 613: 184–195 (2008)
Ong ES, Woo SO, Yong YL. Pressurized liquid extraction of berberine and aristolochic acid in medicinal plants. J. Chromatogr. A 904: 57–64 (2000)
Lee HS, Eom YE, Eom DO. Narrowbore high performance liquid chromatography of berberine and palmatine in crude drugs and pharmaceuticals with ion-pair extraction using cobalt thiocyanate reagent. J. Pharm. Biomed. Anal. 21: 59–63 (1999)
Ong ES, Len SM. Pressurized hot water extraction of berberine, baicalein, and glycyrrhizin in medicinal plants. Anal. Chim. Acta 482: 81–89 (2003)
Jang HD, Chang KS, Huang YS, Hsu CL, Lee SH, Su MS. Principal phenolic phytochemicals and antioxidant activities of three Chinese medicinal plants. Food Chem. 103: 749–756 (2007)