Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Cơ chế bảo vệ niêm mạc dạ dày của tinh chất methanol từ lá Melastoma malabathricum
Tóm tắt
Melastoma malabathricum L. (họ Melastomaceae) là một loại cây bụi nhỏ với nhiều ứng dụng y học khác nhau. Nghiên cứu hiện tại được thực hiện nhằm xác định cơ chế bảo vệ niêm mạc dạ dày của tinh chất methanol từ lá cây M. malabathricum (MEMM) trên chuột. Cơ chế bảo vệ niêm mạc của tinh chất được nghiên cứu sử dụng mô hình thắt môn vị trên chuột, trong đó thể tích, pH, độ axit tự do và tổng cộng của dịch vị dạ dày, cũng như hàm lượng chất nhầy ở thành dạ dày được xác định. Sự tham gia của oxit nitric nội sinh (NO) và hợp chất sulfhydryl (SH) trong tác dụng bảo vệ niêm mạc của MEMM cũng được đo lường. MEMM đã được phân tích về hoạt tính chống oxy hóa, chống viêm và phytochemical, cùng với phân tích HPLC. MEMM chứa nhiều thành phần phyto với quercitrin được xác định là một trong số đó. MEMM và quercitrin: i) làm giảm đáng kể (p < 0.05) thể tích và độ axit của dịch vị dạ dày đồng thời làm tăng pH và hàm lượng chất nhầy trong thành dạ dày; ii) làm tăng đáng kể (p < 0.05) mức độ SOD, GTP và GTR trong khi làm giảm đáng kể (p < 0.05) mức độ hoạt động của CAT, MPO và TBARS; iii) thể hiện hoạt tính bảo vệ niêm mạc dạ dày khi được đánh giá bằng thử nghiệm loét dạ dày do ethanol gây ra, tác dụng này bị đảo ngược bởi NG-nitro-l-arginine methyl ester (L-NAME; một chất ức chế NO synthase) và N-ethylmaleimide (NEM; một chất chặn sulfhydryl (SH)). MEMM ức chế sự hoạt động của lipoxygenase (LOX) và xanthine oxidase (XO) với ái lực cao nhất đối với LOX trong khi quercitrin cho thấy ái lực cao đối với hoạt động XO. MEMM thể hiện hoạt tính bảo vệ niêm mạc dạ dày một phần do sự hiện diện của quercitrin, các hoạt tính chống oxy hóa và chống viêm của nó, và qua việc điều chế NO và các nhóm SH.
Từ khóa
#Melastoma malabathricum #cơ chế bảo vệ niêm mạc dạ dày #tinh chất methanol #quercitrin #hoạt tính chống oxy hóaTài liệu tham khảo
Calam J, Baron JH. Pathophysiology of duodenal and gastric ulcer and gastric cancer. Brit Med J. 2001;323:980–3.
Gasparetto M, Pescarin M, Guariso G. Helicobacter pylori Eradication Therapy: Current Availabilities. Int Schol Res Network Gastroenterol 2012, 2012: Article ID 186734, 8 pages doi:10.5402/2012/186734
Yakoob J, Jafri W, Jafri N, Islam M, Abid S, Hamid S, et al. Prevalence of non-Helicobacter pylori duodenal ulcer in Karachi, Pakistan. World J Gastroenterol. 2005;11:3562–5.
Zakaria ZA, Abdul Hisam EE, Mohtarruddin N, Rofiee MS, Othman F, Hasiah AH, et al. Methanol extract of Bauhinia purpurea leaf possesses antiulcer activity. Med Princ Pract. 2012;21:476–82.
Mohd. Joffry S, Yob NJ, Rofiee MS, MeorMohd. Affandi MMR, Othman F, Abdah MA et al. Melastoma malabathricum (L.) Smith: a review of its ethnomedicinal, chemical and pharmacological uses. Evid-Bsed Compl Alt 2012, Article ID 258434. doi:10.1155/2012/258434.
Hussain F, Abdulla MA, Mohd Noor S, Ismail S, Mohd Ali H. Gastroprotective effects of Melastoma malabathricum aqueous leaf extract against ethanol-induced gastric ulcer in rats. Am J Biochem Biotechnol. 2008;4:438–41.
Zakaria ZA, Rofiee MS, Mohamed AM, Teh LK, Salleh MZ. In vitro antiproliferative and antioxidant activities, and total phenolic contents of the extracts of Melastoma malabathricum leaves. J Acupunct Meridian Stud. 2011;4:248–56.
Zabidi Z, Wan Zainulddin WN, Mamat SS, Shamsahal Din S, Kamisan FH, Yahya F, et al. Antiulcer activity of methanol extract of Melastoma malabathricum leaves in rats. Med Princ Pract. 2012;21:501–3.
Guay J, Bateman K, Gordon R, Mancini J, Riendeau D. Carrageenan-induced paw edema in rat elicits a predominant prostaglandin E2 (PGE2) response in the central nervous system associated with the induction of microsomal PGE2 synthase-1. J Biol Chem. 2004;279:24866–72.
Tang EHC, Libby P, Vanhoutte PM, Xu A. Anti-inflammation therapy by activation of prostaglandin EP4 receptor in cardiovascular and other inflammatory diseases. J Cardiovasc Pharmacol. 2012;59:116–23.
Rossi A, Kapahi P, Natoli G, Takahashi T, Chen Y, Karin M, et al. Anti-inflammatory cyclopentenone prostaglandins are direct inhibitors of IkappaB kinase. Nature. 2000;403:103–8.
Wiart C, Mogana S, Khalifah S, Mahan M, Ismail S, Buckle M, et al. Antimicrobial screening of plants used for traditional medicine in the state of Perak, Peninsular Malaysia. Fitoterapia. 2004;75:68–73.
Sunilson JAJ, James J, Thomas J, Jayaraj P, Varatharajan R, Muthappan M. Antibacterial and wound healing activities of Melastoma malabathricum Linn. Afr J Infect Dis. 2008;2:68–73.
Zimmermann M. Ethical guidelines for investigations of experimental pain in conscious animals. Pain. 1983;16:109–10.
Shay H, Komarov SA, Fels SS, Meranze D, Gruenstein M, Siplet H. A simple method for the uniform production of gastric ulceration in the rat. Gastroenterol. 1945;5:43–61.
Srivastava V, Viswanathaswamy AH, Mohan G. Determination of the antiulcer properties of sodium cromoglycate in pylorus-ligated albino rats. Indian J Pharmacol. 2010;42:185–8.
Corne SJ, Morrisey SM, Woods RJ. A method for the quantitative estimation of gastric barrier mucus. J Physiol. 1974;242:116–7.
Andreo MA, Ballesteros KVR, Hiruma-Lima CA, Machado da Rocha LR, Souza Brito ARM, Vilegas W. Effect of Mouriri pusa extracts on experimentally induced gastric lesions in rodents: Role of endogenous sulfhydryls compounds and nitric oxide in gastroprotection. J Ethnopharmacol. 2006;107:431–41.
Balan T, Sani MHM, Suppaiah V, Mohtarrudin N, Suhaili Z, Ahmad Z, et al. Antiulcer activity of methanol extract of Muntingia calabura leaves involves the modulation of endogenous nitric oxide and non-protein sulfhydryl compounds. Pharm Biol. 2013;Early Online:1–9.
Kakkar P, Das B, Viswanathan PN. A modified spectrophotometric assay of superoxide dismutase. Indian J Biochem Biophys. 1984;21:130–2.
Sinha KA. Colorimetry assay of Catalase. Anal Biochem. 1972;47:389–94.
Bradley PP, Priebat DA, Christensen RD, Rothstein G. Measurement of cutaneous inflammation: estimation of neutrophil content with an enzyme marker. J Invest Dermatol. 1982;78:206–9.
Rotruck JT, Pope AL, Ganther HE, Swanson AB. Selenium: biochemical roles as a component of glutathione peroxidase. Science. 1973;179:588–90.
Ellman GL. Tissue sulfhydryl groups. Arch Biochem Biophys. 1959;82:70–7.
Okhawa H, Oishi N, Yagi K. Assay for lipid peroxides in animal tissue by thiobarbituric acid reaction. Anal Biochem. 1979;95:351–8.
Lowry OH, Rosebrough NL, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with Folin Phenol reagent. J Biol Chem. 1951;193:265–75.
Lee KH, Padzil AM, Syahida A, Abdullah N, Zuhainis SW, Maziah M, et al. Evaluation of anti-inflammatory, antioxidant and antinociceptive activities of six Malaysian medicinal plants. J Med Plant Res. 2011;5:5555–63.
Azhar-Ul-Haq, Malik A, Anis I, Khan SB, Ahmed E, Ahmed Z, et al. Enzymes Inhibiting Lignans from Vitex negundo. Chem Pharmaceut Bull. 2004;52:1269–72.
Noro T, Miyase T, Kuroyanagi M. Monoamine oxidase inhibitor from the rhizomes of Kaempferia galanga L. Chem Pharmaceut Bull. 1983;31:2708–11.
Kumar A, Singh V, Chaudhary AK. Gastric antisecretory and antiulcer activities of Cedrusdeodara (Roxb.) Loud. In Wistar rats. J Ethnopharmacol. 2011;134:294–7.
Goel RK, Bhattacharya SK. Gastroduodenal mucosal defence and mucosal protective agents. Ind J Exp Biol. 1991;29:701–14.
Venables CW. Mucus, pepsin and peptic ulcer. Gut. 1986;27:233–8.
Brzozowski T, Konturek PC, Sliwowski Z, Kwiecień S, Drozdowicz D, Pawlik M, et al. Interaction of nonsteroidal anti-inflammatory drugs (NSAID) with Helicobacter pylori in the stomach of humans and experimental animals. J Physiol Pharmacol. 2006;57:67–79.
Tariq M, Khan HA, Elfaki I, Arshaduddin M, Al Moutaery M, Al Rayes H, et al. Gastric antisecretory and antiulcer effects of simvastatin in rats. J Gastroenterol Hepatol. 2007;22:2316–23.
Calatayud S, Barrachina D, Esplugues JV. Nitric oxide: relation to integrity, injury, and healing of the gastric mucosa. Microsc Res Tech. 2001;53:325–35.
Szabo S, Vattay P. Experimental gastric and duodenal ulcers. Advances in pathogenesis. Gastroenterol Clin North Am. 1990;19:67–85.
Maity S, Vedasiromoni JR, Ganguly DK. Role of glutathione in the antiulcer effect of hot water extract of black tea (Camellia sinensis). Jpn J Pharmacol. 1998;78:285–92.
Salim AS. Sulfhydryl-containing agents: new approach to the problem of refractory peptic ulceration. Pharmacology. 1993;46:281–8.
Avila JR, de la Lastra CA, Martin MJ, Motilva V, Luque I, Delgado D, et al. Role of endogenous sulphydryls and neutrophil infiltration in the pathogenesis of gastric mucosal injury induced by piroxicam in rats. Inflamm Res. 2005;45:83–8.
Goel RK, Sairam K, Rao V. Role of gastric antioxidant and antihelicobacter pyroli activities in antiulcerogenic activities of Plantain banana (Musa spaientum var. paradisiaca). Indian J Exp Biol. 2001;39:719–22.
Mates JM, Perez-Gomez C, Nudez de Castro I. Antioxidant enzymes and human diseases. Clin Biochem. 1999;32:595–603.
Okado-Matsumoto A, Fridovich I. Subcellular distribution of superoxide dismutases (SOD) in rat liver: Cu-, Zn-SOD in mitochondria. J Biol Chem. 2001;276:38388–93.
Rukkumani R, Aruna K, Varma PS, Rajasekaran KN, Menon VP. Comparative effects of curcumin and an analog of curcumin and PUFA induced oxidative stress. J Pharm Pharm Sci. 2004;7:274–83.
Schlorff EC, Husain K, Somani SM. Dose- and time-dependent effects of ethanol on plasma antioxidant system in rat. Alcohol. 1999;17:97–105.
Recknagel RO, Ghoshal AK. Quantitative estimation of peroxidative degeneration of rat liver microsomal and mitochondrial lipids after carbon tetrachloride poisoning. Exp Mol Pathol. 1996;5:413–26.
Brown LA, Harris FL, Ping XD, Gauthier TW. Chronic ethanol ingestion and the risk of acute lung injury: a role for glutathione availability? Alcohol. 2004;33:191–7.
Jaya DS, Augstine J, Menon VP. Role of lipid peroxides, glutathione and antiperoxidative enzymes in alcohol and drug toxicity. Indian J Exp Biol. 1993;31:453–9.
Halliwell B, Gutteridge JMC, Cross CE. Free radicals, antioxidants, and human disease: where are we now? J Lab Clin Med. 1992;119(6):598–620.
Bayir Y, Odabasoglu F, Cakir A, Aslan A, Suleyman H, Halici M, et al. The inhibition of gastric mucosal lesion, oxidative stress and meutrophil infiltration in rats by the lichen constituent diffractaic acid. Phytomedicine. 2006;13:584–90.
Mota KSL, Dias GEN, Pinto MEF, Luiz-Ferreira Â, Monteiro Souza-Brito AR, Hiruma Lima CA, et al. Flavonoids with gastroprotective activity. Molecule. 2009;14:979–1012.
Trivedi NP, Rawal UM. Hepatoprotective and antioxidant property of Andrographis paniculata (Nees) in BHC induced liver damage in mice. Indian J Exp Biol. 2001;39:41–6.
Fiorucci S, Distrutti E, de Lima OM, Romano M, Mencarelli A, Barbanti M, et al. Relative contribution of acetylated cyclo-oxygenase (COX)-2 and 5-lipooxygenase (LOX) in regulating gastric mucosal integrity and adaptation to aspirin. FASEB J. 2003;17:1171–3.
Pelletier JM, Lajeunesse D, Reboul P, Pelletier JP. Therapeutic role of dual inhibitors of 5-LOX and COX, selective and nonselective non-steroidal anti-inflammatory drugs. Ann Rheum Dis. 2003;62:501–9.
Camuesco D, Comalada M, Rodriguez-Cabezas ME, Nieto A, Lorente MD, Concha A, et al. The intestinal anti-inflammatory effect of quercitrin is associated with an inhibition in iNOS expression. Br J Pharmacol. 2004;143:908–18.
Comalada M, Camuesco D, Sierra S, Ballester I, Xaus J, Glvez J, et al. In vivo quercitrin anti-inflammatory effect involves release of quercetin, which inhibits inflammation through down-regulation of the NF-jB pathway. Eur J Immunol. 2005;35:584–92.
Bose S, Maji S, Chakraborty P. Research article quercitrin from Ixora coccinea leaves and its anti-oxidant activity. J PharmaSciTech. 2013;2:72–4.
Uppugundla N, Engelberth A, Vandhana Ravindranath S, Clausen EC, Lay JO, Gidden J, et al. Switchgrass water extracts: extraction, separation and biological activity of rutin and quercitrin. J Agric Food Chem. 2009;57:7763–70.