Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Bản Đồ Một Gen Chính Kiểm Soát Sự Ức Chế Màu Da Đỏ (Highlighter) Trong Đào
Tóm tắt
Sự hiện diện, vắng mặt và cường độ của màu da đỏ trong quả đào là các đặc điểm then chốt để chọn giống thích ứng với các thị trường và sở thích tiêu dùng khác nhau. Màu da đỏ là kết quả của anthocyanins, và trong một số thế hệ khôi phục, sự ức chế màu da đỏ đã được tìm thấy là do một gen duy nhất, H/h, trong đó các cây đồng hợp cho alen lặn (h) sản xuất kiểu hình highlighter (thiếu anthocyanin). Trong bài báo này, chúng tôi đã phân tích một quần thể F2 với 276 cá thể phân tách cho đặc điểm này và đã lập bản đồ gen H trên một vùng liên kết dài 5 cM thuộc nhóm 3. Vùng này đã được làm bão hòa với các dấu hiệu bổ sung và cuối cùng gen H được xác định trong một vùng gen khoảng 607 kbp chứa 62 gen. Ba trong số các gen này tương ứng với các yếu tố phiên mã MYB10, được biết đến với vai trò kiểm soát các con đường sinh tổng hợp anthocyan trong đào và các loài khác như anh đào và táo. Một dấu hiệu đồng trội dựa trên trình tự của một trong những gen này (PpMYB10.1) đã được sử dụng để phân loại gen cho thế hệ F2 và đồng phân loại với đặc điểm này. Để xác thực thêm dấu hiệu, nó đã được thử nghiệm trong một bộ sưu tập gồm 87 giống đào. Một mối liên hệ mạnh mẽ đã được phát hiện giữa kiểu gen dấu hiệu và cường độ của màu đỏ, với ba giống có sự vắng mặt hoàn toàn của màu đỏ đều đồng hợp cho alen dấu hiệu liên quan đến đặc điểm highlighter, xác nhận rằng nó có thể được sử dụng như một dấu hiệu hiệu quả, mặc dù không phải là chẩn đoán, để chọn đặc điểm này trong các chương trình chọn giống đào.
Từ khóa
#gen H #màu da đỏ #đào #dấu hiệu đồng trội #sinh tổng hợp anthocyanTài liệu tham khảo
Aranzana MJ, Carbó J, Arús P (2003) Microsatellite variability in peach [Prunus persica (L.) Batsch.]: cultivar identification, marker mutation, pedigree inferences and population structure. Theor Appl Genet 106:1341–1352
Beckman TG, Sherman WB (2003) Probable qualitative inheritance of full red skin color in peach. HortScience 38:1184–1185
Beckman TG, Rodriguez Alcazar J, Sherman WB, Werner DJ (2005) Evidence for qualitative supression of red skin color in peach. HortScience 40(3):523–524
Brandi F, Bar E, Mourgues F, Horváth G, Turcsi E, Giuliano G, Liverani A, Tartarini S, Lewinsohn E, Rosati C (2011) Study of ‘Redhaven’ peach and its white-fleshed mutant suggests a key role of CCD4 carotenoid dioxygenase in carotenoid and norisoprenoid volatile metabolism. BMC Plant Biol 11:24
Cantín CM, Crisosto CH, Ogundiwin EA, Gradziel T, Torrents J, Moreno MA, Gogorcena Y (2010) Chilling injury susceptibility in an intra-specific peach [Prunus persica (L.) Batsch] progeny. Postharvest Biol Technol 58:79–87
Crisosto CH, Costa G (2008) Preharvest factors affecting peach quality. In: Layne DR, Bassi D (eds) The peach: botany production and uses. CAB International, Cambridge, pp 536–549
Dirlewanger E, Graziano E, Joobeur T, Garriga-Calderé F, Cosson P, Howad W, Arús P (2004) Comparative mapping and marker-assisted selection in Rosaceae fruit crops. Proc Natl Acad Sci USA 101:9891–9896
Donoso JM, Eduardo I, Picañol R, Batlle I, Howad W, Aranzana MJ, Arús P (2015) High-density mapping 493 suggests cytoplasmic male sterility with two restorer genes in almond × peach progenies. Hortic Res 2:15016
Donoso JM, Picañol R, Serra O, Howad W, Alegre S, Arús P, Eduardo I (2016) Exploring almond genetic variability useful for peach improvement: mapping major genes and QTLs in two inter-specific almond × peach populations. Mol Breed 36:16
Doyle JJ, Doyle JL (1990) Isolation of plant DNA from fresh tissue. Focus 12:13–15
Eduardo I, Pacheco I, Chietera G, Bassi D, Pozzi C, Vecchietti A, Rossini L (2011) QTL analysis of fruit quality traits in two peach intraspecific populations and importance of maturity date pleiotropic effect. Tree Genet Genomes 7:323–335
Eduardo I, López-Girona E, BatlIe I, Reig G, Iglesias I, Howad W, Arús P, Aranzana MJ (2014) Development of diagnostic markers for selection of the subacid trait in peach. Tree Genet Genomes 10:1695–1709
Eduardo I, Cantín CM, Batlle I, Arús P (2015a) Integración de los marcadores moleculares en un programa de mejora de variedades de melocotonero. Fruticultura 44:6–17
Eduardo I, Picañol R, Rojas E, Batlle I, Howad W, Aranzana MJ, Arús P (2015b) Mapping of a major gene for the slow ripening character in peach: co-location with the maturity date gene and development of a candidate gene-based diagnostic marker for its selection. Euphytica 205:627–636
Espley RV, Brendolise C, Chagné D, Kutty-Amma S, Green S, Volz R, Putterill J, Schouten HJ, Gardiner SE, Hellens RP, Allan AC (2009) Multiple repeats of a promoter segment causes transcription factor autoregulation in red apples. Plant Cell 21:168–183
Falchi R, Vendramin E, Zanon L, Scalabrin S, Cipriani G, Verde I, Vizzotto G, Morgante M (2013) Three distinct mutational mechanisms acting on a single gene underpin the origin of yellow flesh in peach. Plant J 76(2):175–187
Frett TJ, Reighard GL, Okie WR, Gasic K (2014) Mapping quantitative trait loci associated with blush in peach 510 [Prunus persica (L.) Batsch]. Tree Genet Genomes 10:367–381
Gradziel TM, Beres W, Pelletreau K (1993) Inbreeding in California canning clingstone peach cultivars. Fruit Var J 47:160–168
Iglesias I, Echeverría G (2009) Differential effect of cultivar and harvest date on nectarine color, quality and consumer acceptance. Sci Hortic 120:41–50
Iglesias I, Ruiz S (2016) Evolución de la producción y superficie de melocotón en España. Vida Rural 407:28–34
Illa E, Sargent DJ, Lopez Girona E, Bushakra J, Cestaro A, Crowhurst R, Pindo M, Cabrera A, van der Knaap E, Iezzoni A, Gardiner S, Velasco R, Arús P, Chagné D, Troggio M (2011) Comparative analysis of rosaceous genomes and the reconstruction of a putative ancestral genome for the family. BMC Evol Biol 11:9
Jung S, Cestaro A, Troggio M, Main D, Zheng P, Cho I, Folta KM, Sosinski B, Abbott A, Celton JM, Arús P, Shulaev V, Verde I, Morgante M, Rokhsar DR, Velasco R, Sargent DJ (2012) Whole genome comparisons of Fragaria, Prunus and Malus reveal different modes of evolution between Rosaceous subfamilies. BMC Genomics 13:129
Layne DR, Jiang ZW, Rushing JW (2001) Tree fruit reflective film improves red skin coloration and advances maturity in peach. Hortic Technol 11:234–242
Liverani A, Giovannini D, Brandi F (2002) Increasing fruit quality of peaches and nectarines: the main goals of ISF-FO (Italy). Acta Hortic 592:507–514
Nicotra A, Conte L, Moser L, Fantechi P (2002) New types of high quality peaches: flat peaches (P. persica var. Platicarpa) and Ghiaccio peach series with long on tree fruit life. Acta Hortic 592:131–135
Peace CP, Crisosto CH, Gradziel TM (2005) Endopolygalacturonase: a candidate gene for freestone and melting flesh in peach. Mol Breed 16:21–31
Picañol R, Eduardo I, Aranzana MJ, Howad W, Batlle I, Iglesias I, Alonso JM, Arús (2013) Combining linkage and association mapping to search for markers linked to the flat fruit character in peach. Euphytica 190:279–288
Quilot B, Wu BH, Kervella J, Génard M, Foulongne M, Moreau K (2004) QTL analysis of quality traits in an advanced backcross between Prunus persica cultivars and the wild relative species P. davidiana. Theor Appl Genet 109:884–897
Rahim MA, Busatto N, Trainotti L (2014) Regulation of anthocyanin biosynthesis in peach fruits. Planta 240:913–929
Reig G (2013) Selección de nuevas variedades de melocotón [Prunus persica (L.) Batsch] en función de caracteres agronómicos, morfológicos, de calidad y de conservación del fruto. PhD Dissertation, Universitat de Lleida
Reig G, Iglesias I, Gatius F, Alegre S (2013) Antioxidant capacity, quality, and anthocyanin and nutrient contents of several peach cultivars [Prunus persica (L.) Batsch] grown in Spain. J Agric Food Chem 61:6344–6357
Ru S, Main D, Evans K, Peace C (2015) Current applications, challenges, and perspectives of marker-assisted seedling selection in Rosaceae tree fruit breeding. Tree Genet Genomes 11(1):834
Scorza R, Sherman WB (1996) Peaches. In: Janick J, Moore JN (eds) Fruit breeding, vol I., Tree and tropical fruits Wiley, New York, pp 325–440
Sooriyapathirana SS, Khan A, Sebolt AM, Wang D, Bushakra JM, Lin-Wang K, Allan AC, Gardiner SE, Chagné D, Iezzoni AF (2010) QTL analysis and candidate gene mapping for skin and flesh color in sweet cherry fruit (Prunus avium L.). Tree Genet Genomes 6:821–832
Tuan PA, Bai S, Yaegaki H, Tamura T, Hihara S, Moriguchi T, Oda K (2015) The crucial role of PpMYB10.1 in anthocyanin accumulation in peach and relationships between its allelic type and skin color phenotype. BMC Plant Biol 15:280
Van Ooijen JW (2011) Multipoint maximum likelihood mapping in a full-sib family of an outbreeding species. Genet Res 93(5):343–349
Voorrips RE (2002) MapChart: software for the graphical presentation of linkage maps and QTLs. J Hered 93(1):77–78
Yamamoto T, Yamaguchi M, Hayashi T (2005) An integrated genetic linkage map of peach SSR, STS, AFLP and RAPD. J Jpn Soc Hortic Sci 74:204–213
Zhang Y, Butelli E, Martin C (2014) Engineering anthocyanin biosynthesis in plants. Curr Opin Plant Biol 19:81–90
Zhou Y, Zhou H, Lin-Wang K, Vilongmangkang S, Espley RV, Wang L, Allan AC, Han Y (2014) Transcriptome analysis and transient transformation suggest an ancient duplicated MYB transcription factor as a candidate gene for leaf red coloration in peach. BMC Plant Biol 14:388