Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Rễ thần kinh cột sống thắt lưng cùng: một nghiên cứu giải phẫu
Tóm tắt
Giải phẫu nội tủy thắt lưng cùng rất phức tạp do sự dày đặc của các rễ thần kinh trong mảng ngựa. Các tổn thương chiếm chỗ, bao gồm thoát vị đĩa đệm, chấn thương và khối u, trong ống sống có thể ảnh hưởng đến các rễ thần kinh, gây ra các hội chứng lâm sàng nghiêm trọng. Mục tiêu của nghiên cứu này là cung cấp cho các bác sĩ phẫu thuật cột sống một mô tả giải phẫu chi tiết về các rễ thần kinh nội tủy và nhấn mạnh tầm quan trọng của chúng trong lâm sàng. Mười thi thể nam được cố định bằng formalin đã được nghiên cứu. Chúng được giải phẫu với sự hỗ trợ của kính hiển vi phẫu thuật, và các phép đo đã được thực hiện. Số lượng các rễ lưng và rễ bụng dao động từ một đến ba. Đường kính trung bình của các rễ tăng từ L1 đến S1 (0.80 mm cho L1 và 4.16 mm cho S1). Sau đó, đường kính của chúng giảm từ S1 đến S5 (4.16 mm cho S1, 0.46 mm cho S5). Đường kính lớn nhất được tìm thấy tại S1 và nhỏ nhất tại S5. Số lượng nhánh rễ trung bình trên mỗi rễ thần kinh tăng từ L1 đến S1, sau đó giảm (3.25 cho L1, 12.6 cho S1 và 1.2 cho S5). Số lượng nhánh rễ lớn nhất được quan sát tại S1, và số ít nhất được thấy tại S5. Đường kính trung bình của hốc bên giảm dần từ L1 đến L4 (9.1 mm cho L1; 5.96 mm cho L4) và sau đó tăng ở mức L5 (6.06 mm); tuy nhiên, đường kính của rễ thần kinh tăng từ L1 đến L5. Điểm giữa khoảng cách giữa cạnh trên và cạnh dưới của rễ thần kinh thoát nội tủy nằm ở vị trí 3.47 mm bên dưới cạnh dưới của quá trình khớp trên tại mức L1, trong khi gốc của rễ thoát L5 nằm ở 5.75 mm bên trên cạnh dưới. Gốc rễ từng bước nâng lên từ L1 đến L5. Những phát hiện của nghiên cứu này có thể có giá trị trong việc hiểu các tổn thương chèn ép rễ thần kinh nội tủy và có thể hữu ích cho các thủ tục phẫu thuật nội tủy cột sống.
Từ khóa
#Lumbosacral #rễ thần kinh #giải phẫu #ống sống #tổn thương chèn ép #lâm sàngTài liệu tham khảo
Artico M, Carloia S, Piacentini M, Ferretti G, Dazzi M, Franchitto S, Bronzetti E (2006) Conjoined lumbosacral nerve roots: Observations on three cases and review of the literature. Neurocirugia (Astur) 17:54–59
Binder DK, Schmidt MH, Weinstein PR (2002) Lumbar spinal stenosis. Semin Neurol 22:157–166
Ciric I, Mikhael MA, Tarkington JA, Vick NA (1980) The lateral recess syndrome. A variant of spinal stenosis. J Neurosurg 53:433–443
Cohen MS, Wall EJ, Kerber CW, Abithol JJ, Garfin SR (1991) The anatomy of the cauda equina on CT scans and MRI. J Bone Joint Surg 73-B:381–384
D’Avella D, Mingrino S (1979) Microsurgical anatomy of lumbosacral spinal roots. J Neurosurg 51:819–823
Hasue M (1993) Pain and the nerve root. Spine 18:2053–2058
Hauck EF, Wittkowski W, Bothe HW (2008) Intradural microanatomy of the nerve roots S1—S5 at their origin from the conus medullaris. J Neurosurg Spine 9:207–212
Hogan Q (1996) Size of human lower thoracic and lumbosacral nerve roots. Anesthesiology 85:37–42
Kadish LJ, Simmons EH (1984) Anomalies of the lumbosacral nerve roots: An anatomical investigation and myelographic study. J Bone Joint Surg 66-B:411–416
Karataş A, Çağlar Ş, Savaş A, Elhan A, Erdoğan A (2005) Microsurgical anatomy of the dorsal cervical rootlets and dorsal root entry zones. Acta Neurochir (Wien) 147:195–199
Kitab SA, Miele VJ, Lavelle WF, Benzel EC (2009) Pathoanatomic basis for stretch-induced lumbar nerve root injury with a review of the literature. Neurosurgery 65:161–168
Lang J, Geisel U (1983) Lumbosacral part of the dural sac and the topography of its contents. Morphol Med 31:27–46
Monajati A, Wayne WS, Rausching W, Ekholm SE (1987) MRI of the cauda equina. AJNR 8:893–900
Moriishi J, Otanı K, Tanaka K, Inoue SI (1989) The intersegmental anastomoses between the spinal nerve roots. Anat Rec 224:110–116
Naidich TP, King DG, Moran CJ, Sagel SS (1980) Computed tomography of the lumbar thecal sac. J Comput Asist Tomogr 4:37–41
Petraco DM, Spivak JM, Cappadona JG, Kummer FJ, Neuwirth MD (1996) An anatomic evaluation of L5 nerve stretch in spondylolisthesis reduction. Spine 21:1133–1139
Phillips LH, Park TS (1993) The frequency of intradural conjoined lumbosacral dorsal nerve roots found during selective dorsal rhizotomy. Neurosurgery 33:88–91
Schalow G (1985) The problem of cauda equina nerve root identification. Zentralbl Neurochir 46:322–330
Strojnic T (2001) Measurement of the lateral recess angle as a possible alternative for evaluation of the lateral recess stenosis on a CT scan. Wien Klin Wochenschr 113:53–58
Tong HC, Carson JT, Haig AJ, Quint DJ, Phalke VR, Yamakawa KSJ, Miner JA (2006) Magnetic resonance imaging of the lumbar spine in asymptomatic older adults. J Back Musculoskelet Rehabil 19:67–72
Turner RP (2009) Neurophysiologic intraoperative monitoring during selective dorsal rhizotomy. J Clin Neurophysiol 26(2):82–84
Ulmer JL, Elster AD, Mathews WP, King JC (1994) Distinction between degenerative and ishmic spondylolisthesis on sagittal MRI images: Importance of increased anteroposterior diameter of the spinal canal “ wide canal sign”. AJR Am J Roentgenol 163:411–416
Wall EJ, Massie JB, Kwan MK, Rydevik BL, Myers RR, Garfin SR (1992) Experimental stretch neuropathy. Changes in nerve conduction under tension. J Bone Joint Surg Br 74B:126–129
Wall EJ, Cohen MS, Massie JB, Rydevik B, Garfin SR (1990) Cauda equina anatomy I: Intrathecal nerve root organization. Spine 15:1244–1247
Wall EJ, Cohen MS, Abithol JJ, Garfin SR (1990) Organization of intrathecal nerve roots at the level of conus medullaris. J Bone Joint Surg 72:1495–1499
Warf BC, Nelson KR (1996) The electromyographic responses to dorsal rootlet stimulation during partial dorsal rhizotomy are inconsistent. Pediatr Neurosurg 25:13–19
Weishaupt D, Schmid MR, Zanetti M, Boos N, Romanowski B, Kissling RO, Dvorak J, Hodler J (2000) Positional MRI imaging of the lumbar spine: Does it demonstrate nerve poor compromise not visible at conventional MRI imaging? Radiology 215:247–253
Wilmink JT (1989) CT morphology of intrathecal lumbosacral nerve-root compression. AJNR 10:233–248