Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Lactobacillus paracasei CD4 như là một chủng vi khuẩn lactic bản địa tiềm năng với hoạt tính chống oxy hóa và ức chế ACE trong thủy phân sữa đậu nành
Tóm tắt
Nghiên cứu hiện tại đánh giá các vi khuẩn Lactic acid bản địa (LAB) được phân lập từ các thực phẩm lên men khác nhau về hiệu suất lên men trong sữa đậu nành, tạo ra hoạt tính chống oxy hóa và ức chế enzyme chuyển angiotensin (ACE) trong thủy phân sữa đậu nành. Hiệu suất của các chủng vi khuẩn lactic trong việc lên men sữa đậu nành được đánh giá qua việc lên men 100 mL sữa đậu nành với 1% các chủng vi khuẩn lactic, ủ trong 24 giờ ở 37 °C. Hiệu suất lên men được xác định theo mức độ thủy phân của sữa đậu nành dao động từ 7,17 đến 11,09% cho các chủng khác nhau. Hơn nữa, phần thủy phân lên men được đánh giá về hoạt tính quét gốc tự do và hoạt tính ức chế ACE. Thủy phân sữa đậu nành lên men từ Lactobacillus rhamnosus GG, Brevibacillus aydinogluensis, Brevibacillus thermoruber cho thấy hoạt tính quét gốc tự do cao hơn dao động từ 62 đến 67% so với mẫu đối chứng không lên men (18,4%). Tuy nhiên, hoạt tính ức chế ACE chỉ được quan sát thấy trong thủy phân từ các chủng Lactobacillus paracasei CD4 và B. thermoruber HM34. Phân tích thành phần chính về các tính chất chống oxy hóa của các chủng khác nhau cho thấy rằng sự giải phóng tổng hàm lượng phenolic và sự gia tăng hoạt tính quét gốc tự do là đặc thù theo chủng.
Từ khóa
#Lactic acid bacteria #sữa đậu nành #hoạt tính chống oxy hóa #ức chế ACE #thủy phânTài liệu tham khảo
B.E. Chove, A.S. Grandison, M.J. Lewis, Emulsifying properties of soy protein isolate fractions obtained by isoelectric precipitation. J. Sci. Food Agric. 81, 759–763 (2001)
B.P. Singh, V. Shilpa, H. Subrota, Functional significance of bioactive peptides derived from soybean. Peptides 54, 171–179 (2014)
A.T. Gesinde, O.M. Ovawove, A. Adebisi, comparative studies on the quality and quantity of soymilk from different varieties of soybean. Pak. J. Nutr. 7, 157–160 (2008)
R.J. Elias, S.S. Kellerby, E.A. Decker, Antioxidant activity of proteins and peptides. Critic. Rev. Food Sci. Nutr. 48, 430–441 (2008)
F. Shahidi, Y. Zhong, Bioactive peptides. J. AOAC Int. 91, 914–931, (2008)
S. Ibe, K. Yoshida, K. Kumada, Angiotensin I-converting enzyme inhibitory activity of natto, a traditional Japanese fermented food. J. Jpn. Soc. Food Sci. 53, 189–192 (2006)
A.K. Rai, R. Jini, H.C. Swapna, N.M. Sachindra, N. Bhaskar, V. Baskaran, Application of native lactic acid bacteria (LAB) for fermentative recovery of lipids and proteins from fish processing wastes: bioactivities of fermentation products. J. Aquat. Food Prod. Technol. 20, 32–44 (2011)
B. Wang, Y.L. Xiong, C. Wang, Physicochemical and sensory characteristics of flavored soymilk during refrigeration storage. J. Food Qual. 24, 513–526 (2001)
S. Jiang, W. Cai, B. Xu, Food quality improvement of soymilk made from short-time germinated soybeans. Foods 2, 198–212 (2013)
D.O. Forcato, M.P. Carmine, G.E. Echeverria, R.P. Pécora, S.C. Kivatinitz, Milk fat content measurement by a simple UV spectrophotometric method: an alternative screening method. J. Dairy Sci. 88, 478–481 (2005)
AOAC, Official methods of analysis. Association of official analytical chemists. 15th edn. (AOAC, Washington, DC, 1990) pp. 200–210
K. Sharma, R. Mahajan, S. Attri, G. Goel, Selection of indigenous Lactobacillus paracasei CD4 and Lactobacillus gastricus BTM 7 as probiotic: assessment of traits combined with principal component analysis. J. Appl. Microbiol. 122, 1310–1320 (2017)
J.H. Waterborg, The Lowry method for protein quantitation. Protein Protoc. Handb. 32, 7–10 (2009)
P.M. Nielsen, D. Petersen, C. Dambmann, Improved method for determining food protein degree of hydrolysis. J. Food Sci. 66, 642–646 (2009)
V.L. Singleton, J.A. Rossi, Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. Am. J. Enol. Vitic. 16, 144–158 (1965)
J. Xing, G. Wang, Q. Zhang, X. Liu, Z. Gu, H. Zhang, Y.Q. Chen, W. Chen, Determining antioxidant activities of lactobacilli cell-free supernatants by cellular antioxidant assay: a comparison with traditional methods. PLoS ONE 10, e0119058 (2015)
J.H. Zhang, E. Tatsumi, C.H. Ding, L.T. Li, Angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptides in douchi, a Chinese traditional fermented soybean product. Food Chem. 98, 551–557 (2006)
M.F. Sbroggio, M.S. Montilha, V.R. Figueiredo, S.R. Georgetti, L.E. Kurozawa, Influence of the degree of hydrolysis and type of enzyme on antioxidant activity of okara protein hydrolysates. Food Sci. Technol. 36, 375–381 (2016)
V. Shilpa, H. Subrota, Y. Deepika, Biofunctionality of probiotic soy yoghurt. Int. J. Food Sci. Nutr. 2, 502 (2011)
S. Sanjukta, A.K. Rai, A. Muhammed, K. Jeyaram, N.C. Talukdar, Enhancement of antioxidant properties of two soybean varieties of Sikkim Himalayan region by proteolytic Bacillus subtilis fermentation. J. Funct. Foods 14, 650–658 (2015)
H.L. Chien, H.Y. Huang, C.C. Chou, Transformation of isoflavone phytoestrogens during the fermentation of soymilk with lactic acid bacteria and bifidobacteria. Food Microbiol. 23, 772–778 (2006)
L.R. Lai, S.C. Hsieh, H.Y. Huang, C.C. Chou, Effect of lactic fermentation on the total phenolic, saponin and phytic acid contents as well as anti-colon cancer cell proliferation activity of soymilk. J Biosci. Bioeng. 115, 552–556 (2013)
Q.I. Yao, X.N. Jin, D.P. Heui, Comparison of antioxidant activities in black soybean preparations fermented with various microorganisms. Agric. Sci. China 9, 1065–1071 (2010)
E. Berghofer, B. Grzeskowiad, N. Mundigler, W.B. Sentall, J. Walcak, Antioxidative properties of fababean, soybean and oat tempeh. Int. J. Food Sci. Nutr. 49, 45–54 (1998)
B. Moktan, J. Saha, P.K. Sarkar, Antioxidant activities of soybean as affected by Bacillus fermentation to kinema. Food Res. Int. 41, 586–593 (2008)
H. Ren, H. Liu, H. Endo, Y. Takagi, T. Hayashi, Anti-mutagenic and antioxidative activities found in Chinese traditional soybean fermented products furu. Food Chem. 95, 71–76 (2006)
N. Watanabe, K. Fujimoto, H. Aoki, Antioxidant activities of the water soluble fraction in tempeh-like fermented soybean (GABA-tempeh). Int. J. Food Sci. Nutr. 58, 577–587 (2007)
I. Amadou, O.S. Gbadamosi, S. Yong-Hui, M.T. Kamara, S. Jin, L. Guo-Wei, Identification of the antioxidative peptides from Lactobacillus plantarum Lp6 fermented soybean protein meal. Res. J. Microbiol. 5, 372–380 (2010)
S. Attri, N. Singh, T.R. Singh, G. Goel, Effect of in vitro gastric and pancreatic digestion on antioxidant potential of fruit juices. Food Biosci. 17, 1–6 (2017)
O.N. Donkor, A. Henriksson, T. Vasiljevic, N.P. Shah, Probiotic strains as starter cultures improve angiotensin-converting enzyme inhibitory activity in soy yogurt. J. Food Sci. 70, 375–381 (2005)
J.S. Tsai, Y.S. Lin, B.S. Pan, T.J. Chen, Antihypertensive peptides and gaminobutyric acid from prozyme 6 facilitated lactic acid bacteria fermentation of soymilk. Process. Biochem. 41, 1282–1288 (2006)
C. Martinez-Villaluenga, M.I. Torino, V. Martin, R. Arroyo, P. Garcia-Mora, I. Estrella Pedrola, C. Vidal-Valverde, J.M. Rodriguez, J. Frias, Multifunctional properties of soymilk fermented by Enterococcus faecium strains isolated from raw soymilk. J. Agric. Food Chem. 60, 10235–10244 (2012)
V.S. Vallabha, P.K. Tiku, Antihypertensive peptides derived from soy protein by fermentation. Int. J. Pept. Res. Ther. 20, 161–168 (2014)