Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Kích thước cơ thể có quan trọng không? Sự thay đổi theo mùa trong hình thái học của hai loài nhện Abacarus ăn cỏ
Tóm tắt
Chiến lược vượt đông ở các loài nhện ăn cỏ (Acariformes: Eriophyoidea) vẫn chưa được hiểu rõ. Một nghiên cứu về hai loài Abacarus đã được thực hiện để so sánh các tham số kích thước cơ thể của con cái trưởng thành trong các mùa khác nhau. Nhện Abacarus n. sp. (đang được mô tả) và A. lolli đã được thu thập từ Bromopsis inermis và Lolium perenne tương ứng, vào tháng 4, tháng 9 và tháng 12 năm 2001 tại Poznań, Ba Lan; 21 đặc điểm hình thái đã được đo cho mỗi mẫu. Phân tích thành phần chính cho thấy sự khác biệt đáng kể trong các tham số kích thước cơ thể giữa các ngày thu thập, với những con cái lớn hơn được thu thập trong tháng 12 ở cả hai loài. Kích thước cơ thể lớn hơn vào mùa đông phù hợp với giả thuyết rằng các loài nhện này, nơi mà sự dị hình giới tính thứ cấp (deutogyny) chưa được quan sát, trải qua những thay đổi sinh lý như tích lũy dự trữ dinh dưỡng, cho phép chúng chịu đựng các điều kiện môi trường bất lợi. Kích thước cơ thể lớn hơn cũng đã được chứng minh ở các động vật không xương sống khác để giảm mất nhiệt trong điều kiện lạnh. Việc lấp đầy những khoảng trống trong kiến thức hiện tại về các chiến lược vượt đông của eriophyoid, bất kể có sự hiện diện hay thiếu hụt của deutogyny, sẽ đóng góp cho cả nghiên cứu cơ bản và ứng dụng trong tương lai của nhóm động vật chân đốt quan trọng này.
Từ khóa
#nhện ăn cỏ #Abacarus #kích thước cơ thể #chiến lược vượt đông #hình thái học #Ba LanTài liệu tham khảo
Alcock J, Simmons LW, Beveridge M (2005) Seasonal change in offspring sex and size in Dawson’s burrowing bees (Amegilla dawsoni) (Hymenoptera: Anthophorini). Ecol Entomol 30:247–254. doi:10.1111/j.0307-6946.2005.00695.x
Baba M (1992) Oviposition habits of Simulium kawamurae (Diptera: Simuliidae), with reference to seasonal changes in body size and fecundity. J Med Entomol 29:603–610
Bagøien E, Kaartvedt S, Aksnes DL, Eiane K (2001) Vertical distribution and mortality of overwintering Calanus. Limnol Oceanogr 46:1494–1510. doi:10.4319/lo.2001.46.6.1494
Bretz F, Hothorn T, Westfall P (2011) Multiple comparisons using R. CRC Press, Taylor & Francis Group, Boca Raton
Britto EPJ, Gondim MGC, Navia D, Flechtmann CHW (2008) A new deuterogynous eriophyid mite (Acari: Eriophyidae) with dimorphic males from Caesalpinia echinata (Caesalpiniaceae) from Brazil: description and biological observations. Int J Acarology 34:307–316. doi:10.1080/01647950808684547
Caceres CE (1997) Dormancy in invertebrates. Invertebr Biol 116:371–383. doi:10.2307/3226870
Chown SL, Gaston KJ (2010) Body size variation in insects: a macroecological perspective. Biol Rev 85:139–169. doi:10.1111/j.1469-185X.2009.00097.x
Classen A, Steffan-Dewenter I, Kindeketa WJ, Peters MK (2017) Integrating intraspecific variation in community ecology unifies theories on body size shifts along climatic gradients. Funct Ecol 31:768–777. doi:10.1111/1365-2435.12786
Colbo MH, Porter GN (1979) Effects of the food supply on the life history of Simuliidae (Diptera). Can J Zool 57:301–306. doi:10.1139/z79-033
Convey P (1994) Growth and survival strategy of the Antarctic mite Alaskozetes antarcticus. Ecography 17:97–107. doi:10.1111/j.1600-0587.1994.tb00081.x
Cuber P, Urbanek A, Naczk A, Stepnowski P, Gołębiowski M (2016) Seasonal changes in the fatty acid profile of the tick Ixodes ricinus (Acari, Ixodidae). Exp Appl Acarol 69:155–165. doi:10.1007/s10493-016-0031-8
Danks HV (2004a) Seasonal adaptations in Arctic insects. Integr Comp Biol 44:85–94. doi:10.1093/icb/44.2.85
Danks HV (2004b) The roles of insect cocoons in cold conditions. Eur J Entomol 101:433–437. doi:10.14411/eje.2004.062
Danks HV (2007) The elements of seasonal adaptations in insects. Can Entomol 139:1–44. doi:10.4039/n06-048
Druciarek T, Kozak M, Maroufpoor M, Lewandowski M (2016) Morphological variability of Phyllocoptes adalius (Acari: Eriophyoidea) female forms, with supplementary description of the species. Syst Appl Acarol 21:181–194. doi:10.11158/saa.21.2.3
Ernsting G, Isaaks JA (1997) Effects of temperature and season on egg size, hatchling size and adult size in Notiophilus biguttatus. Ecol Entomol 22:32–40. doi:10.1046/j.1365-2311.1997.00040.x
Frost WE, Ridland PM (1996) Grasses. In: Lindquist EE, Sabelis MW, Bruin J (eds) Eriophyoid mites: their biology, natural enemies and control. Elsevier Science BV, Amsterdam, p 790
Guo JF, Li HS, Wang B, Xue XF, Hong XY (2015) DNA barcoding reveals the protogyne and deutogyne of Tegolophus celtis sp. nov. (Acari: Eriophyidae). Exp Appl Acarol 67:393–410. doi:10.1007/s10493-015-9953-9
Haro RJ, Edley K, Wiley MJ (1994) Body size and sex ratio in emergent stonefly nymphs (Isogenoides olivaceus: Perlodidae): variation between cohorts and populations. Can J Zool 72:1371–1375. doi:10.1139/z94-181
Holmstrup M, Zachariassen KE (1996) Physiology of cold hardiness in earthworms. Comp Biochem Physiol 115:91–101
Irons JG III, Miller LK, Oswood MW (1993) Ecological adaptations of aquatic macroinvertebrates to overwintering in interior Alaska (USA) subarctic streams. Can J Zool 71:98–108. doi:10.1139/z93-015
Jeppson LR, Keifer HH, Baker EW (1975) Mites injurious to economic plants. University of California Press, Los Angeles
Kari JS, Huey RB (2000) Size and seasonal temperature in free-ranging Drosophila subobscura. J Therm Biol 25:267–272. doi:10.1016/S0306-4565(99)00096-0
Krantz GW (1973) Observations on the morphology and behavior of the filbert rust mite, Aculus comatus (Prostigmata: Eriophyoidea) in Oregon. Ann Entomol Soc Am 66:709–717. doi:10.1093/aesa/66.4.709
Kuo C-C, Wang C-F, Tsai J-I, Feng F-L, Huang K-W (2013) Altitudinal variation in body size in Abacarus panticis Keifer (Acari: Eriophyidae). Ecol Res 28:1091–1097. doi:10.1007/s11284-013-1090-5
Lee D-H, Cullum JP, Anderson JL, Daugherty JL, Beckett LM, Leskey TC (2014) Characterization of overwintering sites of the invasive brown marmorated stink bug in natural landscapes using human surveyors and detector canines. PLoS ONE 9:e91575. doi:10.1371/journal.pone.0091575
Lewandowski M, Skoracka A, Szydło W, Kozak M, Druciarek T, Griffiths DA (2014) Genetic and morphological diversity of Trisetacus species (Eriophyoidea: Phytoptidae) associated with coniferous trees in Poland: Phylogeny, barcoding, host and habitat specialization. Exp Appl Acarol 63:497–520. doi:10.1007/s10493-014-9805-z
Li H, Xue X, Hong X (2014) Cryptic diversity in host-associated populations of Tetra pinnatifidae (Acari: Eriophyoidea): What do morphometric, mitochondrial and nuclear data reveal and conceal? Bull Entomol Res 104(2):221–232. doi:10.1017/S0007485313000746
Liu S, Li J, Guo K, Qiao H, Xu R, Chen J, Xu C, Chen J (2016) Seasonal phoresy as an overwintering strategy of a phytophagous mite. Sci Rep 6:25483. doi:10.1038/srep25483
Luypaert G, Witters J, Berkvens N, Van Huylenbroeck J, De Riek J, De Clercq P (2015) Cold hardiness of the broad mite Polyphagotarsonemus latus (Acari: Tarsonemidae). Exp Appl Acarol 66:29–39. doi:10.1007/s10493-015-9894-3
Manson DCM, Oldfield GN (1996) Life forms, deuterogyny, diapause and seasonal development. In: Lindquist EE, Sabelis MW, Bruin J (eds) World crop pests, vol 6. Elsevier, Amsterdam, pp 173–183. doi:10.1016/S1572-4379(96)80009-1
Michalska K, Skoracka A, Navia D, Amrine JW (2010) Behaviour of eriophyoid mites: an overview. Exp Appl Acarol 51:39–51. doi:10.1007/978-90-481-9562-6_3
Monfreda R, Lekveishvili M, Petanovic R, Amrine JW (2010) Collection and detection of eriophyoid mites. Exp Appl Acarol 51:273–282. doi:10.1007/s10493-009-9315-6
Nault LR, Styer WE (1969) The dispersal of Aceria tulipae and three other grass-infesting Eriophyid mites in Ohio. Ann Entomol Soc Am 62:1446–1455
Navia D, Ferreira CBS, Reis AC, Gondim MGC Jr (2015) Traditional and geometric morphometrics supporting the differentiation of two new retracrus (Phytoptidae) species associated with heliconias. Exp Appl Acarol 67:87–121. doi:10.1007/s10493-015-9934-z
Petanović R, Boczek J, Stojnić B (1997) Taxonomy and bioecology of eriophyids (Acari: Eriophyoidea) associated with Canada thistle, Cirsium Arvense (L.) scop. Acarologia 38:181–191
Pfrimmer TR, Merkl ME (1981) Boll Weevil: winter survival in surface woods trash in Mississippi. Environ Entomol 10:419–423. doi:10.1093/ee/10.3.419
Pincheira-Donoso D, Hodgson DJ, Tregenza T (2008) The evolution of body size under environmental gradients in ectotherms: why should Bergmann’s rule apply to lizards? BMC Evol Biol 8:68. doi:10.1186/1471-2148-8-68
R Development Core Team (2016) R: a language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vianna
Régnière J, Duval P (1998) Overwintering mortality in the spruce budworm, Choristoneura fumiferana (Clem.) (Lepidoptera: Tortricidae), populations under field conditions. Can Entomol 130:13–26. doi:10.4039/Ent13013-1
Rodrigues D, Moreira GRP (2004) Seasonal variation in larval host plants and consequences for Heliconius erato (Lepidoptera: Nymphalidae) adult body size. Austral Ecol 29:437–445
Rogers DJ, Randolph SE (1991) Mortality rates and population density of tsetse flies correlated with satellite imagery. Nature 351:739–741. doi:10.1038/351739a0
Salt RW (1959) Role of glycerol in the cold-hardening of Bracon cephi (Gahan). Can J Zool 37:59–69. doi:10.1139/z59-007
Sequeira R, MacKauer M (1993) Seasonal variation in body size and offspring sex ratio in field populations of the parasitoid wasp, Aphidius ervi (Hymenoptera: Aphidiidae). Oikos 68:340–346. doi:10.2307/3544848
Skoracka A (2009) Description of Abacarus lolii n. sp. (Prostigmata: Eriophyoidea: Eriophyidae), a cryptic species within a grass–feeding Abacarus complex. Int J Acarol 35:405–417. doi:10.1080/01647950903292764
Skoracka A, Dabert M (2010) The cereal rust mite Abacarus hystrix (Acari: Eriophyoidea) is a complex of species: evidence from mitochondrial and nuclear DNA sequences. Bull Entomol Res 100:263–272. doi:10.1017/S0007485309990216
Skoracka A, Kuczyński L (2006a) Host related differences in the development and reproduction of the cereal rust mite, Abacarus hystrix (Acari: Eriophyidae) in Poland. Int J Acarol 32:397–405
Skoracka A, Kuczyński L (2006b) Is the cereal rust mite, Abacarus hystrix really a generalist?—testing colonization performance on novel hosts. Exp Appl Acarol 38:1–13
Skoracka A, Kuczynski L, Magowski W (2002) Morphological variation in different host populations of Abacarus hystrix (Acari: Prostigmata: Eriophyoidea). Exp Appl Acarol 26:187–193. doi:10.1023/A:1021144729837
Skoracka A, Kuczyński L, Rector BG (2007) Divergent host acceptance behavior suggests host specialization in populations of the polyphagous mite Abacarus hystrix (Acari: Prostigmata: Eriophyidae). Environ Entomol 36:899–909. doi:10.1093/ee/36.4.899
Skoracka A, Kuczyński L, Rector B, Amrine JW (2014) Wheat curl mite and dry bulb mite: untangling a taxonomic conundrum through a multidisciplinary approach. Biol J Linnean Soc 111:421–436
Slykhuis JT (1955) Aceria tulipae Keifer (Acarina: Eriophyidae) in relation to the spread of wheat streak mosaic. phytopathology 45:116–128
Somsen HW (1966) Development of a migratory form of the wheat curl mite. J Econ Entomol 59:1283–1284
Storey KB, Storey JM (1991) Biochemistry of Cryoprotectants. In: Lee RE Jr, Denlinger DL (eds) Insects at low temperature. Springer, Boston, pp 64–93
Szafer W, Kulczyński S, Pawłowski B (1969) Rośliny polskie. Państwowe Wydawnictwo Naukowe, Warszawa
Tantawy AO (1964) Studies on natural populations of Drosophila. III. Morphological and genetic differences of wing length in Drosophila melanogaster and D. simulans in relation to season. Evolution 18:560–570. doi:10.2307/2406210
Vidović B, Jojić V, Marić I, Marinković S, Hansen R, Petanović R (2014) Geometric morphometric study of geographic and host-related variability in Aceria spp. (Acari: Eriophyoidea) inhabiting Cirsium spp. (Asteraceae). Exp App Acarol 64:321–335. doi:10.1007/s10493-014-9829-4
Yuval B, Wekesa JW, Lemenager D, Kauffman EE, Washino RK (1993) Seasonal variation in body size of mosquitoes (Diptera: Culicidae) in a rice culture agroecosystem. Environ Entomol 22:459–463
Zachariassen KE, Hammel HT (1976) Nucleating agents in hemolymph of insects tolerant to freezing. Nature 262:285–287. doi:10.1038/262285a0
Živković Z, Vidović B, Jojić V, Cvrković T, Petanović R (2017) Phenetic and phylogenetic relationships among Aceria spp. (Acari: Eriophyoidea) inhabiting species within the family Brassicaceae in Serbia. Exp Appl Acarol 71:329–343. doi:10.1007/s10493-017-0128-8