Hoạt tính ức chế của chiết xuất cây gia vị Ấn Độ Cinnamomum zeylanicum đối với Alternaria solani và Curvularia lunata, các nấm mốc gây bệnh thuộc loại dematiaceous

Ajay Kumar Mishra1, Ashish Kumar Mishra1, HK Kehri2, Bechan Sharma1, Abhay K. Pandey1
1Department of Biochemistry, University of Allahabad, Allahabad, India
2Department of Botany, University of Allahabad, Allahabad, India

Tóm tắt

Tóm tắt Giới thiệu

Các nấm mốc màu đen (dematiaceous moulds) là những sinh vật gây bệnh và đóng vai trò như tác nhân nguyên nhân gây ra nấm với những mức độ nghiêm trọng khác nhau ở người và động vật. Những nấm này cũng gây mất mùa vụ và thiệt hại cho thực phẩm lưu trữ. Thông tin về hiệu quả kháng nấm của các chế phẩm từ thực vật đối với những nấm này còn rất hạn chế. Nghiên cứu hiện tại tiết lộ sự đặc trưng về hóa thực vật và tác động của chiết xuất vỏ và lá của cây gia vị Ấn Độ, Cinnamomum zeylanicum (Cz), đối với sự phát triển của hai loài nấm mốc dematiaceous, Alternaria solaniCurvularia lunata.

Phương pháp

Chiết xuất vỏ và lá của Cz được chiết liên tiếp trong các dung môi khác nhau bằng cách sử dụng thiết bị Soxhlet. Các phân tích hóa thực vật của các chiết xuất được thực hiện theo các giao thức tiêu chuẩn. Thí nghiệm sinh học kháng nấm của các chiết xuất được thực hiện bằng kỹ thuật giọt treo. Sự ức chế sự nảy mầm của bào tử nấm được theo dõi dưới ảnh hưởng của ba nồng độ chiết xuất khác nhau.

Kết quả

Nồng độ thử nghiệm thấp nhất (50 μg/ml) của chiết xuất vỏ Cz chiết trong acetone và chiết xuất lá Cz trong ether dầu mỏ và ethanol đã thể hiện sự ức chế hoàn toàn (100%) sự nảy mầm bào tử ở cả hai loài nấm. Ở nồng độ 100 μg/ml, tất cả các chiết xuất cho thấy sự ức chế khoảng 50 đến 100%. Tuy nhiên, việc điều trị các bào tử của hai loài nấm với nồng độ cao nhất (500 μg/ml) của chiết xuất vỏ và lá trong tất cả các dung môi đã cho thấy hoạt tính diệt nấm 100% vì nó ngăn chặn hoàn toàn sự nảy mầm của bào tử. Hoạt tính tương đối thấp hơn của các chiết xuất nước ở nồng độ 50 và 100 μg/ml cho thấy rằng các thành phần kháng nấm có trong vỏ và lá Cz hòa tan tốt hơn trong các dung môi hữu cơ so với nước.

Kết luận

Kết quả cho thấy rằng vỏ và lá của Cz chứa một số thành phần diệt nấm có hoạt tính chống nấm mốc tiềm năng đối với A. solaniC. lunata.

Từ khóa


Tài liệu tham khảo

Warnock DW, Johnson EM: Clinical manifestations and management of hyalohypomycosis, phaeohypomycosis and other uncommon forms of fungal infection in the compromised patient. Fungal infection in the compromised patient. Edited by: Warnock DW, Richardson MD. 1991, 756-789. Chichester: John Willey & Sons

Wilhelmus KR: Climatology of dematiaceous fungal keratitis. Am J Ophthalmol. 2005, 140: 1156-1157. 10.1016/j.ajo.2005.07.032

Tamsikar J, Naidu J, Singh SM: Phaeohyphomycotic sebaceous cyst due to Cladosporium cladosporioides: case report and review of literature. J Med Mycol. 2006, 16: 55-57.

Minotto R, Bernardi CDV, Mallman LF, Edelweiss MIA, Scroferneker ML: Chromoblastomycosis: a review of 100 cases in the state of Rio Grande do Sul, Brazil. J Am Acad Dermatol. 2001, 44: 585-592. 10.1067/mjd.2001.112220

Schwartz R: Superficial fungal infections. Lancet. 2004, 364: 1173-1182. 10.1016/S0140-6736(04)17107-9

Knudtson WU, Kirkbride CA: Fungi associated with bovine abortion in the northern plains states (USA). J Vet Diagn Invest. 1992, 4 (2): 181-185.

Pitt JI, Hocking AD, Bhudhasamai K, Miscamble BF, Wheeler KA, Tanboon-Ek P: The normal mycoflora of commodities from Thailand. 2. Beans, rice, small grains and other commodities. Intl J Food Microbiol. 1994, 23: 35-43. 10.1016/0168-1605(94)90220-8.

Larone DH: Medically Important Fungi – A Guide to Identification. 1995, Washington DC: ASM Press, 3

St-Germain G, Summerbell R: Identifying Filamentous Fungi – A Clinical Laboratory Handbook. 1996, Belmont, California: Star Publishing Company, 1

Benoit MA, Mathur SB: Identification of species of Curvularia on rice seed. Proc Int Seed Testing Assoc. 1970, 35: 99-119.

Mathews HB, Lucier WG, Fisher KD: Medicinal herbs in the United States: Research needs. Environ Health Perspec. 1999, 107: 773-778. 10.2307/3454572.

Bagghi AK: Alternative medicine – Old wine in a new bottle. J Indian Med Assoc. 2000, 98 (6): 332-333.

Sener B, Bingol F, Erdogan I, Bowers WS, Evans PH: Biological activity of some Turkish medicinal plants. Pure Appl Chem. 1998, 70: 403-406. 10.1351/pac199870020403.

Delaquis PJ, Mazza G: Antimicrobial properties of isothiocyanate in food preservation. Food Technol. 1995, 49: 73-84.

Brul S, Coote P: Preservative agents in foods: mode of action and microbial resistance mechanisms. Int J Food Microbiol. 1999, 50: 1-17. 10.1016/S0168-1605(99)00072-0

Burt S: Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods – a review. Int J Food Microbiol. 2004, 94: 223-253. 10.1016/j.ijfoodmicro.2004.03.022

Lopez Diaz TML, González CJ, Moreno B, Otero A: Effect of temperature, water activity, pH and some antimicrobials on the growth of Penicillium oslonii isolated from the surface of Spanish fermented meat sausage. Food Microbiol. 2002, 19: 1-7. 10.1006/fmic.2001.0440.

Sahin F, Gulluce M, Daferera D, Sokmen A, Sokmen M, Polissiou M, Agar G, Ozer H: Biological activities of the essential oils and methanol extract of Origanum vulgare ssp vulgare in the Eastern Anatolia region of Turkey. Food Control. 2004, 15: 549-557. 10.1016/j.foodcont.2003.08.009.

Duarte MCT, Figueira GM, Sartoratto A, Rehder VLG, Delarmelina C: Anti-Candida activity of Brazilian medicinal plants. J Ethnopharm. 2005, 97: 305-311. 10.1016/j.jep.2004.11.016.

Mishra AK, Mishra A, Bhargava A, Pandey AK: Antimicrobial activity of essential oils from the leaves of Cinnamomum spp. Natl Acad Sci Lett. 2008, 31: 341-345.

Pandey AK: Anti-staphylococcal activity of a pan-tropical aggressive and obnoxious weed Parthenium histerophorus: an in vitro study. Natl Acad Sci Lett. 2007, 30: 383-386.

Parekh J, Karathia N, Chanda S: Antibacterial activity of Bauhinia variegata. J Biomed Res. 2006, 9: 53-56.

Finar IL: Organic chemistry-vol 2: Stereochemistry and the chemistry of natural products. 2003, 769-71. Delhi: Pearson Education (Singapore) India branch, 5

Sadasivam S, Manickam A: Biochemical Methods. 1996, 192-93. New Delhi: New Age International (P) Ltd, 2

Humphries J: 1974, 452-Bacteriology. London: John Murray Albermack Street

Ranasinghe L, Jayawardena B, Abeywickrama K: Fungicidal activity of essential oils of Cinnamomum zeylanicum (L) and Syzygium aromaticum (L) Merr et LM Perry against crown rot and anthracnose pathogens isolated from banana. Lett App Microbiol. 2002, 35: 208-11. 10.1046/j.1472-765X.2002.01165.x.

Montes BR, Carvajal M: Control of Aspergillus flavus in maize with plant essential oils and their components. J Food Prot. 1998, 61: 616-619.

Delespaul Q, Billerbeck VG, Roques CG, Michel G, Marquier-Vinuales C, Bessiere JM: The antifungal activity of essential oils as determined by different screening methods. J Essential Oil Res. 2000, 12: 256-266.

Mahomoodally MF, Gurib-Fakim A, Subratty AH: Antimicrobial activities and phytochemical profiles of endemic medicinal plants of Mauritius. Pharmaceutical Biol. 2005, 43: 237-242. 10.1080/13880200590928825.

Cordell GA, Quinn-Beattie ML, Farnsworth NR: The potential of alkaloids in drug discovery. Phytother Res. 2001, 15: 183-205. 10.1002/ptr.890

Boussaada O, Chriaa J, Nabli R, Ammar S, Saidana D, Mahjoub MA, Chraeif I, Helal AN, Mighri Z: Antimicrobial and antioxidant activities of methanol extracts of Evax pygmaea (Asteraceae) growing wild in Tunisia. World J Microbiol Biotechnol. 2008, 24: 1289-1296. 10.1007/s11274-007-9600-7.