Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tăng cường khả năng chống chịu với bệnh thối gốc và bệnh thối cuống do Fusarium ở măng tây thông qua việc chọn lọc giao tử
Tóm tắt
Trong măng tây, bệnh thối gốc và thối cuống do Fusarium là nguyên nhân chính gây suy giảm sản lượng. Do các phương pháp điều trị hóa học không hiệu quả, các nỗ lực nên tập trung vào việc phát triển các giống kháng bệnh để kiểm soát bệnh. Dịch chiết độc từ môi trường nuôi cấy (TCF) của F. oxysporum đã ảnh hưởng đến sự nảy mầm và phát triển ống phấn của măng tây. Do đó, việc chọn lọc giao tử đã được đánh giá để xác định xem việc áp dụng các tác nhân chọn lọc ở cấp độ này có thể tăng cường hiệu quả chọn lọc hay không. Hai cây cái nhạy cảm và một cây đực nhạy cảm cùng một cây đực chịu đựng đã được sử dụng trong các phép lai có kiểm soát. Trước khi thụ phấn, một giọt phương tiện nảy mầm có TCF hoặc không có TCF đã được áp dụng lên nhụy hoa. Một số nhụy hoa đã được thụ phấn được cố định và phân tích bằng kính hiển vi huỳnh quang; phần còn lại được để lại trên cây để sản xuất hạt giống. Từ 50 đến 200 hạt giống đã được thu được cho mỗi tổ hợp điều trị (cây đực x cây cái x phương tiện thụ phấn). Các chồi con thu được đã được nhiễm khuẩn in vitro và đánh giá các triệu chứng bệnh. Việc áp dụng TCF lên nhụy hoa đã làm giảm sự nảy mầm và phát triển ống phấn so với các đối chứng không được điều trị, không phụ thuộc vào tổ hợp kiểu gen. Sự nảy mầm phấn hoa và phát triển ống phấn kém hơn ở kiểu gen đực chịu được so với kiểu gen nhạy cảm. Khi áp dụng TCF, số lượng hạt trên mỗi lần thụ phấn so với các đối chứng chỉ giảm khi kiểu gen nhạy cảm là cây thụ phấn. Tỷ lệ diện tích rễ bị ảnh hưởng của các thế hệ con thu được sau khi áp dụng TCF thấp hơn so với các đối chứng chỉ khi kiểu gen chịu đựng là cây thụ phấn. Việc tăng cường khả năng chống lại Fusarium trong măng tây thông qua việc chọn lọc giao tử dường như là khả thi.
Từ khóa
#Fusarium #măng tây #bệnh thối gốc #thối cuống #chọn lọc giao tử #khả năng chống chịuTài liệu tham khảo
Bruna, A., 1991. Marchitez y pudriciones de corona y raíces en espárrago (Asparagus officinalis L.)causado por Fusarium oxysporum Schlecht f. sp. asparagi Cohen. Agricultura Técnica (Chile) 51(1): 52–54.
Cohen, S.Y. & F.D. Heald, 1941. A wilt and root rot of asparagus caused by Fusarium oxysporum (Schlecht).Plant Dis Rep 25: 503–509.
Compton, M.E., 1994. Statistical methods suitable for the analysis of plant tissueculture data. Pl Cell Tiss Org Cult 37: 217–242.
Darakov, O.B., 1995. Gametophyte selection of tomatoesfor resistance to early blight disease. Sex Plant Reprod 8: 95–98.
Ellison, J.H., 1986. Asparagus breeding.In: M.J. Bassett (Ed.), Breeding Vegetable Crops, pp. 521–569. Avi, Wesport, Connecticut.
Endo, R.M. & E.C. Burkholder, 1971. The association of Fusarium moniliforme with the crown rot complex of asparagus (Abst). Phytopathology 61: 891.
Hormaza, J.I. & M. Herrero, 1992. Pollen selection. Theor Appl Genet83: 663–672.
Hormaza, J.I. & M. Herrero, 1996. Male gametophytic selection as a plant breeding tool.Scientia Hortic 65: 321–333.
Lacy, M.L., 1979. Effects of chemicals on stand establishment and yields ofasparagus. Plant Dis Rep 63: 612–616.
Lassaga, S.L., E.L. Camadro & F.J. Babinec, 1998. Assesinggenetic variability for Fusarium resistance in three asparagus populations with an in vitro assay. Euphytica 103: 131–136.
Lewis, G.D. & P.B. Schoemaker, 1964. Resistance of Asparagus species to Fusarium oxysporum f. sp.asparagi. Plant Dis Rep 48: 364–365.
Martin, F.W., 1958. Staining and observing pollen tubes in the styleby means of fluorescence. Stain Tech 34: 125–128.
Murashige, T. & F. Skoog, 1962. A revisedmedium for rapid growth and bioassays with tobacco tissues cultures. Physiol Plant 15: 473–479.
Ottaviano, E. & D.L. Mulcahy, 1989. Genetics of angiosperm pollen. Adv Genet 26: 1–64.
Ottaviano, E., M.E. Pè & G. Binelli, 1991. Genetic manipulation of male gametophytic generation in higher plants. In: B.B. Biswas & J.R. Harris (Eds.), Plant Genetic Engineering, Vol 17, Subcellular Biochemistry, Plenum Press, New York, USA.
Pontaroli, A.C., E.L. Camadro, F.J. Babinec & A. del C. Ridao, 2000. Responses of Asparagus officinalis pollen tothe culture filtrate of Fusarium oxysporum f. sp. asparagi. Sci Hortic 84: 349–356.
Ridao, A. del C., 1992.La fusariosis como causa del declinamiento de las esparragueras. CERBAS, Unidad Integrada Balcarce (EEA INTA - F.C.A., UNMdP), E.E.A. Hilario Ascasubi, 14 pp.
Sari-Gorla, M., C. Frova, G. Binelli & E. Ottaviano, 1986.The extent of gametophytic-sporophytic gene expression in maize. Theor Appl Genet 72: 42–47.
SAS Institute,1998. SAS/STATTM for WindowsTM User's guide, Release 6.12 Edition. SAS Inst. Inc., Cary, North Carolina, 1028 pp.
Simon, C.J. & J.C. Sanford, 1986. Induction of gametic selection in situ by stylar applications of selectiveagents. In: D. Mulcahy, G. Bergamini & E. Ottaviano (Eds.), Biotechnology and Ecology of Pollen, pp. 107–112, Springer Verlag Berlin, Heidelberg, New York.
Stephens, C.T., R.M. De Vries & K.C. Sink, 1989. Evaluationof Asparagus species for resistance to Fusarium oxysporum f. sp. asparagi and F. moniliforme. Hort Science 24(2): 365–368.
Tanskley, S.D., D. Zamir & C.M. Rick, 1981. Evidence for extensive overlap of sporophytic andgametophytic gene expression in Lycopersicon esculentum. Science 213: 453–455.
Tarchini, R., M. Sari-Gorla & M.E. Pè, 1994. Male gametophytic selection: Perspectives for sorghum and pearl millet improvement. In: Use of Molecular Markers in Sorghum and Pearl Millet Breeding for Developing Countries, pp. 46–52, Proc ODA Plant Sci Res Prog Conf, Norwich, UK.
Ter-Avanesian, D.V., 1978. The effect of varying the number of pollen grains used infertilization. Theor Appl Genet 52: 77–79.
Trexler, J.C. & J. Travis, 1993. Nontraditional regressionanalysis. Ecology 74(6): 1629–1637.
Tu, C.C., Y.H. Cheng & A.S. Cheng, 1985. A rapid method fortesting resistance to Fusarium wilt in asparagus hybrids. In: E.C. Lougheed & H. Tiesser (Eds.), Proc 6th Int Asparagus Symp, University of Guelph, Ontario.
Williams, E.G., R.B. Knox & J.L. Rouse, 1982. Pollination subsystemsdistinguished by pollen tube arrest after incompatible interespecific crosses in Rhododendron (Ericaceae). J Cell Sci 53: 255–277.
Willing, R.P. & J.P. Mascarenhas, 1984. Analysis of the complexity and diversity of mRNAs frompollen and shoots of Tradescanthia. Plant Physiol 75: 865–868.