Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tác động điều hòa miễn dịch và kháng viêm của sợi nấm Phellinus linteus
Tóm tắt
Nghiên cứu hiện tại chủ yếu nhằm đánh giá cơ chế tiềm ẩn của các tác động điều hòa miễn dịch và kháng viêm của sợi nấm Phellinus linteus (PLM). Để đánh giá liệu PLM có ảnh hưởng đến sự sản xuất các dấu hiệu liên quan đến viêm hay không, các tế bào RAW264.7 được kích thích bằng Lipopolysaccharide (LPS) đã được điều trị bằng PLM với các nồng độ 50, 100, 200 và 500 μg/mL. Tế bào lách, tuyến ức, tế bào dịch thượng vị (PEC) và tế bào đơn nhân trong máu ngoại vi (PBMC) đã được tách ra từ chuột Balb/c được điều trị bằng nhân sâm Hàn Quốc hoặc PLM một lần mỗi ngày trong 5 tuần. Hơn nữa, tất cả các con chuột ngoại trừ chuột bình thường đã được kích thích bằng pepton proteose 10% (PP) được điều trị 3 ngày trước khi hy sinh và tinh bột 2% được điều trị 2 ngày trước khi hy sinh. Sau đó, chất cytotropic đã được đánh giá bằng cách sử dụng phân tích dòng tế bào và thử nghiệm ELISA. Việc điều trị PLM200 đã ức chế đáng kể sự sản xuất nitric oxide (NO) và prostaglandin E2 (PGE2) và ức chế sự giải phóng các cytokine proinflammatory như interleukin (IL)-6, IL-1β và yếu tố hoại tử khối u (TNF)-α theo liều lượng trong các tế bào RAW264.7 được kích thích bằng LPS. Việc bổ sung PLM200 cho thấy sự gia tăng đáng kể việc sản xuất IL-2, IL-12 và interferon (IFN)-γ và làm tăng tỷ lệ IFN-γ (T-helper type 1, Th1) so với IL-4 (T-helper type 2, Th2) trong các tế bào lách. Sau khi điều trị PLM200, sự gia tăng đáng kể của CD4+CD25+, CD4+&CD8+, và CD4+CD69+ đã được phát hiện trong tuyến ức. Hơn nữa, CD4+ và CD4+CD69+ trong PBMC cũng cho thấy sự gia tăng đáng kể cùng với CD69+ trong PEC. Tổng hợp lại, các kết quả này cho thấy tác động điều hòa miễn dịch của PLM liên quan đến tỷ lệ IFN-γ/IL4 tăng cao, như một chỉ số của Th1/Th2, cũng như tác dụng kháng viêm trong các tế bào RAW264.7 được kích thích bằng LPS. Do đó, các phát hiện của chúng tôi cho thấy rằng PLM sở hữu các hiệu ứng kích thích miễn dịch và kháng viêm.
Từ khóa
#Phellinus linteus #sợi nấm #điều hòa miễn dịch #kháng viêm #cytokine #Lipopolysaccharide #RAW264.7 #chuột Balb/cTài liệu tham khảo
Cronkite DA, Strutt TM. The regulation of inflammation by innate and adaptive lymphocytes. J Immunol Res. 2018;2018:146538. https://doi.org/10.1155/2018/1467538.
Ageitos JM, Sánchez-Pérez A, Calo-Mata P, Villa TG. Antimicrobial peptides (AMPs): ancient compounds that represent novel weapons in the fight against bacteria. Biochem Pharmacol. 2017;133:117–38. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2016.09.018.
Chairatana P, Nolan EM. Defensins, lectins, mucins, and secretory immunoglobulin a: microbe-binding biomolecules that contribute to mucosal immunity in the human gut. Crit Rev Biochem Mol Biol. 2017;52(1):45–56. https://doi.org/10.1080/10409238.2016.1243654.
Hajishengallis G, Reis ES, Mastellos DC, Ricklin D, Lambris JD. Novel mechanisms and functions of complement. Nat Immunol. 2017;18(12):1288–98. https://doi.org/10.1038/ni.3858.
Amit I, Garber M, Chevrier N, Leite AP, Donner Y, Eisenhaure T, et al. Unbiased reconstruction of a mammalian transcriptional network mediating pathogen responses. Science. 2009;326(5950):257–63. https://doi.org/10.1126/science.1179050.
Mittal M, Siddiqui MR, Tran K, Reddy SP, Malik AB. Reactive oxygen species in inflammation and tissue injury. Antioxid Redox Signal. 2014;20(7):1126–67. https://doi.org/10.1089/ars.2012.5149.
Manfredi AA, Ramirez GA, Rovere-Querini P, Maugeri N. The Neutrophil's choice: Phagocytose vs make neutrophil extracellular traps. Front Immunol. 2018;9:288. https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.00288.
Savill JS, Wyllie AH, Henson JE, Walport MJ, Henson PM, Haslett C. Macrophage phagocytosis of aging neutrophils in inflammation. Programmed cell death in the neutrophil leads to its recognition by macrophages. J Clin Invest. 1989;83(3):865–75. https://doi.org/10.1172/JCI113970.
Murray PJ. Macrophage polarization. Annu Rev Physiol. 2017;79:541–66. https://doi.org/10.1146/annurev-physiol-022516-034339.
Shi Y, Felder MA, Sondel PM, Rakhmilevich AL. Synergy of anti-CD40, CpG and MPL in activation of mouse macrophages. Mol Immunol. 2015;66(2):208–15. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2015.03.008.
Atri C, Guerfali FZ, Laouini D. Role of human macrophage polarization in inflammation during infectious diseases. Int J Mol Sci. 2018;19(6):1801. https://doi.org/10.3390/ijms19061801.
Nicoletti R, Ciavatta ML, Buommino E, Tufano MA. Antitumor extrolites produced by Penicillium species. Int J Anal Pharm Biomed Sci. 2008;2(1):1–23 http://www.globalsciencebooks.info/Online/GSBOnline/images/0806/IJBPS_2(1)/IJBPS_2(1)1-23o.pdf.
Ng TB, Wang HX. Pharmacological actions of Cordyceps, a prized folk medicine. J Pharm Pharmacol. 2005;57(12):1509–19. https://doi.org/10.1211/jpp.57.12.0001.
Cho JH, Cho SD, Hu H, Kim SH, Lee SK, Lee YS, et al. The roles of ERK1/2 and p38 MAP kinases in the preventive mechanisms of mushroom Phellinus linteus against the inhibition of gap junctional intercellular communication by hydrogen peroxide. Carcinogenesis. 2002;23(7):1163–9. https://doi.org/10.1093/carcin/23.7.1163.
Nakamura T, Matsugo S, Uzuka Y, Matsuo S, Kawagishi H. Fractionation and anti-tumor activity of the mycelia of liquid-cultured Phellinus linteus. Biosci Biotechnol Biochem. 2004;68(4):868–72. https://doi.org/10.1271/bbb.68.868.
Kim SH, Song YS, Kim SK, Kim BC, Lim CJ, Park EH. Anti-inflammatory and related pharmacological activities of the n-BuOH subfraction of mushroom Phellinus linteus. J Ethnopharmacol. 2004;93(1):141–6. https://doi.org/10.1016/j.jep.2004.03.048.
Shin MR, Lee JA, Kim MJ, Park HJ, Park BW, Seo SB, et al. Protective effects of Phellinus linteus mycelium on the development of osteoarthritis after monosodium Iodoacetate injection. Evid Based Complement Alternat Med. 2020;2020:7240858. https://doi.org/10.1155/2020/7240858.
Barton C, Vigor K, Scott R, Jones P, Lentfer H, Bax HJ, et al. Beta-glucan contamination of pharmaceutical products: how much should we accept? Cancer Immunol Immunother. 2016;65(11):1289–301. https://doi.org/10.1007/s00262-016-1875-9.
Kim YH, Jung EG, Han KI, Patnaik BB, Kwon HJ, Lee HS, et al. Immunomodulatory effects of extracellular β-Glucan isolated from the king oyster mushroom Pleurotus eryngii (Agaricomycetes) and its sulfated form on signaling molecules involved in innate immunity. Int J Med Mushrooms. 2017;19(6):521–33. https://doi.org/10.1615/IntJMedMushrooms.v19.i6.40.
Korea Food & Drug Administration, Food code, 2019. http://www.foodsafetykorea.go.kr/foodcode/01_02.jsp?idx=263 (cited by 19 Aug 2020).
Ayeka PA, Bian Y, Githaiga PM, Zhao Y. The immunomodulatory activities of licorice polysaccharides (Glycyrrhiza uralensis Fisch.) in CT 26 tumor-bearing mice. BMC Complement Altern Med. 2017;17(1):536. https://doi.org/10.1186/s12906-017-2030-7.
Zhu T, Kim SH, Chen CY. A medicinal mushroom: Phellinus linteus. Curr Med Chem. 2008;15(13):1330–5. https://doi.org/10.2174/092986708784534929.
Fan GW, Zhang Y, Jiang X, Zhu Y, Wang B, Su L, et al. Anti-inflammatory activity of baicalein in LPS-stimulated RAW 264.7 macrophages via estrogen receptor and NF-κB-dependent pathways. Inflammation. 2013;36(6):1584–91. https://doi.org/10.1007/s10753-013-9703-2.
Moon SM, Lee SA, Hong JH, Kim JS, Kim DK, Kim CS. Oleamide suppresses inflammatory responses in LPS-induced RAW264.7 murine macrophages and alleviates paw edema in a carrageenan-induced inflammatory rat model. Int Immunopharmacol. 2018;60:246. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2018.05.006.
Miyazaki S, Ishikawa F, Fujikawa T, Nagata S, Yamaguchi K. Intraperitoneal injection of lipopolysaccharide induces dynamic migration of gr-1high polymorphonuclear neutrophils in the murine abdominal cavity. Clin Diagn Lab Immunol. 2004;11(3):452–7. https://doi.org/10.1128/CDLI.11.3.452-457.2004.
Schnyder J, Baggiolini M. Secretion of lysosomal hydrolases by stimulated and nonstimulated macrophages. J Exp Med. 1978;148(2):435–50. https://doi.org/10.1084/jem.148.2.435.
Gahan CG, Collins JK. Non-dystrophic 129 REJ mice are susceptible to i.p. infection with listeria monocytogenes despite an ability to recruit inflammatory neutrophils to the peritoneal cavity. Microb Pathog. 1995;18(5):355–64. https://doi.org/10.1006/mpat.1995.0032.
Rydell N, Stertman L, Sjöholm I. Starch microparticles as vaccine adjuvant. Expert Opin Drug Deliv. 2005;2(5):807–28. https://doi.org/10.1517/17425247.2.5.807.
Xu HM. Th1 cytokine-based immunotherapy for cancer. Hepatobiliary Pancreat Dis Int. 2014;13(5):482–94. https://doi.org/10.1016/s1499-3872(14)60305-2.
Larsen MW, Moser C, Høiby N, Song Z, Kharazmi A. Ginseng modulates the immune response by induction of interleukin-12 production. APMIS. 2004;112(6):369–73. https://doi.org/10.1111/j.1600-0463.2004.apm1120607.x.
Nakayama T. An inflammatory response is essential for the development of adaptive immunity-immunogenicity and immunotoxicity. Vaccine. 2016;34(47):5815–8. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2016.08.051.
Talib WH, Saleh S. Propionibacterium acnes augments antitumor, anti-angiogenesis and Immunomodulatory effects of melatonin on breast Cancer implanted in mice. PLoS One. 2015;10(4):e0124384. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0124384.
Zhao L, Yang S, Guo Y, Sun G, Li B. Chronic arsenic exposure in drinking water interferes with the balances of T lymphocyte subpopulations as well as stimulates the functions of dendritic cells in vivo. Int Immunopharmacol. 2019;71:115–31. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2019.03.022.
Sumiyoshi M, Sakanaka M, Kimura Y. Effects of red ginseng extract on allergic reactions to food in Balb/c mice. J Ethnopharmacol. 2010;132(1):206–12. https://doi.org/10.1016/j.jep.2010.08.012.
Casadevall A, Pirofski L. Host-pathogen interactions: the attributes of virulence. J Infect Dis. 2001;184(3):337–44. https://doi.org/10.1086/322044.
Sanchez-Trincado JL, Gomez-Perosanz M, Reche PA. Fundamentals and methods for T- and B-cell epitope prediction. J Immunol Res. 2017;2017:2680160. https://doi.org/10.1155/2017/2680160.
Azad MAK, Sarker M, Wan D. Immunomodulatory effects of probiotics on cytokine profiles. Biomed Res Int. 2018;2018:8063647. https://doi.org/10.1155/2018/8063647.
Chen R, Xiang F, Hu J, Cao X, Tan X, Jia P, et al. Factors associated with the elevated percentage of CD4CD69 T cells in maintained hemodialysis patients. Ren Fail. 2017;39(1):547–54. https://doi.org/10.1080/0886022X.2017.1349672.