Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Sự khác biệt của tế bào biểu mô và mô đệm trong ung thư biểu mô tế bào vảy vùng đầu và cổ về phản ứng hóa trị ngoại vi
Tóm tắt
Việc dự đoán chính xác hiệu quả của các tác nhân hóa trị liệu trong từng trường hợp ung thư biểu mô tế bào vảy vùng đầu và cổ (HNSCC) là rất quan trọng và có thể được thực hiện bằng cách sử dụng các xét nghiệm ex vivo. Ba mẫu sinh thiết từ mỗi bệnh nhân HNSCC được lấy, xắt nhỏ và phân hủy bằng collagenase. Các mẫu HNSCC đã được phân hủy này được thêm vào các dung dịch loãng tuần tự của cisplatin (CIS) hoặc docetaxel (DTX), được thực hiện trong điều kiện bảo vệ flavin trên các đĩa vi mô có lớp ECM. Sau 72 giờ ủ, các mẫu cấy được cố định bằng methanol và nhuộm bằng Giemsa. Nồng độ ngắt (COC; nồng độ hoàn toàn ức chế sự hình thành thuộc địa) cho tế bào biểu mô (EC) và tế bào mô đệm (SC) đã được đánh giá. 12/15 HNSCC (80%) có thể được đánh giá. Mặc dù có sự tương quan đáng kể của COC của CIS liên quan đến sự hình thành thuộc địa của EC hoặc SC, nhưng không có sự khác biệt đáng kể nào trong phản ứng của các mẫu HNSCC cá thể được tìm thấy trong bài kiểm tra t cho các mẫu ghép (p > 0.16). Điều tương tự cũng áp dụng cho DTX. Tuy nhiên, EC và SC cho thấy sự khác biệt trong đáp ứng hóa trị dẫn đến sự biến đổi COC vượt quá một bước pha loãng trong 44.1% (CIS) và 20% của HNSCC (DTX). Không tìm thấy sự tương quan đáng kể giữa COC của cả hai quần thể tế bào trong các mẫu HNSCC. Phản ứng hóa trị ngoại vi của EC và SC của HNSCC phải được phân tích một cách tách biệt.
Từ khóa
#ung thư biểu mô #tế bào vảy #hóa trị #phản ứng hóa trị ngoại vi #tế bào biểu mô #tế bào mô đệmTài liệu tham khảo
Wright JL, Cobb JP, Gumport SL, Golomb FM, Safadi D (1957) Investigation of the relation between clinical and tissue culture response to chemotherapeutic agents of human cancer. N Engl J Med 257:1207–1211
DiPaolo JA, Dowd JE (1961) Evaluation of inhibition of human tumor tissue by cancer chemotherapeutic drugs with an in vitro test. J Natl Cancer Inst 27:807–815
Courtenay VD, Mills J (1978) An in vitro colony assay for human tumours grown in immune-suppressed mice and treated in vivo with cytotoxic agents. Br J Cancer 37:261–268
Freeman AE, Hoffman RM (1986) In vivo-like growth of human tumors in vitro. Proc Natl Acad Sci USA 83:2694–2698
Vescio RA, Redfern CH, Nelson TJ, Ugoretz S, Stern PH, Hoffmann RM (1987) In vivo-like drug responses of human tumors growing in three-dimensional, gel-supported, primary culture. Proc Natl Acad Sci USA 84:5029–5033
Vescio RA, Connors KM, Bordin GM, Robb JA, Youngkin T, Umbreit JN, Hoffmann RM (1990) The distinction of small cell and non-small cell lung cancer by growth in native-state histoculture. Cancer Res 50:6095–6099
Furukawa T, Kubota T, Watanabe M, Takahara T, Yamaguchi H, Kase S, Kodaira S, Ishibiki K, Kitajima M (1992) High in vitro correlation of drug response using sponge-gel-supported three-dimensional histoculture and the MTT end point. Int J Cancer 51:489–498
Robbins KT, Varki NM, Storniolo AM, Hoffman H, Hoffman RM (1991) Drug response of head and neck tumors in native-state histoculture. Arch Otolaryngol Head Neck Surg 117:83–86
Von Hoff DD (1990) He’s not going to talk about in vitro predictive assays again, is he? J Natl Cancer Inst 82:96–101
Dollner R, Granzow C, Werner JA, Dietz A (2004) Is there a role for chemosensitivity tests in head and neck cancer? Onkologie 27:310–315
Weisenthal LM, Lippman ME (1985) Clonogenic and nonclonogenic in vitro chemosensitivity assays. Cancer Treat Rep 69:615–632
Dietz A, Rudat V, Dreyhaupt J, Pritsch M, Hoppe F, Hagen R, Pfreundner L, Schröder U, Eckel H, Hess M, Schröder M, Schneider P, Jens B, Zenner HP, Werner JA, Engenhardt-Cabillic R, Vanselow B, Plinkert P, Niewald M, Kuhnt T, Budach W, Flentje M (2009) Induction chemotherapy with paclitaxel and cisplatin followed by radiotherapy for larynx organ preservation in advanced laryngeal and hypopharyngeal cancer offers moderate late toxicity outcome (DeLOS-I-trial). Eur Arch Otorhinolaryngol 266(8):1291–1300
Rajaraman R, Guernsey DL, Rajaraman MM, Rajaraman SR (2006) Stem cells, senescence, neosis and self-renewal in cancer. Cancer Cell Int 6:25. doi:10.1186/1475-2867-6-25
Rajamaran R, Rajaraman MM, Rajaraman SR, Guernsey DL (2005) Neosis: a paradigm of self-renewal in cancer. Cell Biol Int 29:1084–1097
Heuser M, Kopun M, Rittgen W, Granzow C (2005) Cytotoxicity determination without photochemical artifacts. Cancer Lett 223:57–66
Granzow C, Kopun M, Kröber T (1995) Riboflavin-mediated photosensitization of Vinca alkaloids distorts drug sensitivity assays. Cancer Res 55:4837–4843
Wichmann G, Horn I-S, Boehm A, Mozet C, Tschöp K, Dollner R, Dietz A (2009) Single biopsies from head and neck squamous cell carcinomas are representative regarding the entire tumor’s chemosensitivity to cisplatin and docetaxel. Onkologie 32(5):264–272
Dietz A, Tschöp K, Wichmann G, Granzow C (2008) Method and kit for the ex vivo evaluation of the response of a tumor to conditions to be tested. US-Provisional Ser. No. 61/044,082
Cabelguenne A, Blons H, Waziers De I, Carnot F, Houllier A-M, Soussi T, Brasnu D, Beaune P, Laccourreye O, Laurent-Puig P (2000) p53 alterations predict tumor response to neoadjuvant chemotherapy in head and neck squamous cell carcinoma: a prospective series. J Clin Oncol 18:1465–1473
Fouret P, Temam S, Charlotte F, Lacau-St-Guily J (2002) Tumor stage, node stage, p53 gene status, and bcl-2 protein expression as predictors of tumor response to platin-fluorouracil chemotherapy in patients with squamous-cell carcinoma of the head and neck. Br J Cancer 87:1390–1395
Hoffmann TK, Sonkoly E, Hauser U, Lierop A, Whiteside TL, Klussmann JP, Hafner D, Schuler P, Friebe-Hoffmann U, Scheckenbach K, Erjala K, Gréman R, Schipper J, Bier H, Balz V (2008) Alterations in the p53 pathway and their association with radio- and chemosensitivity in head and neck squamous cell carcinoma. Oral Oncol 44(12):1100–1109
Andrews GA, Xi S, Pomerantz RG, Lin CJ, Gooding WE, Wentzel AL, Wu L, Sidransky D, Grandis JR (2004) Mutation of p53 in head and neck squamous cell carcinoma correlates with Bcl-2 expression and increased susceptibility to cisplatin-induced apoptosis. Head Neck 26:870–877
American Joint Committee on Cancer: Comparison Guide: Cancer Staging Manual Fifth versus Sixth Edition. http://www.cancerstaging.org/products/ajccguide.pdf. Accessed 31 March 2009
Dollner R, Kopun M, Dietz A, Wiessler M, Granzow C (2002) Chemoreactivity profiling of HNSCC: equipotentiality of platinum compounds and glufosfamide, a novel alkylating agent. Proc Am Assn Cancer Res 43:926–931
Dollner R, Granzow C, Helmke BM, Ruess A, Schad A, Dietz A (2004) The impact of stromal cell contamination on chemosensitivity testing of head and neck carcinoma. Anticancer Res 24:325–331
Desoize B, Berthiot G, Manot L, Coninx P, Dumont P (1996) Evaluation of a prediction model of cisplatin dose based on total platinum plasma concentration. Eur J Cancer A 32:1734–1738
Bissett D, Setanoians A, Cassidy J, Graham MA, Chadwick GA, Wilson P, Auzannet V, Le Bail N, Kaye SB, Kerr DJ (1993) Phase I and pharmakokinetic study of Taxotere (RP 56976) administered as a 24-h infusion. Cancer Res 53:523–527
Witz IP, Levy-Nissenbaum O (2006) The tumor microenvironment in the post-PAGET era. Cancer Lett 242:1–10
Freeman AE, Hoffman RM (1986) In vivo-like growth of human tumors in vitro. Proc Natl Acad Sci USA 83:2694–2698
Dollner R, Granzow C, Neudert M, Dietz A (2006) Ex vivo chemosensitivity of head and neck carcinoma to cytostatic drug combinations. Anticancer Res 26:1651–1655
Granzow C, Kopun M, Heuser M, Herth F, Becker HD (2004) Chemoresistance of human lung tumor stromal cells. Am Assn Cancer Res 95th Annual Meeting Proc Suppl. abstract LB-82
Hasegawa Y, Goto M, Hanai N, Ijichi K, Adachi M, Terada A, Hyodo I, Ogawa T, Furukawa T (2007) Evaluation of optimal drug concentration in histoculture drug response assay in association with clinical efficacy for head and neck cancer. Oral Oncol 43:749–756
Singh B, Li R, Xu L, Poluri A, Patel S, Shaha AR, Pfister D, Sherman E, Goberdhan A, Hoffman RM, Shah J (2002) Prediction of survival in patients with head and neck cancer using the histoculture drug response assay. Head Neck 24:437–442
Mukaida H, Hirabayashi N, Hirai T, Iwata T, Saeki S, Toge T (1991) Significance of freshly cultured fibroblasts from different tissues in promoting cancer cell growth. Int J Cancer 48:423–427
Zhang W, Matrisian LM, Holmbeck K, Vick CC, Rosenthal EL (2006) Fibroblast-derived MT1-MMP promotes tumor progression in vitro and in vivo. BMC Cancer 6:52
Rosenthal EL, McCrory A, Talbert M, Carroll W, Magnuson JS, Peters GE (2004) Expression of proteolytic enzymes in head and neck cancer-associated fibroblasts. Arch Otolaryng Head Nack Surg 130:943–947
Song Z, Powell WC, Kasahara N, van Bokhoven A, Miller GJ, Roy-Burman P (2000) The effect of fibroblast growth factor 8, isoform b, on the biology of prostata carcinoma cells and their interaction with stromal cells. Cancer Res 60:6730–6736