Nghiên cứu bảo vệ gan trên các phân đoạn chiết xuất methanol của Lindernia ciliata và phát triển hồ sơ phân tích định tính cho chiết xuất hoạt tính sinh học

Praneetha Pallerla1, Narsimha Reddy Yellu1, Ravi Kumar Bobbala1
1University College of Pharmaceutical Sciences, Kakatiya University, Warangal, Telangana state, 506009, India

Tóm tắt

Tóm tắt Đặt vấn đề

Mục tiêu của nghiên cứu là đánh giá hoạt động bảo vệ gan của các phân đoạn chiết xuất methanol của Lindernia ciliata (LC) và phát triển hồ sơ phân tích định tính của phân đoạn hoạt tính sinh học bằng phân tích vân tay HPLC. Tất cả các phân đoạn của chiết xuất methanol của Lindernia ciliata (LCME) được đánh giá về tổng các hợp chất phenolic, flavonoid và khả năng chống oxy hóa in vitro bằng cách sử dụng hoạt động quét DPPH, superoxide, nitric oxide, hydroxyl radical và kiểm tra khả năng khôi phục. Nghiên cứu độc tính cấp tính được thực hiện cho tất cả các phân đoạn và hai liều thử nghiệm 50 và 100 mg/kg được chọn cho nghiên cứu bảo vệ gan. Tổn thương gan được gây ra ở các nhóm chuột khác nhau bằng cách cho uống paracetamol với liều 3 g/kg.cơ thể.p.o. và ảnh hưởng của các phân đoạn được thử nghiệm để xem xét tiềm năng bảo vệ gan bằng cách đánh giá các chỉ số sinh hóa huyết thanh và mô học của gan của chuột. Phân đoạn hiệu quả được đánh giá về hoạt tính chống độc gan đối với D-Galactosamine (400 mg/kg b.w. i.p.) và các thông số chống oxy hóa in vivo như Glutathione (GSH), Melondialdehyde (MDA) và mức độ Catalase (CAT) được ước lượng bằng cách sử dụng huyền phù gan.

Kết quả

Trong tất cả các phân đoạn, phân đoạn butanone của LCME (BNF-LCME) cho thấy hoạt động bảo vệ gan tốt hơn và do đó được chọn để đánh giá hoạt tính chống độc gan đối với D-GaIN. Hoạt tính của BNF-LCME được hỗ trợ tốt trong các nghiên cứu chống oxy hóa in vitro và in vivo và có thể được quy cho các hợp chất flavonoid, phenolic có trong phân đoạn. Do đó, BNF-LCME đã được thực hiện việc phát triển hồ sơ phân tích định tính bằng cách sử dụng phân tích vân tay HPLC.

Kết luận

Tất cả các phân đoạn của LCME đều thể hiện hoạt động bảo vệ gan đáng kể và BNF-LCME (50 mg/kg) được xác định là phân đoạn hiệu quả nhất.

Từ khóa


Tài liệu tham khảo

Neamsuvan O, Singdam P, Yingcharoen K, Sengnon N. A survey of medicinal plants in mangrove and beach forests from sating Phra peninsula, Songkhla Province, Thailand. J Med Plant Res. 2012;6:2421–37.

Devi CB, Singh NKS, Ram SS, Sudarshan M, Chakraborty A, Rajmuhon N. Trace element profile of some selected medicinal plants of Manipur, India. Sci J Pure Appl Sci. 2013;2:332–40.

Praneetha P, Narsimha Reddy Y, Ravi Kumar B. In-vitro and In-vivo hepatoprotective studies on methanolic extract of aerial parts of Ludwigia hyssopifolia G Don Exell. Pharmacogn Mag. 2019;14:546–55.

Blios MS. Antioxidant determination by the use of stable free radical. Nature. 1958;181:1199–200.

Jiang C, Jiao Y, Chen X, Li X, Yan W, Yu B, Xiong Q. Preliminary characterization and potential hepatoprotective effect of polysaccharides from Cipangopaludina chinensis. Food Chem Toxicol. 2013;59:18–25.

Snezana MM, Aleksandar ND, Nebojsa LA, Silvana AA, Tatjana SK, Gordana MB, Mirjana BVM, Radmila ZK. Nitric oxide-scavenging activity of polyhydroxylated fullerenol, C60(OH)24. Nitric Oxide. 2004;11:201–7.

Hazra B, Biswas S, Mandal N. Antioxidant and free radical scavenging activity of Spondias pinnata. BMC Complement Altern Med. 2008;8:63.

Bursal E, Koksal E. Evaluation of reducing power and radical scavenging activities of water and ethanol extracts from sumac (Rhus coriaria L.). Food Res Int. 2011;44:2217–21.

OECD guidelines for testing of chemicals (India). Acute oral toxicity Test No- 423, India. 2001. https://www.oecd.org/chemicalsafety/risk-assessment/1948378.pdf . Accessed 17 Dec 2001.

Sabeena S, Ajay GN. Hepatoprotective effect of leaves of Erythroxylum monogynum Roxb. On paracetamol induced toxicity. Asian Pac J Trop Biomed. 2013;3(Suppl 11):877–81.

Karan M, Vasisht K, Handa SS. Antihepatotoxic activity of Swertia chirata against paracetamol and galactosamine induced hepatotoxicity in rats. Phytother Res. 1999;13:95–101.

Glover RP, Kuzell WC. Prothrombin time-determination by a whole blood micro-method for control of anticoagulant therapy. Calif Med. 1961;95(Suppl 1):24–9.

Praneetha P, Narsimha Reddy Y, Ravi Kumar B. In-vitro and in-vivo Hepatoprotective studies on methanolic extract of aerial parts of Ludwigia hyssopifolia G. Don Exell Pharmacog Mag. 2019;14:546–55.

Keppler D, Lesch R, Reutter W, Decker K. Experimental hepatitis induced by D-galactosamine. Exp Mol Pathol. 1968;9:279–90.

Decker K, Keppler D. Galactosamine hepatitis: key role of the nucleotide deficiency period in the pathogenesis of cell injury and cell death. Rev Physiol Biochem Pharmacol. 1974;71:77–106.

Suttie JW, Jackson CM. Prothrombin structure, activation, and biosynthesis. Physiol Rev. 1977;57:1–70.

Vaca CE, Wilhelm J, Harms-Rihsdahl M. Interaction of lipid peroxidation product with DNA. A review. Mutat Res-Rev Mutat. 1988;195:137–49.

Henry JF, Hongqiao Z, Alessandra R. Glutathione: overview of its protective roles, measurement, and biosynthesis. Mol Asp Med. 2009;30:1–12.

Rajani M, Niranjan S, Kanaki NS. Phytochemical standardization of herbal drugs and poly herbal formulations. In: Ramawat KG, Merillon JM, editors. Bioactive molecules and medicinal plants. India: Springer; 2008. p. 349–69.