Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tỷ lệ kháng antiseptic gene E của hợp chất Ammonium Bậc 4 cực kỳ cao ở các chủng Acinetobacter baumannii kháng nhiều loại thuốc tại Malaysia
Tóm tắt
Các chất khử trùng thường được sử dụng để quản lý các mầm bệnh kháng nhiều loại thuốc (MDR) trong bệnh viện. Chúng đóng vai trò quan trọng trong thực hành kiểm soát nhiễm trùng. Các chất khử trùng thường được dùng để khử khuẩn da, băng gạc, chuẩn bị các vị trí giải phẫu cho các thủ tục phẫu thuật, tiệt trùng tay trước khi tiếp xúc với người bị nhiễm, trước khi thực hiện các thủ tục xâm lấn và như là chất xà phòng phẫu thuật. Chúng tôi đã sàng lọc 122 chủng Acinetobacter baumannii kháng nhiều loại thuốc (MDRAB) được phân lập từ các bệnh nhân nhập viện tại một bệnh viện chăm sóc thứ cấp ở Malaysia để tìm sự hiện diện của các gene kháng antiseptic qacA và qacE (Hợp chất Ammonium Bậc 4) và sự nhạy cảm đối với chlorhexidine (CLX), benzalkonium (BZK) và benzethonium (BZT). Chín mươi chín (73%) mẫu bệnh phẩm chứa gene qacE, trong khi không có mẫu nào dương tính với qacA. Giá trị MIC dao động từ 0.2 đến 0.6 cho CLX, 0.02 đến 0.2 cho BZK và 0.04 đến 0.2 μg/mL cho BZT. Số lượng mẫu dương tính với qacE cao nhất được thu thập từ phòng phẫu thuật (n = 24; 27%; p < 0.05), tiếp theo là khoa nội (n = 23; 25.8%) và ICU (n = 21; 23.6%). Phần lớn các mẫu bệnh phẩm từ gạc vết thương (n = 33; 37%), T/aspirate (n = 16; 18%) và mô (n = 10; 11.2%) đều chứa gene qacE. Cuộc điều tra hiện tại cho thấy tỷ lệ cao của gene qacE trong các mẫu đã nghiên cứu. Các chất khử trùng là thành phần quan trọng trong kiểm soát nhiễm trùng, cần có sự giám sát liên tục việc sử dụng các chất khử trùng trong bệnh viện
Từ khóa
#Acinetobacter baumannii #kháng thuốc #gene kháng antiseptic #hợp chất Ammonium Bậc 4 #chlorhexidine #benzalkonium #benzethoniumTài liệu tham khảo
Cockerill F. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing: Twenty-second Informational Supplement. Clinical and Laboratory Standards Institute. 2012;32:M100-S22.
Le TAT, Dibley MJ, Vo V, Archibald L, Jarvis WR, Sohn AH. Reduction in surgical site infections in neurosurgical patients associated with a bedside hand hygiene program in Vietnam. Infect Control Hosp Epidemiol. 2007;28:583–8.
Manian FA, Griesenauer S, Senkel D, Setzer JM, Doll SA, Perry AM. Isolation of Acinetobacter baumannii complex and methicillin-resistant Staphylococcus aureus from hospital rooms following terminal cleaning and disinfection: can we do better? Infect Control Hosp Epidemiol. 2011;32:667–72.
Villegas MV, Hartstein AI. Acinetobacter outbreaks, 1977–2000. Infect Control Hosp Epidemiol. 2003;24:284–95.
Safdar N, Marx J, Meyer NA, Maki DG. Effectiveness of preemptive barrier precautions in controlling nosocomial colonization and infection by methicillin-resistant Staphylococcus aureus in a burn unit. Am J Infect Control. 2006;34:476–83.
Perez F, Hujer AM, Hujer KM, Decker BK, Rather PN, Bonomo RA. Global challenge of multidrug-resistant Acinetobacter baumannii. Antimicrob Agents Chemother. 2007;51:3471–84.
Bergogne-Bérézin E, Towener KJ. Acinetobacter spp. as nosocomial pathogens: microbiological, clinical and epidemiological features. Clin Microbiol Rev. 1996;9:148–65.
Otter JA, Yezli S, French GL. The role played by contaminated surfaces in the transmission of nosocomial pathogens. Infect Control Hosp Epidemiol. 2011;32:687–99.
Mak JK, Kim MJ, Pham J, Tapsall J, White PA. Antibiotic resistance determinants in nosocomial strains of multidrug-resistant Acinetobacter baumannii. J Antimicrob Chemother. 2009;63:47–54.
Rodriguez-Bano J, Garcia L, Ramirez E, Martinez-Martinez L, Muniain MA, Fernandez F. Long-term control of hospital-wide, endemic multidrug-resistant Acinetobacter baumannii through a comprehensive “bundle” approach. Am J Infect Control. 2009;37:715–22.
McDonnell G, Russell AD. Antiseptics and disinfectants: Activity, action, and resistance. Clin Microbiol Rev. 1999;12:147–79.
Nuntra S, Carroll KC, Tsigereda T, Tracy R, Maragakis LL, Sara C, et al. "High Prevalence of Reduced Chlorhexidine Susceptibility in Organisms Causing Central Line-Associated Bloodstream Infections". Infect Control Hosp Epidemiol. 2014;35:1183–6.
Meike B, Johann B, Petra P, Karin S, Gabriele M, Christina H. First Detection of the Antiseptic Resistance Gene qacA/B in Enterococcus faecalis. Microb Drug Resist. 2012;18:7.
McGann P, Kwak YI, Summers A, Cummings JF, Waterman PE, Lesho EP. Detection of qacA/B in clinical isolates of methicillin-resistant Staphylococcus aureus from a regional healthcare network in the eastern United States. Infect Control Hosp Epidemiol. 2011;32:1116–9.
Jeanes A, Rao G, Osman M, Merrick P. Eradication of persistent environmental MRSA. J Hosp Infect. 2005;61:85–6.
Heir E, Sundheim G, Holck AL. The qacG gene on plasmid pST94 confers resistance to quaternary ammonium compounds in staphylococci isolated from the food industry. J Appl Microbiol. 1998;86:378–88.
Ploy MC, Courvalin P, Lambert T. Characterization of In40 of Enterobacter aerogenes BM2688, a class 1 integron with two new gene cassettes, cmlA2 and qacF. Antimicrob Agents Chemother. 1998;42:2557–63.
Heir E, Sundheim G, Holck AL. Identification and characterization of quaternary ammonium compound resistant staphylococci from the food industry. Int J Food Microbiol. 1999;48:211–9.
Waage S, Even H, Jostein B, Terje S, Marianne S. Novel Plasmid-Borne Gene qacJ Mediates Resistance to Quaternary Ammonium Compounds in Equine Staphylococcus aureus, Staphylococcus simulans, and Staphylococcus intermedius. Antimicrob Agents Chemother. 2003;47:30486–3052.
Heir E, Sundheim G, Holck AL. The Staphylococcus qacH gene product: a new member of the SMR family encoding multidrug resistance. FEMS Microbiol Lett. 1998;163:49–56.
Braga TM, Marujo PE, Constanc P, Fa’tima Silva Lopes M. Involvement, and dissemination, of the enterococcal small multidrug resistance transporter QacZ in resistance to quaternary ammonium compounds. J Antimicrob Chemother. 2010;34:1–4.
Bjorland J, Steinum T, Sunde M, Waage S, Heir E. Novel plasmid-borne gene qacJ mediates resistance to quaternary ammonium compounds in equine Staphylococcus aureus, Staphylococcus simulans, and Staphylococcus intermedius. Antimicrob Agents Chemother. 2003;47:3046–52.
Zmantar T, Kouidhi B, Hajer H, Amina B. Detection of disinfectant and antibiotic resistance genes in Staphylococcus aureus isolated from the oral cavity of Tunisian children. Ann Microbiol. 2012;62:123–8.
Braga TM, Marujo PE, Pomba C, Lopes MFS. Involvement, and dissemination, of the enterococcal small multidrug resistance transporter QacZ in resistance to quaternary ammonium compounds. J Antimicrob Chemother. 2011;66:283–6.
Jean L, Christine S, Krystal S, Allison MG, Andrew S, Yves L, et al. Distribution of Antiseptic Resistance Genes qacA, qacB, and smr in Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Isolated in Toronto, Canada, from 2005 to 2009. Antimicrob Agents Chemother. 2011;55:2999–3001.
Noguchi N, Nakaminami H, Nishijima S, Kurokawa I, So H, Sasatsu M. Antimicrobial agent of susceptibilities and antiseptic resistance gene distribution among methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolates from patients with impetigo and staphylococcal scalded skin syndrome. J Clin Microbiol. 2006;44:2119–25.
Kawamura-Sato K, Wachino J, Kondo T, Ito H, Arakawa Y. Correlation between reduced susceptibility to disinfectants and multidrug resistance among clinical isolates of Acinetobacter species. J Antimicrob Chemother. 2010;65:1975–83.
Gillespie MT, Lyon BR, Messerolti LJ, Skurray RA. Chromosome- and plasmid-mediated gentamicin resistance in Staphylococcus aureus encoded by Tn4007. J Med Microbiol. 1987;24:139–44.
Cem Ç, Mustafa G, Fatma D, Mustafa Z, Nazif E, Esra G. Increasing antimicrobial resistance in nosocomial pathogens; multidrug-resistant extensively drug-resistant and pandrug-resistant Acinetobacter baumannii. J Microbiol Infect Dis. 2014;4(1):7–12. doi:10.5799/ahinjs.02.2014.01.0116.
Ghafur A, Vidya L, Priyadarshini K, Thirunarayan MA. Emergence of Pan drug resistance amongst gram negative bacteria! The First case series from India. J Microbiol Infect Dis. 2014;03:86–91. doi:10.5799/ahinjs.02.2014.03.0145.
Jeric PE, Azpiroz A, Lopardo H, Centrón D. Survey of molecular determinants in Gram-positive cocci isolated from hospital settings in Argentina. J Infect Dev Ctries. 2007;1:275–83.
Milstone AM, Perl TM, Passaretti CL. Chlorhexidine: expanding the armamentarium for infection control and prevention. Clin Infect Dis. 2008;46:274–81.
Ho CM, Li CY, Ho MW, Lin CY, Liu SH, Lu JJ. High rate of qacA- and qacB-positive methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolates from chlorhexidine-impregnated catheter-related bloodstream infections. Antimicrob Agents Chemother. 2012;56:5693–7.
Thomas L, Russell D, Maillard JY. Antimicrobial activity of chlorhexidine diacetate and benzalkonium chloride against Pseudomonas aeruginosa and its response to biocide residues. J Appl Microbiol. 2005;98:533–43.