Đánh giá quy trình chiết xuất xanh, thành phần lipid và hoạt động chống oxy hóa của dầu hạt lựu

Journal of Food Measurement and Characterization - Tập 15 - Trang 2098-2107 - 2021
E. Rojo-Gutiérrez1, O. Carrasco-Molinar1, J. M. Tirado-Gallegos2, A. Levario-Gómez3, M. L. Chávez-González4, R. Baeza-Jiménez1, J. J. Buenrostro-Figueroa1
1Research Center in Food and Development A.C., Cd. Delicias, Mexico
2School of Animal Sciences and Ecology, Autonomous University of Chihuahua, Chihuahua, Mexico
3School of Chemistry, Autonomous University of Chihuahua, Chihuahua, Mexico
4Bioprocess and Bioproducts Research Group, Food Research Department, School of Chemistry, Autonomous University of Coahuila, Saltillo, Mexico

Tóm tắt

Lựu là một loại trái cây mọng nước đã thu hút nhiều sự chú ý nhờ không chỉ hương vị hấp dẫn mà còn mang lại nhiều lợi ích sức khỏe quan trọng khi được tiêu thụ. Các sản phẩm từ lựu như hạt cũng là nguồn dinh dưỡng tuyệt vời của các hợp chất sinh học và lipid chức năng. Nghiên cứu hiện tại nhằm đánh giá ảnh hưởng của phương pháp chiết xuất hỗ trợ vi sóng và phương pháp chiết xuất hỗ trợ siêu âm, dưới các tham số chiết xuất khác nhau (nhiệt độ, thời gian chiết xuất, tỷ lệ dung môi so với mẫu) để thu hồi lượng dầu hạt lựu cao nhất. Không có sự khác biệt đáng kể giữa sản lượng dầu thu được từ chiết xuất hỗ trợ vi sóng và chiết xuất hỗ trợ siêu âm (18,38% và 17,64% tương ứng). Đối với cả hai phương pháp, nhiệt độ và tỷ lệ dung môi so với mẫu đã tạo ra ảnh hưởng chính đến sản lượng chiết xuất dầu hạt lựu, trong khi thời gian chiết xuất chỉ ảnh hưởng đến phương pháp chiết xuất hỗ trợ vi sóng. Dựa trên kết quả thu được và xem xét các vấn đề kinh tế, phương pháp tốt nhất là sử dụng chiết xuất hỗ trợ siêu âm ở 45 °C, trong 10 phút và tỷ lệ dung môi so với mẫu là 1:5 (g/mL), với sản lượng dầu đạt 17,64%. Sáu axit béo đã được xác định bằng GC/MS, trong đó axit punicic (> 75%) là thành phần chính trong dầu hạt lựu. Dầu được chiết xuất cho thấy giá trị chống oxy hóa đạt 9,81 và 3,93 mg TE/g hạt, với hoạt động quét gốc tự do đạt 91,29% và 98,28% đối với các gốc DPPH và ABTS tương ứng. Dầu cũng cho thấy 95,99% khả năng ức chế oxy hóa lipid. Hạt lựu là một nguồn tiềm năng của các hợp chất thúc đẩy sức khỏe, chẳng hạn như axit punicic, và các chất chống oxy hóa tự nhiên với hoạt động quét gốc tự do cao.

Từ khóa

#lựu #dầu hạt lựu #chiết xuất xanh #hoạt động chống oxy hóa #axit punicic #lipid chức năng

Tài liệu tham khảo

J.A. Ascacio-Valdés, J.J. Buenrostro-Figueroa, A. Aguilera-Carbo, A. Prado-Barragán, R. Rodríguez-Herrera, C.N. Aguilar, J. Med. Plants Res. 5(19), 4696–4703 (2011) S. Smaoui, H.B. Hlima, A.C. Mtibaa, M. Fourati, I. Sellem, K. Elhadef, K. Ennouri, L. Mellouli, Meat Sci. 158, 107914 (2019) M. Erkan, A.A. Kader, 14-Pomegranate (Punica granatum L.), in Postharvest Biology and Technology of Tropical and Subtropical Fruits. ed. by E.M. Yahia (Woodhead Publishing, Cambridge, 2011), pp. 287–313 A. Ali, Y. Chen, H. Liu, L. Yu, Z. Baloch, S. Khalid, J. Zhu, L. Chen, Int. J. Biol. Macromol. 129, 1120–1126 (2019) E.P. Lansky, R.A. Newman, J. Ethnopharmacol. 109(2), 177–206 (2007) Z. Amri, F. Zaouay, H. Lazreg-Aref, H. Soltana, A. Mneri, M. Mars, M. Hammami, Int. J. Biol. Macromol. 104, 274–280 (2017) N. Kumar, S. Neerajand, Kumar, J. Pharm. Innov. 7(10), 71–81 (2018) S. Đurđević, K. Šavikin, J. Živković, V. Böhm, T. Stanojković, A. Damjanović, S. Petrović, J. Supercrit. Fluids 133, 225–232 (2018) M. Karimi, R. Sadeghi, J. Kokini, Trends Food Sci. Technol. 69, 59–73 (2017) M. Kaufman, Z. Wiesman, J. Agric. Food Chem. 55(25), 10405–10413 (2007) H.H. Orak, H. Yagar, S.S. Isbilir, Food Sci. Biotechnol. 21(2), 373–387 (2012) S. Özgül-Yücel, J. Am. Oil Chem. Soc. 82(12), 893–897 (2005) R. Holic, Y. Xu, K.M.P. Caldo, S.D. Singer, C.J. Field, R.J. Weselake, G. Chen, Appl. Microbiol. Biotechnol. 102(8), 3537–3549 (2018) H.K. Çavdar, D.K. Yanık, U. Gök, F. Göğüş, Food Technol. Biotechnol. 55(1), 86–94 (2017) A. Khoddami, T.H. Roberts, Lipid Technol. 27(2), 40–42 (2015) A.-C. Schneider, P. Beguin, S. Bourez, J.W. Perfield II., E. Mignolet, C. Debier, Y.-J. Schneider, Y. Larondelle, PLoS ONE 7(3), e32824 (2012) N.Z. Shaban, M.A.L. El-Kersh, F.H. El-Rashidy, N.H. Habashy, Food Chem. 141(3), 1587–1596 (2013) V. Verardo, P. Garcia-Salas, E. Baldi, A. Segura-Carretero, A. Fernandez-Gutierrez, M.F. Caboni, Food Res. Int. 65, 445–452 (2014) I. Pereira de Melo, E. Carvalho, J. Filho, J. Hum. Nutr. Food Sci. 2, 1024 (2014) H. Abbasi, K. Rezaei, L. Rashidi, J. Am. Oil Chem. Soc. 85(1), 83–89 (2008) G. Liu, X. Xu, Y. Gong, L. He, Y. Gao, Food Bioprod. Process. 90(3), 573–578 (2012) M.H. Eikani, F. Golmohammad, S.S. Homami, Food Bioprod. Process. 90(1), 32–36 (2012) Y. Tian, Z. Xu, B. Zheng, Y. Martin Lo, Ultrason. Sonochem. 20(1), 202–208 (2013) D.B. Muñiz-Márquez, G.C. Martínez-Ávila, J.E. Wong-Paz, R. Belmares-Cerda, R. Rodríguez-Herrera, C.N. Aguilar, Ultrason. Sonochem. 20(5), 1149–1154 (2013) E. Yabalak, B. Külekçi, A.M. Gizir, J. Environ. Sci. Heal. B 54(14), 1412–1422 (2019) C. Castro-López, J.M. Ventura-Sobrevilla, M.D. González-Hernández, R. Rojas, J.A. Ascacio-Valdés, C.N. Aguilar, G.C.G. Martínez-Ávila, Food Chem. 237, 1139–1148 (2017) Normas Mexicanas, NMX-F-607-NORMEX, México (2013). https://produccionindustrialdealimentos2.jimdofree.com/1-1-2-nmx-f-607-normex-2013/ (accessed 21 July 2019) Normas Mexicanas, NMX-F-089-S, México (1978). https://www.colpos.mx/bancodenormas/nmexicanas/NMX-F-089-S-1978.PDF (accessed 18 July 2019) Normas Mexicanas, NMX-F-090-S, México (1978). https://www.colpos.mx/bancodenormas/nmexicanas/NMX-F-090-S-1978.PDF (accessed 24 July 2019) Normas Mexicanas, NMX-F-068-S, México (1980). https://sci-hub.tw/https://link.springer.com/article/10.1007/s11694-020-00452-x (accessed 20 July 2019) N.P. Meléndez, V. Nevárez-Moorillón, R. Rodríguez-Herrera, J.C. Espinoza, C.N. Aguilar, Afr. J. Biochem. Res. 8(1), 14–18 (2014) R. Re, N. Pellegrini, A. Proteggente, A. Pannala, M. Yang, C. Rice-Evans, Free Radic. Biol. Med. 26(9), 1231–1237 (1999) G.C. Martínez-Ávila, A.F. Aguilera-Carbó, R. Rodríguez-Herrera, C.N. Aguilar, Ann. Microbiol. 62(3), 923–930 (2012) G. López-García, L. López-Martínez, O. Dublán-García, R. Baeza-Jiménez, Rev. Mex. Ing. Quím. 16(3), 835–844 (2017) A. Robledo, A. Aguilera-Carbó, R. Rodriguez, J.L. Martinez, Y. Garza, C.N. Aguilar, J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 35(6), 507–513 (2008) S. Dadashi, M. Mousazadeh, Z. Emam-Djomeh, S.M. Mousavi, Int. J. Adv. Biol. Biomed. Res. 4(4), 334–342 (2016) M. Kýralan, M. Gölükcü, H. Tokgöz, J. Am. Oil Chem. Soc. 86(10), 985–990 (2009) C.P. Van Nieuwenhove, A. Moyano, P. Castro-Gómez, J. Fontecha, G. Sáez, G. Zárate, P.L. Pizarro, LWT - Food Sci. Technol. 111, 401–407 (2019) Z. Saeidi, B. Nasehi, H. Jooyandeh, J Food Sci Technol. 55(8), 3110–3118 (2018) H. Bourekoua, R. Różyło, U. Gawlik-Dziki, L. Benatallah, M.N. Zidoune, D. Dziki, Int. J. Food Sci. Tech. 53(8), 1906–1913 (2018) P. Aruna, B. Manohar, R.P. Singh, J. Food Process. Preserv. 42(5), e13609 (2018) U.A. Fischer, A.V. Jaksch, R. Carle, D.R. Kammerer, Eur. Food Res. Technol. 237(2), 209–221 (2013) J.M. Tirado-Gallegos, R. Baeza-Jiménez, J.A. Ascacio-Valdés, J.C. Bustillos-Rodriguez, J. Buenrostro-Figueroa, Pomegranate seeds as a potential source of punicic acid: extraction and nutraceutical benefits, in Practical Applications of Physical Chemistry in Food Science and Technology. ed. by C.N. Aguilar, J. Sandoval-Cortés, J.A. Ascacio-Valdés, A.K. Haghi (Apple Academic Press, Boca Raton, 2021), pp. 129–153 J. Zhong, Y. Wang, R. Yang, X. Liu, Q. Yang, X. Qin, Ind Crops Prod. 120, 1–10 (2018) Y. Wang, J. You, Y. Yu, C. Qu, H. Zhang, L. Ding, H. Zhang, X. Li, Food Chem. 110(1), 161–167 (2008) D.B. Nde, D. Boldor, C. Astete, Ind. Crops Prod. 65, 233–240 (2015) R.P. Singh, K.N. Chidambara Murthy, G.K. Jayaprakasha, J. Agric. Food Chem. 50(1), 81–86 (2002) M.L. Chávez-González, L.I. López-López, R. Rodríguez-Herrera, J.C. Contreras-Esquivel, C.N. Aguilar, Chem. Pap. 70(4), 412–417 (2016) A.M. Goula, J. Food Eng. 117(4), 492–498 (2013) Q.-A. Zhang, Z.-Q. Zhang, X.-F. Yue, X.-H. Fan, T. Li, S.-F. Chen, Food Chem. 116(2), 513–518 (2009) Z. Hromádková, J. Kováčiková, A. Ebringerová, Ind. Crops Prod. 9(2), 101–109 (1999) Z. Lou, H. Wang, M. Zhang, Z. Wang, J. Food Eng. 98(1), 13–18 (2010) L. He, H. Xu, X. Liu, W. He, F. Yuan, Z. Hou, Y. Gao, Food Res. Int. 44(5), 1161–1167 (2011) M. Durante, A. Montefusco, P.P. Marrese, M. Soccio, D. Pastore, G. Piro, G. Mita, M.S. Lenucci, J. Food Compos. Anal. 63, 65–72 (2017) M. Bihamta, A. Hosseini, A. Ghorbani, M.T. Boroushaki, Avicenna J. Phytomed. 7(1), 46–53 (2017) P. Aruna, D. Venkataramanamma, A.K. Singh, R.P. Singh, Compr. Rev. Food. Sci. Food Saf. 15(1), 16–27 (2016) L. Hooper, L. Al-Khudairy, A.S. Abdelhamid, K. Rees, J.S. Brainard, T.J. Brown, S.M. Ajabnoor, A.T. O’Brien, L.E. Winstanley, D.H. Donaldson, F. Song, K.H. Deane, Cochrane Database Syst. Rev. 7(7), CD011094–CD011094 (2018) F. Shahidi, P. Ambigaipalan, Annu. Rev. Food Sci. Technol. 9(1), 345–381 (2018) J. Miranda, L. Aguirre, A. Fernández-Quintela, M.T. Macarulla, M.G. Martínez-Castaño, J. Ayo, E. Bilbao, M.P. Portillo, J. Agric. Food Chem. 61(21), 5089–5096 (2013)