Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tác động của việc bón phân urê đến hàm lượng protein hòa tan và axit amin tự do trong cuống lá bông liên quan đến quần thể ruồi trắng lá bạc (Bemisia argentifolii)
Tóm tắt
Tác động của việc bón phân nitơ urê đối với động thái quần thể ruồi trắng lá bạc, Bemisia argentifolii Bellows & Perring, đã được nghiên cứu trên cây bông được trồng trên đồng ruộng (Gossypium hirsutum L.). Năm mức bón phân nitơ urê đã được thử nghiệm, bao gồm các ứng dụng vào đất với 0, 112, 168 và 224 kg nitơ trên mỗi hectare, và một ứng dụng kết hợp vào đất và lên lá với 112:17 kg nitơ trên mỗi hectare. Một phản ứng tích cực đã được ghi nhận giữa các tỷ lệ bón N và các mức nitrat N đo được trong cuống lá bông trưởng thành. Tương tự, một phản ứng tích cực cũng được ghi nhận giữa các tỷ lệ bón N và số lượng ruồi trắng trưởng thành và chưa trưởng thành xuất hiện trong các đỉnh điểm quần thể. Để xác định xem liệu những phản ứng tích cực này có liên quan đến nhau hay không, chúng tôi đã đo các mức hợp chất N dinh dưỡng (protein và axit amin tự do) có sẵn cho dinh dưỡng côn trùng trong cuống lá bông ở các tỷ lệ bón N khác nhau. Ngày lấy mẫu và các biện pháp bón N ảnh hưởng đến các mức protein hòa tan trong cuống lá bông, và sự tương tác giữa ngày lấy mẫu và các biện pháp này là có ý nghĩa. Qua tất cả các ngày lấy mẫu, mối quan hệ giữa các tỷ lệ bón N và các mức protein hòa tan là tuyến tính. Ngày lấy mẫu cũng đã ảnh hưởng đến các mức axit amin tự do tổng cộng và riêng lẻ. Các biện pháp phân bón chỉ ảnh hưởng đến các mức axit amin tổng cộng, aspartate, asparagine và arginine cộng với threonine. Các mức aspartate hoặc asparagine và các tỷ lệ bón N có mối tương quan tuyến tính. Không có mối tương quan có ý nghĩa nào được quan sát giữa các mức hợp chất N dinh dưỡng trong cuống lá bông và số lượng ruồi trắng, dù là trưởng thành hay chưa trưởng thành, trên cây bông.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Auclair, J. L., Maltaise, J. B., and Carter, J. J. 1957. Factors in resistance of peas to the pea aphid, Acyrthosiphon pisum (Harr.) (Homoptera: Aphididae). II. Amino acid. Can. Entomol. 89:457–464.
Bellows, T. S. and Arakawa, K. 1988. Dynamics of perimaginal populations of Bemisia tabaci (Homoptera: Aleyrodidae) and Eretmocerus sp. (Hymenoptera: Aphelinidae) in southern California cotton. Environ. Entomol. 17:225–228.
Bi, J. L., Ballmer, G. R., Hendrix, D. L., Henneberry, T. J., and Toscano, N. C. 2000. Effect of cotton nitrogen fertilization on Bemisia argentifolii densities and honeydew production. Entomol. Exp. Appl. 99:25–36.
Blackmer, J. L. and Byrne, D. N. 1999. Changes in amino acids in Cucumis melo in relation to life-history traits and flight propensity of Bemisia tabaci. Entomol. Exp. Appl. 93:29–40.
Blua, M. J., Perring, T. M., and Madore, M. A. 1994. Plant virus-induced changes in aphid population development and temporal fluctuations in plant nutrients. J. Chem. Ecol. 20:691–707.
Bradford, M. M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding. Anal. Chem. 72:248–254.
Busch, J. W. and Phelan, P. L. 1999. Mixture models of soybean growth and herbivore performance in response to nitrogen-sulfur-phosphorus nutrient interactions. Ecol. Entomol. 24:132–145.
Butler, G. D., Jr., Wilson, F. D., and Fisher, G. 1991. Cotton leaf trichome and populations of Empoasca lybica and Bemisia tabaci. Crop Prot. 10:461–464.
Carlson, R. M. 1978. Automated separation and conductimetric determination of ammonia and dissolved carbon dioxide. Anal. Chem. 50:1528–1531.
Costa, H., Westcot, D. M., Ullman, D. E., Rosell, R., Brown, J. K., and Johnson, M. W. 1995. Morphological variation in Bemisia endosymbionts. Protoplasma 189:194–202.
Dixon, A. F. G. 1970. Quality and availability of food for a sycamore aphid population, pp. 271–287, in A. Watson (ed). Annual Populations in Relation to Their Resources. Blackwell Scientific, Oxford.
Gerling, D., Motro U., and Horowitz, R. 1980. Dynamics of Bemisia tabaci (Gennadius) (Homoptera, Aleyrodidae) attacking cotton in the coastal plain of Israel. Bull. Entomol. Res. 70:213–219.
Godfrey, L. D., Keillor, K., Hutmacher, R. B., and Cisneros, J. 1999. Interaction of cotton aphid population dynamics and cotton fertilization regime in California cotton, pp. 1008–1011, in P. Dugger and D. Richer (Eds.). Proceedings of Beltwide Cotton Research Conference. National Cotton Council of America, Memphis, Tennessee.
Henneberry, T. J., Hendrix, D. L., Perkins, H. H., Naranho, S. E., Flint, H. M., Akay, D., Jech, L. F., and Burke, R. A. 1995. Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) populations and relationships to sticky cotton and cotton yields. South. Entomol. 20:255–271.
Henneberry, T. J., Hendrix, D. L., Perkins, H. H., Jech, L. F. and Burke, R. A. 1996. Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) honeydew sugars and relationships to sticky cotton. Environ. Entomol. 25:551–558.
Jansson, R. K. and Smilowitz, Z. 1986. Influence of nitrogen on population parameters of potato insects: abundance, population growth, and within-plant distribution of the green peach aphid, Myzus persicae (Homoptera: Aphididae). Environ. Entomol. 15:49–55.
Jauset, A. M., Sarasua, M. J., Avilla, J., and Albajes, R. 1998. The impact of nitrogen fertilization of tomato on feeding site selection and oviposition by Trialeurodes vaporariorum. Entomol. Exp. Appl. 86:175–182.
Jauset, A. M., Sarasua, M. J., Avilla, J., and Albajes, R. 2000. Effect of nitrogen fertilization level applied to tomato on the greenhouse whitefly. Crop Prot. 19:255–261.
Johnson, C. M, and Ulrich, A. 1959. Analytical methods for use in plant analysis. Bulletin 776. Agricultural Experimental Station, Berkeley, University of California, pp. 26–78.
Kainulainen, P., Holopainen, J., Palomaki, V., and Holopainen, T. 1996. Effects of nitrogen fertilization on secondary chemistry and ectomycorrhizal state of Scots pine seedlings and on growth of grey pine aphid. J. Chem. Ecol. 22:617–636.
Keisling, T. C., MascagniJr., N. J., Maples, R. L., and Thompson, K. C. 1995. Using cotton petiole nitrogen concentration for prediction of cotton nitrogen nutritional status on a clayey soil. J. Plant Nutri. 18:35–45.
Little, T. M., and Hill, F. J. 1978. Agricultural Experimentation — Design and Analysis. Wiley & Sons, New York. 350pp.
Madore, M. A., and Webb, J. A. 1981. Leaf free space analysis and vein loading in cucurbita-pepo. Can. J. Bot. 59:2550–2557.
Mattson, W. J., 1980. Herbivory in relation to plant nitrogen content. Annu. Rev. Ecol. Syst. 11:119–161.
Mitchell, D. E., Gadus, M. V., and Madore, M. A. 1992. Patterns of assimilate production and translocation in muskmelon (Cucumis melo L.) Plant Physiol. 99:959–965.
Naranjo, S. E. 1996. Sampling Bemisia for research and pest management applications, pp. 209–224, in D. Gerling and R. T. Mayer (Eds.). Bemisia: 1995, Taxonomy, Biology, Damage, Control and Management. Intercept Limited, UK.
Osborne, K. H. and Allen, W. W. 1999. Allen-Vac: an internal collection bag retainer allows for snag-free arthropod sampling in woody scrub. J. Environ. Entomol. 28:594–596.
Perkins, H. H., Jr. 1986. Whitefly honeydew in US cottons: update on methods for detecting and processing contaminated cottons, pp. 106–107, in P. Dugger and D. Richer (Eds.). Proceedings of Beltwide Cotton Research Conference, National Cotton Council of America, Memphis, Tennessee.
Salvucci, M. E., Rosell, R. C., and Brown, J. K. 1998. Uptake and metabolism of leaf proteins by the silverleaf whitefly. Arch. Insect Biochem. Physiol. 39:155–165.
Sandstrom, J. and Pettersson, J. 1994. Amino acid composition of phloem sap and the relation to intraspecific variation in pea aphid (Acyrthosiphon pisum) performance. J. Insect Physiol. 40:947–955.
SAS Institute Inc. 1989. SAS/STAT User's Guide, Version 6. SAS Institute, Cary, North Carolina.
Sasaki, T. and Ishikawa, H. 1995. Production of essential amino acids from glutamate by Mycetocyte symbionts of the pea aphid, Acyrthiosiphon pisum. J. Insect Physiol. 41:41–46.
Simpson, S. J., Abisgold, J. D., and Douglas, A. E. 1995. Response of the pea aphid (Acrythosiphon pisum) to variation in dietary levels of sugar and amino acids: the significance of amino acid quality. J. Insect Physiol. 41:71–75.
Thomas, J. C., Admas, D. G., Keppenne, V. D., Wastmann, C. C., Brown, J. K., Kanost, M. R., and Bohnert, H. J. 1995. Protease inhibitors of Manduca sexta expressed in transgenic cotton. Plant Cell Rep. 14:758–762.
Weibull, J. 1987. Season changes in the free amino acids of oat and barley phloem sap in relation to plant growth stage and growth of Rhopalosiphum padi. Ann. Appl. Biol. 111:729–737.
Weir, B. L., Kerby, T. A., Hake, K. D. Roberts, B. A., and Zelinski, L. J. 1996. Cotton fertility, pp. 210–227, in S. J. Hake, T. A. Kerby and K. D. Hake (Eds.). Cotton Production Manual, Division of Agriculture and Natural Resources, University of California.
Yang, C. Y. and Sepulveda, F. L. 1985. Separation of phenylthiocarbamyl amino acids by high-performance liguid chromatography on Spherisorb octadecylsilane columns. J. Chromatogra. 346:413–416.
Yee, W. L, Toscano, N. C., Chu, C. C., Henneberry, T. J., and Nichols, R. L. 1996. Bemisia argentifolii (Homoptera: Aleyrodidae) action thresholds and cotton photosynthesis. Environ. Entomol. 25:1267–1273.
Ziegler, D. 1975. The nature of transported substances, pp. 59–136, in M. H. Zimmermann and J. A. Milburn (Eds.). Transport in Plants. Encyclopedia of Plant Psychology. Springer-Verlag, Berlin.