Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tác động của việc bổ sung men bia thuỷ phân lên hệ vi sinh vật phân, huyết học, sinh hóa huyết thanh và miễn dịch tế bào ở chó khỏe mạnh
Tóm tắt
Các vi sinh vật nấm thường được tìm thấy trong đường tiêu hóa của những chú chó khỏe mạnh và bệnh tật, đặc biệt là thuộc ngành Ascomycota và Basidiomycota; tuy nhiên, cần hiểu rõ hơn về vai trò của chúng đối với sức khỏe của vật chủ. Một trong những loài nấm men được nghiên cứu nhiều nhất ở con người và động vật là Saccharomyces cerevisiae, đặc biệt là ở dạng tế bào sống. Kiến thức hạn chế về tác động của sản phẩm thủy phân của nó trong chó đã buộc chúng tôi phải thử nghiệm chế độ ăn bổ sung với S. cerevisiae được thủy phân (liều 0,3% tổng chế độ ăn) trong 14 ngày cho những chú chó trưởng thành khỏe mạnh. Hai mươi chú chó German Shepherd được chia ngẫu nhiên thành 2 nhóm: nhóm đối chứng và nhóm thực nghiệm, mỗi nhóm có mười chú chó. Thí nghiệm kéo dài 42 ngày (thu thập mẫu máu và phân vào các ngày 0, 14, 28 và 42). Kết quả của thí nghiệm đơn giản này cho thấy sự tăng trưởng đáng kể về sự phong phú của bifidobacteria (ngày 14), vi khuẩn axit lactic (ngày 42) và clostridia (ngày 42). pH phân đã tăng lên đáng kể vào ngày 28. Trong huyết thanh máu, nồng độ triglyceride và cholesterol giảm (ngày 42) trong khi hoạt tính của alanine aminotransferase (vào ngày 14) và aspartate aminotransferase tăng đáng kể (vào các ngày 28 và 42). Hoạt tính của các enzyme này nằm trên ngưỡng tham chiếu cao nhất ở 7 chú chó (ALT) và 4 chú chó (AST). Các tham số huyết học và hoạt động của tế bào thực bào cũng như tỷ lệ phần trăm các loại lymphocyte CD4+, CD8+, CD4+CD8+ và CD21+ không bị thay đổi trong suốt thời gian thí nghiệm. Điểm quan trọng trong những kết quả này là sự bắt đầu của chúng chủ yếu ở giai đoạn sau bổ sung. Sự quan sát một số tác động không mong đợi nhấn mạnh sự cần thiết phải đánh giá lại việc sử dụng sản phẩm nấm men cho chó, nhưng cần có thêm các nghiên cứu với các liều khác nhau là cần thiết.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Kim YG, Udayanga KGS, Totsuka N, Weinberg JB, Núñez G, Shibuya A (2014) Gut dysbiosis promotes M2 macrophage polarization and allergic airway inflammation via fungi-induced PGE2. Cell Host Microbe 15:95–102. https://doi.org/10.1016/j.chom.2013.12.010
Kumamoto CA (2011) Inflammation and gastrointestinal Candida colonization. Curr Opin Microbiol 14:386–391. https://doi.org/10.1016/j.mib.2011.07.015
Foster ML, Dowd SE, Stephenson C, Steiner JM, Suchodolski JS (2013) Characterization of the fungal microbiome (mycobiome) in fecal samples from dogs. Vet Med Int 658373. https://doi.org/10.1155/2013/658373
Aktas MS, Borku MK, Ozkanlar Y (2007) Efficacy of Saccharomyces boulardii as a probiotic in dogs with lincomycin induced diarrhoea. Bull Vet Inst Pulawy 51:365-369. http://www.piwet.pulawy.pl/jvetres/images/stories/pdf/20073/20073365370.pdf
D´Angelo S, Fracassi F, Bresciani F, Galuppi R, Diana A, Linta N, Bettini G, Morini M, Pietra M, (2018) Effect of Saccharomyces boulardii in dog with chronic enteropathies: double-blinded, placebo-controlled study. Vet Rec 182:258. https://doi.org/10.1136/vr.104241
West C, Stanisz AM, Wong A, Kunze WA (2016) Effects of Saccharomyces cerevisiae or boulardii yeasts on acute stress induced intestinal dysmotility. World J Gastroenterol 22:10532–10544. https://doi.org/10.3748/wjg.v22.i48.10532
Czerucka D, Piche T, Rampal P (2007) Review article: yeast as probiotics—Saccharomyces boulardii. Aliment Pharmacol Ther 26:767–778. https://doi.org/10.1111/j.1365-2036.2007.03442.x
Sen S, Mansell TJ (2020) Yeasts as probiotics: mechanisms, outcomes, and future potential. Fungal Genet Biol 137:103333. https://doi.org/10.1016/j.fgb.2020.103333
Elghandour MMY, Tan ZL, Abu Hafsa SH, Adegbeye MJ, Hreiner R, Ugbogu EA, Cedillo Monroy J, Salem AZM (2019) Saccharomyces cerevisiae as a probiotic feed additive to non and pseudo-ruminant feeding: a review. J Appl Microbiol 128:658–674. https://doi.org/10.1111/jam.14416
Yalcin S, Yalcin S, Cakin K, Eltan Ö (2010) Effects of dietary yeast autolysate (Saccharomyces cerevisiae) on performance, egg traits, egg cholesterol content, egg yolk fatty acid composition and humoral immune response of laying hens. J Sci Food Agric 90:1695–1701. https://doi.org/10.1002/jsfa.4004
Chollom PF, Agbo EB, Doma UD, Okojokwu OJ, Yisa AG (2017) Nutritional value of spent brewers’ yeast (Saccharomyces cerevisiae): a potential replacement for soya bean in poultry feed formulation. Researcher 9:70–74. https://doi.org/10.7537/marsrsj090117.11
Aguilar-Uscanga B, Francois JM (2003) A study of the yeast cell wall composition and structure in response to growth conditions and mode of cultivation. Lett Appl Microbiol 37:268–274. https://doi.org/10.1046/j.1472-765x.2003.01394.x
Bortoluzzi C, Barbosa JGM, Pereira R, Fagundesm NS, Rafael JM, Menten JFM (2018) Autolyzed yeast (Saccharomyces cerevisiae) supplementation improves performance while modulating the intestinal immune-system and microbiology of broiler chickens. Front Sustain Food Syst 2:85. https://doi.org/10.3389/fsufs.2018.00085
Zhang JY, Park JW, Kim IH (2019) Effect of supplementation with brewer’s yeast hydrolysate on growth performance, nutrients digestibility, blood profiles and meat quality in growing to finishing pigs. Asian-Astralas J Anim Sci 32:1565–1572. https://doi.org/10.5713/ajas.18.0837
Nocek JE, Holt MG, Oppy J (2011) Effects of supplementation with yeast culture and enzymatically hydrolyzed yeast on performance of early lactation dairy cattle. J Dairy Sci 94:4046–4056. https://doi.org/10.3168/jds.2011-4277
Kettunen H, Vuorenmaa J, Gaffney D, Apajalahti J (2016) Yeast hydrolysate product enhances ruminal fermentation in vitro. J Appl Anim Nutr 4:e1. https://doi.org/10.1017/jan.2015.14
Lin CY, Alexander C, Steelman AJ, Warzecha CM, de Godoy MRC, Swanson KS (2019) Effects of a Saccharomyces cerevisiae fermentation product on fecal characteristics, nutrient digestibility, fecal fermentative end-products, fecal microbial populations, immune function, and diet palatability in adult dogs. J Anim Sci 97:1586–1599. https://doi.org/10.1093/jas/skz064
Felis GE, Dellaglio F (2007) Taxonomy of Lactobacilli and Bifidobacteria. Curr Issues Intest Microbiol 8:44–61
Yang Y, Iji PA, Kocher A, Mikkelsen LL, Choct M (2008) Effects of mannanoligosaccharide and fructooligosaccharide on the response of broilers to pathogenic Escherichia coli challenge. Br Poult Sci 49:550–559. https://doi.org/10.1080/00071660802290408
Chee SH, Iji PA, Choct M, Mikkelsen LL, Kocher A (2010) Characterisation and response of intestinal microflora and mucins to manno-oligosaccharide and antibiotic supplementation in broiler chickens. Br Poult Sci 51:368–380. https://doi.org/10.1080/00071668.2010.503477
Spring P, Wenk C, Dawson KA, Newman KE (2000) The effects of dietary mannanoligosaccharides on cecal parameters and the concentrations of enteric bacteria in the ceca of Salmonella-challenged broiler chicks. Poult Sci 79:205–211. https://doi.org/10.1093/ps/79.2.205
Snart J, Bibiloni R, Grayson T, Lay C, Zhang H, Allison GE, Laverdiere JK, Temelli F, Vasanthan T, Bell R, Tannock GW (2006) Supplementation of the diet with high-viscosity beta-glucan results in enrichment for lactobacilli in the rat cecum. Appl Environ Microbiol 72:1925–1931. https://doi.org/10.1128/AEM.72.3.1925-1931.2006
Mitsou EK, Turunen K, Anapliotis P, Zisi D, Spiliotis V, Kyriacou A (2009) Impact of a jelly containing short-chain fructo-oligosaccharides and Sideritis euboea extract on human faecal microbiota. Int J Food Microbiol 135:112–117. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2009.08.004
Thrune M, Bach A, Ruiz-Moreno M, Stern MD, Linn JG (2009) Effects of Saccharomyces cerevisiae in ruminal pH and microbila fermentation in dairy cows. Livestock Sci 124:261–265. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2009.02.007
Jung EY, Lee JW, Hong YH, Chang UJ, Suh HJ (2017) Low dose yeast hydrolysate in yreatment of obesity and weight loss. Prev Nutr Fodd Sci 22:45–49
Bolakali M, Irak K (2017) Effect of dietary yeast autolysate on performance, slaughter, and carcass characteristics, as well as blood parameters, in quail of both genders. South Afr J Anim Sci 47:460–470. https://doi.org/10.4314/sajas.v47i4.5
Majtán J, Kogan G, Kovácová E, Bíliková K, Simuth J (2005) Stimulation of TNF-alpha release by fungal cell wall polysaccharides. Z Naturforschung C J Biosci 60:921–926. https://doi.org/10.1515/znc-2005-11-1216
Yalcin S, Yalcin S, Uzunoglu K, Duyum HM, Eltan O (2012) Effects of dietary yeast autolysate (Saccharomyces cerevisiae) and black cumin seed (Nigella sativa L.) on performance, egg traits, some blood characteristics and antibody production of laying hens. Livestock Sci 145:13–20. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2011.12.013
Adeoye AA, Obasa SO, Fawole FJ, Wan AHL, Davies SJ (2020) Dietary supplementation of autolysed yeast enhances growth, liver functionality and intestinal morphology in African catfish. Aquacult Nutr 26:772–780. https://doi.org/10.1111/anu.13036
Kourelis A, Kotzamanidis C, Litopoulou-Tzanetaki E, Papaconstantinou J, Tzanetakis N, Yiangou M (2010) Immunostimulatory activity of potential probiotic yeast strains in the dorsal air pouch system and the gut mucosa. J Appl Microbiol 109:260–271. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2009.04651.x
Rodrigues AC, Cara DC, Fretez SH, Cunha FQ, Vieira EC, Nicoli JR, Vieira LQ (2000) Saccharomyces boulardii stimulates sIgA production and the phagocytic system of gnotobiotic mice. J Appl Microbiol 89:404–414. https://doi.org/10.1046/j.1365-2672.2000.01128.x
Chiu CH, Cheng CH, Gua WR, Guu YK, Cheng W (2010) Dietary administration of the probiotic, Saccharomyces cerevisiae P13, enhanced the growth, innate immune responses, and disease resistance of the grouper, Epinephelus coioides. Fish Shellfish Immunol 29:1053–1059. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2010.08.019
Czop JK, Austen KF (1985) A beta-glucan inhibitable receptor on human monocytes: its identity with the phagocytic receptor for particulate activators of the alternative complement pathway. J Immunol 134:2588–2593
Czop JK, Puglisi AV, Miorandi DZ, Austen KF (1988) Perturbation of beta-glucan receptors on human neutrophils initiates phagocytosis and leukotriene B4 production. J Immunol 141:3170–3176
Gao J, Zhang HJ, Wu SG, Yu SH, Yoon I, Moore D, Gao YP, Yan HJ, Qi GH (2009) Effect of Saccharomyces cerevisiae fermentation product on immune functions of broilers challenged with Eimeria tenella. Poult Sci 88:2141–2151. https://doi.org/10.3382/ps.2009-00151