Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Bảo quản đông lạnh các meristem sinh trưởng in vitro của dâu tây (Fragaria × ananassa Duch.) bằng phương pháp bao bọc - đông kính
Tóm tắt
Các meristem được bao bọc bằng alginate từ dâu tây (Fragaria × ananassa Duch.) được nuôi cấy in vitro đã được bảo quản đông lạnh thành công thông qua quá trình khử nước bằng dung dịch đông kính. Các meristem đã cắt từ các cây giống được cứng hóa lạnh ở 4 °C trong hai tuần trong bóng tối đã được bao bọc vào các viên gel alginate chứa hỗn hợp 2 M glycerol cộng với 0.4 M sucrose. Những meristem đã được bao bọc và bảo vệ đông lạnh này đã được khử nước bằng một dung dịch đông kính có nồng độ cao (được gọi là PVS2) trong 2 giờ ở 0 °C trước khi nhúng vào nitơ lỏng. Các meristem đã được bao bọc và đông kính thành công vẫn giữ màu xanh và phát triển mầm trong vòng một tuần sau khi đặt mà không cần hình thành callus trung gian. Tỷ lệ trung bình hình thành mầm của các meristem đông kính được bao bọc đạt gần 90%. Quy trình bảo quản đông lạnh đã được áp dụng thành công cho bốn giống dâu tây. Ngoài ra, việc xác nhận rằng các meristem bao bọc đông kính được làm lạnh đến - 196 °C sản xuất tỷ lệ hình thành mầm cao hơn so với các meristem khô được bao bọc. Hơn nữa, sự phát triển phục hồi diễn ra sớm hơn nhiều so với loại thứ hai. Phương pháp bao bọc - đông kính dễ thực hiện và tạo ra tỷ lệ hình thành mầm cao. Do đó, quy trình này hứa hẹn sẽ ứng dụng cho việc bảo quản di truyền dâu tây.
Từ khóa
#dâu tây #bảo quản đông lạnh #meristem #bao bọc - đông kính #di truyềnTài liệu tham khảo
Bachiri, Y., C. Gazeau, J. Hansz, C. Morisset & J. Dereuddre, 1995. Successful cryopreservation of suspension cells by encapsulationdehydration. Plant Cell Tiss Org Cult 43: 241- 248.
Benson, E.E., B.M. Reed, R.M. Brennam, K.A. Clacher & D.A. Ross, 1996. Use of thermal analysis in the evaluation of cryopreservation protocols for Ribes nigrumL. germplasm. CryoLetters 17: 347-362.
Dereuddre, J., J. Fabre & C. Bassaglia, 1988. Resistance to freezing in liquid nitrogen of carnation (Dianthus caryophyllusL. var. Kolo) apical and axially shoot tips excised from different aged in vitroplantlets. Plant Cell Rep 7: 170-173.
Fabre, J. & J. Dereuddre, 1990. Encapsulationdehydration: a new approach to cryopreservation of Solanumshoottips. CryoLetters 11: 413-426.
Fukai, S., M. Goi & M. Tanaka, 1991. Cryopreservation of shoot tips of Chrysanthemum morifoliumand related species native to Japan. Euphytica 54: 201-204.
González-Arnao, M.T., T. Moreira & C. Urra, 1996. Importance of pregrowth with sucrose and vitrification for the cryopreservation on sugarcane apices using encapsulationdehydration. CryoLetters 17: 141-148.
Haskins, R.H. & K.K. Kartha, 1980. Freeze preservation of pea meristems: cell survival. Can J Bot 58: 833-839.
Kartha, K.K., L. Leung & K. Pahl, 1980. Cryopreservation of strawberry meristems and mass propagation of plantlets. J Am Soc Hort Sci 105(4): 481-484.
Kuranuki, Y. & A. Sakai, 1995. Cryopreservation of in vitro-grown shoot tips of tea (Camellia sinensis) by vitrification. CryoLetters 16: 345-352.
Langis, R., B.J. Schnabel-Preikstas, E.D. Earle & P.H. Steponkus, 1990. Cryopreservation of in vitro-grownshoot tips by vitrification. Cryobiol 27: 657-658.
Matsumoto, T., A. Sakai & K. Yamada, 1994. Cryopreservation of in vitro-grownapical meristems of wasabi (Wasabia japonica) by vitrification and subsequent high plant regeneration. Plant Cell Rep 13: 442-446.
Matsumoto, T., A. Sakai, C. Takahashi & K. Yamada, 1995a. Cryopreservation of in vitro-grownapical meristems of wasabi (Wasabia japonica) by encapsulation-vitrification method. CryoLetters 16: 189-196.
Matsumoto, T., A. Sakai & K. Yamada, 1995b. Cryopreservation of in vitro-grownapical meristems of lily by vitrification. Plant Cell Tiss Org Cult 41: 237-241.
Mullin, R.H. & D.E. Schlegel, 1976. Cold storage maintenance of strawberry meristem plantlets. Hortsci 11(2): 192-194.
Murashige, T. & F. Skoog, 1962. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue culture. Physiol Plant 15: 473- 497.
Niino, T. & A. Sakai, 1992a. Cryopreservation of alginatecoated in vitro-grownshoot tips of apple, pear, and mulberry. Plant Sci 87: 199-206.
Niino, T., A. Sakai, S. Enomoto, J. Magoshi & S. Kato, 1992b. Cryopreservation of in vitro-grownshoot tips of mulberry by vitrification. Cryo-Letters 13: 303-312.
Niino, T., A. Sakai, H. Yakuwa & K. Nojiri, 1992c. Cryopreservation of in vitro-grownshoot tips of apple and pear by vitrification. Plant Cell Tiss Org Cult 28: 261-266.
Nishizawa, S., A. Sakai, Y. Amano & T. Matsuzawa, 1993. Cryopreservation of asparagus (Asparagus officinalisL.) embryogenic suspension cells and subsequent plant regeneration by vitrification method. Plant Sci 88: 67-73.
Reed, B.M., 1990. Survival of in vitro-grownapical meristems of Pyrusfollowing cryopreservation. HortSci 25: 111-113.
Reed, B.M. & K.E. Hummer, 1995. Conservation of germplasm of strawberry. In: Y.P.S. Bajaj (Ed.), Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol. 32, pp. 354-370. SpringerVerlag, Berlin.
Reinhoud, P., 1996. Cryopreservation of tobacco suspension cells by vitrification. In: Doctoral Paper, pp. 1-95. Rijks Universiteit, Leiden.
Sakai, A., 1995. Cyropreservation of germplasm of woody plants. In: Y.P.S. Bajaj (Ed.), Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol. 52, pp. 53-69. SpringerVerlag, Berlin.
Sakai, A., M. Yamakawa, D. Sakata, T. Harada & T. Yakuwa, 1978. Development of a whole plant from an excised strawberry runner apex frozen to 196 °C. Low Temp Sci Ser B36: 31-38.
Sakai, A., S. Kobayashi & I. Oiyama, 1990. Cryopreservation of nucellar cells of naval orange (Citrus sinesisOsb. var. brasiliensisTanaka) by vitrification. Plant Cell Rep 9: 30-33.
Takagi, H., N.T. Thinh, O.M. Isulam, T. Senboku & A. Sakai, 1997. Cryopreservation of in vitro-grownshoot tips of taro (Colocasia esculenta(L.) Schott) by vitrification. 1. Investigation of basic conditions of the vitrification procedure. Plant Cell Rep 16: 594- 599.
Tannoury, M., J. Ralambosoa, M. Kaminski & J. Dereuddre, 1991. Cryopreservation by vitrification of alginate-coated carnation (Dianthus caryophyllusL.) shoot tips of in vitroplantlets. C R Acad Sci Paris, t. 313, Série III: 633-638.
Thinh, N.T., 1997. Cryopreservation of germplasm of vegetatively propagated tropical monocots by vitrification. Doctoral Thesis, Dept of Agronomy, Kobe University (in press).
Touchell, D.H., 1995. Principles of cryobiology for conservation of threatened Australian plants. Doctoral Thesis, Dept of Botany, Western University, Perth.
Touchell, D.H. & K.W. Dixson, 1995. Cryopreservation for the conservation of Australian endangered plants. p. 33. Int Workshop on the In VitroConservation of Plant Genetic Resources (organized by University Kebangsaan Malaysia and IBPGRI), Kuala Lumpur.
Towill, L.E., 1984. Survival of ultra-low temperatures of shoottips from Solanum tuberosumgroups Andigena, Phureja, Stenotomum and other tuberbearing Solanumspecies. CryoLetters 5: 319-326.
Towill, L.E., 1990. Cryopreservation of isolated mint shoot tips by vitrification. Plant Cell Rep 9: 178-180.
Uragami, A., A. Sakai & M. Nagai, 1990. Cryopreservation of dried axially buds from plantlets of Asparagus officinalisL. grown in vitro. Plant Cell Rep 9: 328-331.
Widholm, J.M., 1972. The use of fluorescein diacetate and phenosafranine for determining viability of cultured plant cell. Stain Technol 47: 189-194.
Yamada, T., A. Sakai, T. Matsumura & S. Higuchi, 1991. Cryopreservation of apical meristems of white clover (Trifolium repensL.) by vitrification. Plant Sci 78: 81-87.
Yamada, T., A. Sakai, T. Matsumura & S. Higuchi, 1993. Plant regeneration of meristematic callus of white clover (Trifolium repensL.) cooled to 196-°C by vitrification. Euphytica 70: 197-203.