Mối tương quan giữa các thông số định lượng của siêu âm tăng cường tương phản và mô phỏng mạch máu trong mô hình khối u chuột: một kỹ thuật không xâm lấn mới để đánh giá?

Springer Science and Business Media LLC - Tập 21 - Trang 1-8 - 2019
Yue-tao Zhou1, Wei-wei Cai1, Yue Li1,2, Xiao Jiang3, Lei Feng1, Qiao-ying Zhu3, Yan-ling Liu1,2, Yu-xiao Chen1, Shuang-shuang Li1, Bin Du1, Florian Lang4, Peng-xi Wu3, Li-ying Qiu1
1Wuxi Medical School, Jiangnan University, Jiangsu Province, People’s Republic of China
2Laboratory of Tumor Pharmacology, School of Pharmaceutical Science, Jiangnan University, Jiangsu Province, People’s Republic of China
3Department of Ultrasound, Wuxi People’s Hospital, Jiangsu Province, People’s Republic of China
4Department of Physiology, Eberhard-Karls-University, Tübingen, Germany

Tóm tắt

Mô phỏng mạch máu (VM) là một cơ chế mới cung cấp máu cho khối u khác biệt với mạch máu nội mô (EV). VM có liên quan đến sự ác tính, xâm lấn, di căn và tiên lượng kém. Đến nay, vẫn chưa có phương pháp không xâm lấn nào để đánh giá VM in vivo. Siêu âm tăng cường tương phản (CEUS) đã được thực hiện để đánh giá các thông số định lượng của khối u ở chuột. Nhuộm CD31 bằng hóa mô miễn dịch - phản ứng đồng thời với Axit Periodic-Schiff đã được thực hiện để xác định VM hoặc EV trong mô khối u. Mối tương quan giữa các thông số tưới máu và mật độ VM đã được phân tích bằng kiểm định tương quan Pearson. Vào ngày thứ 15 sau khi tiêm khối u, mật độ EV và VM lần lượt là 31,15 ± 7,14 và 14,11 ± 2,99 trên trường 200×. Cường độ tối đa (IMAX) là 301,19 ± 191,56%, thời gian tăng (RT), thời gian đạt cực đại (TTP) và thời gian trung bình lưu thông (mTT) lần lượt là 17,38 ± 7,82 giây, 20,27 ± 9,61 giây và 58,09 ± 26,44 giây. Mật độ VM có tương quan tích cực với RT (r = 0,3598, P = 0,0226), TTP (r = 0,3733, P = 0,0177) và mTT (r = 0,6483, P < 0,0001), trong khi mật độ EV có tương quan tích cực với IMAX (r = 0,4519, P = 0,0034). Đường kính mạch máu của VM lớn hơn đáng kể so với EV (43,81 ± 5,88 μm so với 11,21 ± 4,13 μm). Ba thông số định lượng liên quan đến VM đã được thu được và mối quan hệ giữa CEUS và VM đã được thiết lập. Do đó, CEUS có thể cung cấp một phương pháp không xâm lấn mới để đánh giá VM in vivo.

Từ khóa

#Mô phỏng mạch máu #siêu âm tăng cường tương phản #khối u #mật độ mạch máu #phương pháp không xâm lấn.

Tài liệu tham khảo

Folkman J. Role of angiogenesis in tumor growth and metastasis. Semin Oncol. 2002;29(6 Suppl 16):15–8. Maniotis AJ, et al. Vascular channel formation by human melanoma cells in vivo and in vitro: vasculogenic mimicry. Am J Pathol. 1999;155(3):739–52. Guzman G, et al. A pilot study of vasculogenic mimicry immunohistochemical expression in hepatocellular carcinoma. Arch Pathol Lab Med. 2007;131(12):1776–81. Liu R, et al. Vasculogenic mimicry is a marker of poor prognosis in prostate cancer. Cancer Biol Ther. 2012;13(7):527–33. Liu XM, et al. Clinical significance of vasculogenic mimicry in human gliomas. J Neuro-Oncol. 2011;105(2):173–9. Sood AK, et al. The clinical significance of tumor cell-lined vasculature in ovarian carcinoma: implications for anti-vasculogenic therapy. Cancer Biol Ther. 2002;1(6):661–4. Yue WY, Chen ZP. Does vasculogenic mimicry exist in astrocytoma? J Histochem Cytochem. 2005;53(8):997–1002. Cao Z, et al. Tumour vasculogenic mimicry is associated with poor prognosis of human cancer patients: a systemic review and meta-analysis. Eur J Cancer. 2013;49(18):3914–23. Ren K, et al. Vasculogenic mimicry: a new prognostic sign of human osteosarcoma. Hum Pathol. 2014;45(10):2120–9. Sun B, et al. Vasculogenic mimicry is associated with high tumor grade, invasion and metastasis, and short survival in patients with hepatocellular carcinoma. Oncol Rep. 2006;16(4):693–8. Sun H, et al. Anti-angiogenic treatment promotes triple-negative breast cancer invasion via vasculogenic mimicry. Cancer Biol Ther. 2017;18(4):205–13. Xu Y, et al. Short-term anti-vascular endothelial growth factor treatment elicits vasculogenic mimicry formation of tumors to accelerate metastasis. J Exp Clin Cancer Res. 2012;31:16. Folberg R, Hendrix MJ, Maniotis AJ. Vasculogenic mimicry and tumor angiogenesis. Am J Pathol. 2000;156(2):361–81. Brown E, Lindner JR. Ultrasound molecular imaging: principles and applications in cardiovascular medicine. Curr Cardiol Rep. 2019;21(5):30. Frohlich E, et al. Dynamic contrast-enhanced ultrasound for quantification of tissue perfusion. J Ultrasound Med. 2015;34(2):179–96. Senior R, et al. Comparison of sulfur hexafluoride microbubble (SonoVue)-enhanced myocardial contrast echocardiography with gated single-photon emission computed tomography for detection of significant coronary artery disease: a large European multicenter study. J Am Coll Cardiol. 2013;62(15):1353–61. Westwood M, et al. Contrast-enhanced ultrasound using SonoVue(R) (Sulphur hexafluoride microbubbles) compared with contrast-enhanced computed tomography and contrast-enhanced magnetic resonance imaging for the characterisation of focal liver lesions and detection of liver metastases: a systematic review and cost-effectiveness analysis. Health Technol Assess. 2013;17(16):1–243. Zhou JH, et al. Contrast-enhanced ultrasonic parametric perfusion imaging in the evaluation of antiangiogenic tumor treatment. Eur J Radiol. 2012;81(6):1360–5. Pei XQ, et al. Contrast-enhanced ultrasonography of hepatocellular carcinoma: correlation between quantitative parameters and arteries in neoangiogenesis or sinusoidal capillarization. Eur J Radiol. 2012;81(3):e182–8. Zheng SG, et al. Parametric imaging with contrast-enhanced ultrasound: usefulness for characterization of dynamic effects of microvascularization for hepatocellular carcinoma and focal nodular hyperplasia. Clin Hemorheol Microcirc. 2013;55(3):375–89. Weidner N, et al. Tumor angiogenesis: a new significant and independent prognostic indicator in early-stage breast carcinoma. J Natl Cancer Inst. 1992;84(24):1875–87. Adams VR, Leggas M. Sunitinib malate for the treatment of metastatic renal cell carcinoma and gastrointestinal stromal tumors. Clin Ther. 2007;29(7):1338–53. Ferrara N, Hillan KJ, Novotny W. Bevacizumab (Avastin), a humanized anti-VEGF monoclonal antibody for cancer therapy. Biochem Biophys Res Commun. 2005;333(2):328–35. Huang WT, et al. A postmarketing surveillance study on erbitux (cetuximab) in patients with metastatic colorectal cancer refractory to irinotecan-containing treatment. J Investig Med. 2013;61(7):1108–14. Carbone C, et al. Anti-VEGF treatment-resistant pancreatic cancers secrete proinflammatory factors that contribute to malignant progression by inducing an EMT cell phenotype. Clin Cancer Res. 2011;17(17):5822–32. Ebos JM, et al. Accelerated metastasis after short-term treatment with a potent inhibitor of tumor angiogenesis. Cancer Cell. 2009;15(3):232–9. Paez-Ribes M, et al. Antiangiogenic therapy elicits malignant progression of tumors to increased local invasion and distant metastasis. Cancer Cell. 2009;15(3):220–31. Qu B, et al. Antiangiogenesis therapy might have the unintended effect of promoting tumor metastasis by increasing an alternative circulatory system. Med Hypotheses. 2010;74(2):360–1. Dome B, et al. Alternative vascularization mechanisms in cancer: pathology and therapeutic implications. Am J Pathol. 2007;170(1):1–15. Cantisani V, et al. Growing indications for CEUS: the kidney, testis, lymph nodes, thyroid, prostate, and small bowel. Eur J Radiol. 2015;84(9):1675–84. Shirakawa K, et al. Inflammatory breast cancer: vasculogenic mimicry and its hemodynamics of an inflammatory breast cancer xenograft model. Breast Cancer Res. 2003;5(3):136–9. Chen X, et al. Three-dimensional reconstruction of extravascular matrix patterns and blood vessels in human uveal melanoma tissue: techniques and preliminary findings. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2003;44(7):2834–40. Wood AK, et al. The disruption of murine tumor neovasculature by low-intensity ultrasound-comparison between 1- and 3-MHz sonication frequencies. Acad Radiol. 2008;15(9):1133–41.
Thông tin
Thông tin xuất bản

Springer Science and Business Media LLC

Tập 21

1-8

Thông tin tác giả