Kiểm soát hình thái của nấm sợi bằng các vi hạt để tăng cường sản xuất β-mannanase

Bioprocess and Biosystems Engineering - Tập 39 - Trang 1391-1399 - 2016
Ercan Yatmaz1,2, Ercan Karahalil2, Mustafa Germec2,3, Merve Ilgin2, İrfan Turhan2
1Göynük Culinary Arts Vocational School, Akdeniz University, Antalya, Turkey
2Department of Food Engineering, Faculty of Engineering, Akdeniz University, Antalya, Turkey
3Department of Food Engineering, Faculty of Engineering, Çankırı Karatekin University, Çankırı, Turkey

Tóm tắt

β-mannanase được sản xuất chủ yếu bởi các loài Aspergillus và có khả năng phân hủy các liên kết β-1,4-mannose của galactomannans. Nghiên cứu này được thực hiện nhằm nâng cao sản xuất mannanase bằng cách sử dụng talc và oxit nhôm như các vi hạt, điều khiển hình thái tế bào của Aspergillus sojae tái tổ hợp trong môi trường glucose và chiết xuất từ quả carob. Cả hai loại vi hạt đều cải thiện sự phát triển của nấm trong môi trường chiết xuất từ quả carob và glucose. Oxit nhôm (1 g/L) là tác nhân tốt nhất cho môi trường glucose với kết quả đạt được 514,0 U/ml. Tuy nhiên, hoạt tính mannanase cao nhất được tìm thấy là 568,7 U/ml với 5 g/L talc trong môi trường chiết xuất từ quả carob. Sự gia tăng nồng độ vi hạt dẫn đến giảm đường kính kích thước viên nén. Hơn nữa, khi thêm hơn 10 g/L talc, loại hình phát triển của nấm sợi đã thay đổi từ viên nén sang hỗn hợp viên nén/mycelium. Kết quả cho thấy loại và nồng độ vi hạt phù hợp trong môi trường lên men đã cải thiện hoạt tính và tỷ lệ sản xuất mannanase bằng cách kiểm soát hình thái phát triển.

Từ khóa

#β-mannanase #Aspergillus #talc #oxit nhôm #môi trường lên men

Tài liệu tham khảo

Aehle W (2004) Enzymes in industry. Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA, Weinheim Rosengren A, Reddy SK, Sjöberg JS, Aurelius O, Logan DT, Kolenova K, Stalbrand H (2014) An Aspergillus nidulans β-mannanase with high transglycosylation capacity revealed through comparative studies within glycosidase family 5. Appl Microbiol Biot 98(24):10091–10104 Van Zyl WH, Rose SH, Trollope K, Görgens JF (2010) Fungal β-mannanases: mannan hydrolysis, heterologous production and biotechnological applications. Process Biochem 45:1203–1213 Lu H, Luo H, Shi P, Huang H, Meng K, Yang P, Yao B (2014) A novel thermophilic endo-β-1,4 mannanase from Aspergillus nidulans XZ3: functional roles of carbohydrate-binding module and Thr/Ser rich linker region. Appl Microbiol Biot 98:2155–2163 Lin SS, Dou WF, Xu HY, Li HZ, Xu ZH, Ma YH (2007) Optimization of medium composition for the production of alkaline β-mannanase by alkaliphilic Bacillus sp. N16-5 using response surface methodology. Appl Microbiol Biot 75(5):1015–1022 Huang JL, Bao LX, Zou HY, Che SG, Wang GX (2012) High-level production of a cold-active β-mannanase from Bacillus subtilis Bs5 and its molecular cloning and expression. Mol Genet Microbiol Virol 27(4):147–153 Feng Y, He Z, Ong SL, Hu J, Zhang Z, Ng WJ (2003) Optimization of agitation, aeration, and temperature conditions for maximum β-mannanase production. Enzyme Microb Tech 32:282–289 Katrolia P, Yan Q, Zhang P, Zhou P, Yang S, Jiang Z (2013) Gene cloning and enzymatic characterization of an alkali-tolerant endo-1,4-β-mannanase from Rhizomucor miehei. J Agr Food Chem 61:394–401 Yin JS, Liang QL, Li DM, Sun ZT (2012) Optimization of production conditions for β-mannanase using apple pomace as raw material in solid-state fermentation. Ann Microbiol 63:101–108 Wang J, Shao Z, Hong Y, Li C, Fu X, Liu Z (2010) A novel β-mannanase from Pantoea agglomerans A021: gene cloning, expression, purification and characterization. World J Microbiol Biotechnol 26:1777–1784 Chen X, Cao Y, Ding Y, Lu W, Li D (2007) Cloning, functional expression and characterization of Aspergillus sulphures β-mannanase in Pichia pastoris. J Biotechnol 128:452–461 Luo H, Wang K, Huang H, Shi P, Yang P, Yao B (2012) Gene cloning, expression, and biochemical characterization of an alkali-tolerant β-mannanase from Humicola insolens Y1. J Ind Microbiol Biot 39:547–555 Wang Y, Shi P, Luo H, Bai Y, Huang H, Yang P, Xiong H, Yao B (2012) Cloning, over-expression and characterization of an alkali-tolerant endo-β-1,4-mannanase from Penicillium freii F63. J Biosci Bioeng 113(6):710–714 Großwindhager C, Sachslehner A, Nidetzky B, Haltrich D (1999) Endo-β-1,4-D-mannanase is efficiently produced by Sclerotium (Athelia) rolfsii under derepressed conditions. J Biotechnol 67(2–3):189–203 Ozturk B, Cekmecelioglu D, Ogel ZB (2010) Optimal conditions for enhanced β-mannanase production by recombinant Aspergillus sojae. J Mol Catal B Enzym 64:135–139 Turhan I, Bialka KL, Demirci A, Karhan M (2010) Ethanol production from carob extract by using Saccharomyces cerevisiae. Bioresour Tech 101:5290–5296 Yatmaz E, Turhan I, Karhan M (2013) Optimization of ethanol production from carob pod extract using immobilized saccharomyces cerevisiae cells in a stirred tank bioreactor. Bioresour Tech 135:365–371 Kaup BA, Ehrich K, Pescheck M, Schrader J (2008) Microparticle-enhanced cultivation of filamentous microorganisms: increased chloroperoxidase formation by Caldariomyces fumago as an example. Biotechnol Bioeng 99(3):491–498 Driouch H, Hänsch R, Wucherpfennig T, Krull R, Wittman C (2012) Improved enzyme production by bio-pellets of Aspergillus niger: targeted morphology engineering using titanate microparticles. Biotechnol Bioeng 105(6):1058–1068 Driouch H, Sommer B, Wittman C (2010) Morphology engineering of Aspergillus niger for improved enzyme production. Biotechnol Bioeng 109(2):462–471 Coban HB, Demirci A, Turhan I (2015) Microparticle-enhanced Aspergillus ficuum phytase production and evaluation of fungal morphology in submerged fermentation. Bioprocess Biosyst Eng 38(6):1075–1080 Coban HB, Demirci A, Turhan I (2015) Enhanced Aspergillus ficuum phytase production in fed-batch and continuous fermentations in the presence of talcum microparticles. Bioprocess Biosyst Eng 38(8):1431–1436 Coban HB, Demirci A (2016) Enhancement and modeling of microparticle-added Rhizopus oryzae lactic acid production. Bioprocess Biosyst Eng 39:323–330 Duruksu G, Ozturk B, Biely P, Bakır U, Ogel ZB (2009) Cloning, expression and characterization of endo-beta-1,4-mannanase from Aspergillus fumigatus in Aspergillus sojae and Pichia pastoris. Biotechnol Progr 25:271–276 Bailey MJ, Biely P, Poutanen K (1992) Interlaboratory testing methods for assay of xylanase activity. J Biotechnol 23:257–270 Miller GL (1959) Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar. Anal Chem 31:426