Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Phân tích so sánh các hoạt động sinh học khác nhau của Curcuma longa, hạt Nigella sativa và Camellia sinensis được chiết xuất bằng bốn phương pháp khác nhau: Một phương pháp xanh để giảm căng thẳng oxy hóa
Tóm tắt
Việc sử dụng cây thuốc đã có từ rất lâu trong lịch sử loài người. Curcuma longa, hạt Nigella sativa và Camellia sinensis đã được sử dụng rộng rãi trong các phương thuốc từ lâu đời. Trong nghiên cứu này, tác động của phương pháp chiết xuất lên các hoạt động sinh học khác nhau và các thành phần hóa thực vật của Curcuma longa, hạt Nigella sativa và Camellia sinensis đã được đánh giá và so sánh bằng cách sử dụng hệ thống dung môi đơn (50% ethanol). Các dịch chiết từ thực vật được chuẩn bị bằng cách chiết xuất hỗ trợ thẩm thấu, hỗ trợ siêu âm, hỗ trợ vi sóng và chiết xuất polyphenol. Sau khi tiến hành sàng lọc hóa thực vật, các dịch chiết được kiểm tra hoạt tính chống oxy hóa, hoạt tính chống tan máu, khả năng chịu thẩm thấu và độ giòn thẩm thấu. Tất cả các dịch chiết thực vật đều cho thấy hàm lượng hóa thực vật tốt dù phương pháp chiết xuất có khác nhau. Tuy nhiên, hoạt động trong các bài thử nghiệm chống oxy hóa in vitro phụ thuộc vào từng loại thực vật cũng như phương pháp chiết xuất. Kết quả khả quan đã được quan sát thấy đối với hoạt tính chống tan máu chống lại hồng cầu bị xử lý bằng hydro peroxide. Nhìn chung, Camellia sinensis thể hiện hoạt động sinh học cao nhất tiếp theo là Curcuma longa và hạt Nigella sativa.
Từ khóa
#Curcuma longa #hạt Nigella sativa #Camellia sinensis #phương pháp chiết xuất #hoạt động sinh học #hóa thực vật #chống oxy hóaTài liệu tham khảo
Jun X, Deji S, Ye L, Rui Z. Comparison of in vitro antioxidant activities and bioactive components of green tea extracts by different extraction methods. Int. J. Pharm. 408: 97–101 (2011)
Shabbir M, Khan MR, Saeed N. Assessment of phytochemicals, antioxidant, anti-lipid peroxidation and anti-hemolytic activity of extract and various fractions of maytenusroyleanus leaves. BMC Complem. Altern. M. 13: 143 (2013)
Nabavi S, Abolhasani F, Moghaddam A, Eslami S. Cytoprotective effects of curcumin on sodium fluoride-induced intoxication in rat erythrocytes. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 88: 486–490 (2012)
de Freitas MV, Netto Rde C, da Costa Huss JC, de Souza TM, Costa JO, Firmino CB, Penha-Silva N. Influence of aqueous crude extracts of medicinal plants on the osmotic stability of human erythrocytes. Toxicol. In Vitro 22: 219–224 (2008)
Ak T, Gülçin I. Antioxidant and radical scavenging properties of curcumin. Chem. Biol. Interact. 174: 27–37 (2008)
Agarwal R, Katiyar SK, Zaidi SI, Mukhtar H. Inhibition of skin tumor promotercaused induction of epidermal ornithine decarboxylase in SENCAR mice by polyphenolic fraction isolated from green tea and its individual epicatechin derivatives. Cancer Res. 52: 3582–3588 (1992)
Hosseinzadeh H, Montahaei R. Protective effect of Nigella sativa L. extracts and thymoquinone, its active constituent, on renal ischemia-reperfusioninduced oxidative damage in rats. Pharmacology (online) 1: 176–189 (2007)
Yasmeen H, Hasnain S. In vitro antioxidant effect of Camellia sinensis on human cell cultures. Pak. J. Pharm. Sci. 28: 1573–1581 (2015)
Pan X, Niu G, Liu H. Microwave-assisted extraction of tea polyphenols and tea caffeine from green tea leaves. Chem. Eng. Process. 42: 129–133 (2003)
Khalili M, Ebrahimzadeh MA, Safdari Y. Antihaemolytic activity of thirty herbal extracts in mouse red blood cells. Arh. Hig. Rada. Toksikol. 65: 399–406 (2015)
Chang CC, Yang MH, Wen HM, Chern JC. Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods. J. Food Drug Anal. 10: 178–182 (2002)
Folin O, Ciocalteu V. On tyrosine and tryptophane determinations in proteins. J. Biol. Chem. 73: 627–650 (1927)
Thaipong K, Boonprakob U, Crosby K, Cisneros-Zevallos L, Byrne DH. Comparison of ABTS, DPPH, FRAP and ORAC assays for estimating antioxidant activity from guava fruit extracts. J. Food Compos. Anal. 19: 669–675 (2006)
Cavin A, Hostettmann K, Dyatmyko W, Potterat O. Antioxidant and lipophilic constituents of Tinospora crispa. Planta Med. 64: 393–396 (1998)
Oyaizu M. Studies on products of browning reaction: Antioxidant activities of products of browning reaction prepared from glucosamine. Jpn. J. Nutr. 44: 307–315 (1986)
Naim M, Gestetner B, Bondi A, Birk Y. Antioxidative and antihemolytic activities of soybean isoflavones. J. Agr. Food Chem. 24: 1174–1177 (1976)
Muanprasat C, Wongborisuth C, Pathomthongtaweechai N, Satitsri S, Hongeng S. Protection against oxidative stress in beta thalassemia/ hemoglobin E erythrocytes by inhibitors of glutathione efflux transporters. PLoS ONE 8: e55685 (2013)
Alothman M, Bhat R, Karim AA. Antioxidant capacity and phenolic content of selected tropical fruits from Malaysia, extracted with different solvents. Food Chem. 115: 785–788 (2009)
Costa RM, Magalhães AS, Pereira JA, Andrade PB, Valentão P, Carvalho M, Silva BM. Evaluation of free radical-scavenging and antihemolytic activities of quince (Cydonia oblonga) leaf: A comparative study with green tea (Camellia sinensis). Food Chem. Toxicol. 47: 860–865 (2009)
Xi J, Shen D, Li Y, Zhang R. Ultrahigh pressure extraction as a tool to improve the antioxidant activities of green tea extracts. Food Res. Int. 44: 2783–2787 (2011)
Chhetri HP, Yogol NS, Sherchan J, Anupa K, Mansoor S, Thapa P. Phytochemical and antimicrobial evaluations of some medicinal plants of Nepal. Kathmandu Univ. J. Sci. Eng. Technol. 4: 49–54 (2008)
Li S, Yuan W, Deng G, Wang P, Yang P, Aggarwal BB. Chemical composition and product quality control of turmeric (Curcuma longa L.). Pharm. Crops 2: 28–54 (2011)
Babazadeh B, Sadeghnia HR, Kapurchal ES, Parsaee H, Nasri S, Tayarani- Najaran Z. Protective effect of Nigella sativa and thymoquinone on serum/ glucose deprivation-induced DNA damage in pc12 cells._Avicenna J. Phytomed. 2: 125–132 (2012)
James O, Alewo IM. In vitro antihemolytic activity of gymnema sylvestre extracts against hydrogen peroxide (H2O2) induced haemolysis in human erythrocytes. Am. J. Phytomed. Clin. Ther. 2: 861–869 (2014)
Li M, Ngadi MO, Ma Y. Optimisation of pulsed ultrasonic and microwaveassisted extraction for curcuminoids by response surface methodology and kinetic study. Food Chem. 165: 29–34 (2014)
Fukumoto LR, Mazza G. Assessing antioxidant and prooxidant activities of phenolic compounds. J. Agr. Food Chem. 48: 3597–3604 (2000)
Djeridane A, Yousfi M, Nadjemi B, Boutassouna D, Stocker P, Vidal N. Antioxidant activity of some Algerian medicinal plants extracts containing phenolic compounds. Food Chem. 97: 654–660 (2006)
Javanmardi J, Stushnoff C, Locke E, Vivanco JM. Antioxidant activity and total phenolic content of Iranian Ocimum accessions. Food Chem. 83: 547–550 (2003)
Kahkonen MP, Hopia AT, Vuorela HJ, Rauha JP, Pihlaja K, Kujala TS, Heinonen M. Antioxidant activity of plant extracts containing phenolic compounds. J. Agr. Food Chem. 47: 3954–3962 (1999)
Loganayaki N, Siddhuraju P, Manian S. Antioxidant activity of two traditional Indian vegetables: Solanum nigrum L. and Solanum torvum L. Food Sci. Biotechnol. 19: 121–127 (2010)
Patel VR, Patel PR, Kajal SS. Antioxidant activity of some selected medicinal plants in western region of India. Adv. Biol. Res. 4: 23–26 (2010)