Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Cặn Ciprofloxacin và tác động của nó lên các biomolecule trong trứng của gà đẻ sau khi uống
Tóm tắt
Nghiên cứu hiện tại được thiết kế để đánh giá cặn Ciprofloxacin và tác động của nó lên một số biomolecule (albumin, tổng protein và cholesterol) trong trứng của gà đẻ sau khi uống thuốc. Để đạt được mục tiêu đó, một nhóm (A) gà đẻ (n=20) đã được uống 10 mg/kg ciprofloxacin trong năm ngày liên tiếp. Nhóm thứ hai (n=10) là nhóm chứng không điều trị. Trứng được thu thập từ ngày đầu tiên của việc điều trị cho đến 25 ngày sau khi ngừng điều trị. Lòng trắng và lòng đỏ trong mỗi quả trứng được tách ra, và cặn ciprofloxacin cũng như biomolecule được phân tích bằng phương pháp sắc ký lỏng hiệu năng cao với phát hiện huỳnh quang và bộ dụng cụ xét nghiệm thương mại. Ciprofloxacin có thể phát hiện được trong lòng trắng trứng vào ngày đầu tiên điều trị với nồng độ cao hơn (1755 μg/kg) trong khi ở nồng độ thấp hơn (362 μg/kg) trong lòng đỏ trứng. Trong cả hai môi trường này, nồng độ tăng trong suốt năm ngày điều trị. Sau khi ngừng điều trị, cần tám ngày và mười bốn ngày để làm giảm cặn thuốc xuống dưới giới hạn phát hiện (LOD) trong lòng trắng và lòng đỏ trứng tương ứng. Mặt khác, mức cholesterol tăng trong khi mức albumin và tổng protein giảm trong thời gian điều trị. Tất cả các biomolecule này trở lại mức bình thường vào khoảng ngày mười bảy hoặc mười tám sau ngày điều trị. Trong tất cả các trường hợp, sự khác biệt về nồng độ cặn thuốc và nồng độ biomolecule trong thời gian điều trị và sau điều trị trong trứng đều cho thấy ý nghĩa thống kê. Dựa trên thời gian cần thiết để giảm cặn thuốc xuống dưới LOD, chúng tôi có thể ước lượng rằng, trong khoảng thời gian hai mươi ngày điều trị, nội dung trứng có thể chứa cặn độc hại có thể làm giảm giá trị dinh dưỡng của trứng và do đó có thể gây ra bệnh nghiêm trọng cho người tiêu dùng, trong khi đó thì vẫn an toàn sau khoảng thời gian đó.
Từ khóa
#Ciprofloxacin #trứng gà #biomolecule #albumin #cholesterol #tổng protein #sắc ký lỏng hiệu năng caoTài liệu tham khảo
Anderson M, Macgowan A. Development of the quinolones. J Antimicrob Chemother. 2003;51:1–11.
Campbell DJ. Drug residue in animal tissues and their regulatory significance the Canadian point of view. J AOAC. 1978;61(5):1194–7.
Chu P, Wang R, Chu H. Liquid chromatographic determination of fluoroquinolones in egg albumen and egg yolk of laying hens using fluorometric detection. J Agric Food Chem. 2002;50:4452–5.
Cornejo J, Lapierre L, Iragu¨ en D, Cornejo S, Cassus G, Richter P, et al. Study of enrofloxacin and flumequine residues depletion in eggs of laying hens after oral administration. J Vet Pharmacol Ther. 2011;35:67–72.
Donoghue DJ, Hairston H. Food safety implication: certain antibiotics may rapidly contaminate egg albumen during the process of its formation. Br Poult Sci. 2000;41:174–7.
Donoghue D, Myers K. Imaging residue transfers into egg yolks. J Agric Food Chem. 2000;48:6428–30.
Donoghue DJ, Hairston H, Gaines S, Bartholmew MJ, Donoghue AM. Modeling residue uptake in eggs: similar drug residue patterns in developing yolks following injection with ampicillin or oxytetracycline. Poult Sci. 1996;75:321–8.
Donoghue DJ, Hairston H, Podhorniak LV. Modeling drug residue uptake by eggs: evidence of a consistent daily pattern of contaminant transfer into developing preovulatory yolks. J Food Prot. 1997;60:1251–5.
Esaki H, Morioka A, Ishihara K, Kojima A, Shiroki A, Tamura Y, et al. Antimicrobial susceptibility of Salmonella isolated from cattle, swine and poultry (2001–2002): report from the Japanese Veterinary Antimicrobial Resistance Monitoring Program. J Antimicrob Chemother. 2004;53:266–70.
Gharieb MM, Atti NMA. Ciprofloxacin drug residue in table egg. SCVMJ. 2011;16(2):137–8.
Gorla N, Chiostri E, Ugnia L, Weyers A, Giacomelli N, Davicino R, et al. HPLC residues of enrofloxacin and ciprofloxacin in eggs of laying hens. Int J Antimicrob Agents. 1997;9:253–6.
Griggs D, Johnson M, Frost J, Humphrey T, Jørgensen F, Piddock L. Incidence and mechanism of ciprofloxacin resistance in Campylobacter spp. isolated from commercial poultry flocks in the United Kingdom before, during, and after fluoroquinolone Treatment. Antimicrob Agents Chemother. 2005;49:699–707.
Humphrey TJ, Jørgensen F, Frost J, Wadda H, Domingue G, Elviss N. Prevalence and subtypes of ciprofloxacin-resistant Campylobacter spp. in commercial poultry flocks before, during, and after treatment with fluoroquinolones. Antimicrob Agents Chemother. 2005;49:690–8.
Kan C. Residues of Veterinary Drugs in Eggs and their Distribution Between Yolk and White. Alemania: Wuppertal University; 2003.
Kan C, Petz M. Residues of veterinary drugs in eggs and their distribution between yolk and white. J Agric Food Chem. 2000;48:6397–403.
Khan AA, Nawaz MS, SummageWest C, Khan SA, Lin J. Isolation and molecular characterization of fluoroquinolone-resistant Escherichia coli from poultry litter. Poult Sci. 2005;84:61–6.
Lapierre L, Cornejo J, Borie C, Toro C, San Martı′n B. Genetic characterization of antibiotic resistance genes linked to class 1 and class 2 integrons in commensal strains of Escherichia coli isolated from poultry and swine. Microb Drug Resist. 2008;14:265–72.
Lee YJ, Cho JK, Kim KS, Tak RB, Kim AR, Kim JW, et al. Fluoroquinolone resistance and gyrA and parC mutations of Escherichia coli isolated from Chicken. J Microbiol. 2005;43:391–7.
Liu JH, Chen ZL, Li Y, Liu YW. Effects of low concentration enrofloxacin on SPF mice intestinal microflora. Sci Agric Sin. 2005;38:1905–10.
Lolo M, Pedreira S, Fente C, Vaa¨zquez B, Franco C, Cepeda A. Study of enrofloxacin depletion in the eggs of laying hens using diphasic dialysis extraction ⁄ purification and determinative HPLC-MS analysis. J Agric Food Chem. 2005;53:2849–52.
Luangtongkum T, Jeon B, Han J, Plummer P, Logue CM, Zhang Q. Antibiotic resistance in Campylobacter: emergence, transmission and persistence. Future Microbiol. 2009;2:189–200.
Martinez M, McDermott P, Walker R. Pharmacology of the Fluoroquinolones: a perspective for the use in domestic animals. Vet J. 2006;172:10–28.
Michell JM, Griffiths MW, McEwen SA, Mcab W, Yee AJ. Antimicrobial drug residues in milk and meat: causes, concerns, prevalence, regulations, tests and test performance. J Food Prot. 1998;61(6):742–56.
Nelson JM, Chiller TM, Powers JH, Angulo FJ. Fluoroquinolone- resistant Campylobacter species and the withdrawal of fluoroquinolones from use in poultry: a public health success story. Clin Infect Dis. 2007;44:977–80.
Norstro¨m M, Hofshagen M, Stavnes T, Schau J, Lassen J, Kruse H. Antimicrobial resistance in Campylobacter jejuni from humans and broilers in Norway. Epidemiol Infect. 2006;134:127–30.
Riberzani A, Fedrizzi G, Espositi S. Presence of flumequine in eggs: experimental results of a simulated field trial. Euroresidue. 1993;2:576–80.
Rivetz B, Begin E, Hornstein K, Nerdinger M. Biochemical changes in fowl serum during infection with strains of Newcastle disease virus of different virulence. Changes in serum proteins, uni acid, lipids and electrolytes. Res Vet Sci. 1977;22:285–91.
Roudaut B. Elimination of oxolinic acid in eggs after oral treatment of laying hens. Br Poult Sci. 1998;39:47–52.
Salih YZ. Toxic effect of ciprofloxacin on some biochemical variables in chickens. Iraqi J Vet Sci. 2010;24(2):137.
San Martı′n B, Lapierre L, Cornejo J, Bucarey S. Characterization of antibiotic resistance genes linked to class 1 and 2 integrons in strains of Salmonella spp. isolated from swine. Can J Microbiol. 2008;54:569–76.
SAS SAS ⁄ STAT Users Guide. Ver 6. SAS Institute Inc. Cary, NC. 1989.
Skjøt-Rasmussen L, Ethelberg S, Emborg HD, Agersø Y, Larsen LS, Nordentoft S, et al. Trends in occurrence of antimicrobial resistance in Campylobacter jejuni isolates from broiler chickens, broiler chicken meat, and human domestically acquired cases and travel associated cases in Denmark. Int J Food Microbiol. 2009;131:277–9.
Tyczkowska K, Hedeen KM, Aucoin DP, Aronson AL. High-performance liquid chromatographic method for the simultaneous determination of enrofloxacin and its primary metabolite ciprofloxacin in canine serum and prostatic tissue. J Chromatogr. 1989;493:337–46.
Yang G, Dong A, Zeng Z, Huang X, Chen Z. Study of danofloxacin depletion in eggs of laying hens after oral administration. Int J Antimicrob Agents. 2006;28:128–31.
Zeng Z, Dong A, Yang G, Chen Z, Huang X. Simultaneous determination of nine fluoroquinolones in egg white and egg yolk by liquid chromatography with fluorescence detection. J Chromatogr B Anal Technol Biomed Life Sci. 2005;821:202–9.
Zhao S, Mcdermott PF, Friedman S, Abbott J, Ayers S, Glenn A, et al. Antimicrobial resistance and genetic relatedness among Salmonella from retail foods of animal origin: NARMS retail meat surveillance. Foodborne Pathog Dis. 2006;3:106–17.