Sự ghép cặp nhiễm sắc thể trong các tế bào haploid lúa mì durum có và không có allele ph1b của lúa mì bánh mì

Euphytica - Tập 159 - Trang 353-358 - 2007
Prem P. Jauhar1, Münevver Doğramacı2
1United States Department of Agriculture—Agricultural Research Service, Northern Crop Science Laboratory, Fargo, USA
2Department of Plant Sciences, North Dakota State University, Fargo, USA

Tóm tắt

Lúa mì durum hay lúa mì macaroni (Triticum turgidum L., 2n = 4x = 28; AABB) là một loài allo-tetraploid với hai bộ gen liên quan, AA và BB, mỗi bộ có bảy cặp nhiễm sắc thể đồng dạng. Mặc dù các nhiễm sắc thể tương ứng của hai bộ gen có khả năng ghép cặp với nhau, gen Ph1 (ghép cặp homoeologous) trên cánh dài của nhiễm sắc thể 5B chỉ cho phép ghép cặp giữa các đối tác đồng dạng. Kết quả của sự kiểm soát kỷ luật do gen Ph1 thực hiện, lúa mì durum và hậu duệ của nó, lúa mì bánh mì (Triticum aestivum L., 2n = 6x = 42; AABBDD) cho thấy sự ghép cặp nhiễm sắc thể tương tự như loài lưỡng bội và do đó là di truyền disomic. Các dòng đột biến Ph dưới dạng các đoạn thiếu hụt có sẵn trong lúa mì bánh mì (ph1b) và lúa mì durum (ph1c). Do đó, các tế bào haploid ph1b của lúa mì bánh mì và các tế bào haploid ph1c của lúa mì durum cho thấy sự ghép cặp homoeologous rộng rãi đã được chúng tôi và một số khác chứng minh. Ở đây, chúng tôi nghiên cứu ảnh hưởng của allele ph1b của lúa mì bánh mì lên sự ghép cặp nhiễm sắc thể trong các tế bào haploid durum, trong khi chúng tôi đã nghiên cứu trước đó ảnh hưởng của allele ph1c trong các tế bào haploid durum mà chúng tôi tổng hợp. Trong lúa mì durum, các tế bào haploid ph1b cho thấy sự ghép cặp cao hơn nhiều (49.4% bổ sung) so với các tế bào haploid ph1c (38.6% bổ sung).

Từ khóa

#lúa mì durum #ghép cặp nhiễm sắc thể #allele ph1b #allele ph1c #lúa mì bánh mì

Tài liệu tham khảo

Almouslem AB, Jauhar PP, Peterson TS, Bommineni VR, Rao MB (1998) Haploid durum wheat production via hybridization with maize. Crop Sci 38:1080–1087 Ceoloni C, Jauhar PP (2006) Chromosome engineering of the durum wheat genome: strategies and applications of potential breeding value. In: Singh RJ, Jauhar PP (eds) Genetic resources, chromosome engineering, and crop improvement, Volume 2: Cereals. CRC Taylor & Francis Press, Boca Raton, FL, pp 27–59 Doğramacı-Altuntepe M, Jauhar PP (2001) Production of durum wheat substitution haploids from durum × maize crosses and their cytological characterization. Genome 44:137–142 Dubcovsky J, Luo M-C, Dvořák J (1995) Differentiation between homoeolgous chromosomes 1A of wheat and 1Am of Triticum monococcum and its recognition by the wheat Ph1 locus. Proc Natl Acad Sci USA 92:6645–6649 Gill KS, Gill BS, Endo TR, Mukai Y (1993) Fine physical mapping of Ph1, a chromosome pairing regulator gene in polyploid wheat. Genetics 134:1231–1236 Gill KS, Gill BS, Endo TR, Boyko EV (1996) Identification and high-density mapping of gene-rich regions in chromosome group 5 in wheat. Genetics 143:1001–1012 Giorgi B (1978) A homoeolgous pairing mutant isolated in Triticum durum cv. Cappelli. Mutation Breed Newsl 11:4–5 Griffiths S, Sharp R, Foote TN, Bertin I, Wanous M, Reader S, Colas I, Moore G (2006) Molecular characterization of Ph1 as a major pairing locus in polyploid wheat. Nature 439:749–752 Jauhar PP (1970) Haploid meiosis and its bearing on the phylogeny of pearl millet, Pennisetum typhoides Stapf et Hubb. Genetica 41:532–540 Jauhar PP (2003a) Formation of 2n gametes in durum wheat haploids: sexual polyploidization. Euphytica 133:81–94 Jauhar PP (2003b) Haploid and doubled haploid production in durum wheat by wide hybridization. In: Maluszynski M, Kasha KJ, Forster BP, Szarejko I (eds) Doubled haploid production in crop plants: a manual. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, pp 161–167 Jauhar PP, Joppa LR (1996) Chromosome pairing as a tool in genome analysis: merits and limitations. In: Jauhar PP (ed) Methods of genome analysis in plants. CRC Press, Boca Raton, FL, pp 9–37 Jauhar PP, Riera-Lizarazu O, Dewey WG, Gill BS, Crane CF, Bennett JH (1991) Chromosome pairing relationships among the A, B, and D genomes of bread wheat. Theor Appl Genet 82:441–449 Jauhar PP, Almouslem AB, Peterson TS, Joppa LR (1999) Inter- and intragenomic chromosome pairing in haploids of durum wheat. J Hered 90:437–445 Klindworth DL, Miller JD, Xu SS (2006) Registration of rusty durum—a genetic stock that is near-universally susceptible to wheat stem rust. Crop Sci 46:1012–1013 Luo M-C, Dubcovsky J, Dvořák J (1996) Recognition of homeology by the wheat Ph1 locus. Genetics 144:1195–1203 Maluszynski M, Kasha KJ, Forster BP, Szarejko I (eds) (2003) Doubled haploid production in crop plants: a manual. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht Martinez M, Cuadrado C, Laurie DA, Romero C (2005) Synaptic behaviour of hexaploid wheat haploids with different effectiveness of the diploidizing mechanism. Cytogenet Genome Res 109:210–214 Martínez-Pérez E, Shaw P, Reader S, Aragón-Alcaide L, Miller T, Moore G (1999) Homologous chromosome pairing in wheat. J Cell Sci 112:1761–1769 Person C (1955) An analytical study of chromosome behaviour in a wheat haploid. Can J Bot 33:11–30 Riley R, Chapman V (1958) Genetic control of the cytologically diploid behaviour of hexaploid wheat. Nature 182:713–715 Sadasivaiah RS (1974) Haploids in genetic and cytological research. In: Kasha KJ (ed) Haploids in higher plants: advances and potential. University of Guelph, Canada, pp 355–386 Sánchez-Morán E, Benavente E, Orellana J (2001) Analysis of karyotypic stability of homoeolgous-pairing (ph) mutants in allopolyploid wheats. Chromosoma 110:371–377 Sears ER (1977) An induced mutant with homoeolgous pairing in common wheat. Can J Genet Cytol 19:585–593 Sears ER, Okamoto M (1958) Intergenomic chromosome relationships in hexaploid wheat. Proc 10th Int Congr Genet 2:258–259