Tăng sinh CD8 lymphocyt trong nhiễm virus cytomegalovirus (CMV) nguyên phát ở người nhận ghép tạng: sự mở rộng của một phân nhóm CD8+ CD57− không phổ biến và sự thay thế tiến triển của nó bằng các tế bào T CD8+CD57+
Tóm tắt
Các người nhận ghép tạng bị nhiễm virus cytomegalovirus (CMV) có tỷ lệ tế bào lympho CD8+ tuần hoàn tăng lên. Một nghiên cứu theo chiều dọc trên 11 người nhận ghép thận và 5 người nhận ghép gan có nhiễm CMV nguyên phát nhưng không có yếu tố nguyên nhân nào khác gây ra rối loạn chức năng ghép cho thấy sự mất cân bằng chọn lọc của các phân nhóm T tế bào CD8+ trong máu ngoại biên. Ban đầu, sự nhiễm CMV có viremia đi kèm với sự gia tăng số lượng T tế bào CD8+ sáng và hoạt hóa T tế bào. Các dấu hiệu hoạt hóa trở về mức bình thường khi nuôi cấy virus trở thành âm tính (trước khi kết thúc tháng đầu tiên). Trong khoảng thời gian từ tháng thứ hai đến tháng thứ sáu, đa số (12/16) bệnh nhân duy trì số lượng T tế bào CD8+ cao (1050-2900 tế bào CD8+/mm3), bao gồm một phân nhóm tế bào CD8+ không phổ biến, khi 45-73% lympho CD8+ sáng là CD3+ và TCRαβ+, nhưng không bị nhuộm bởi kháng thể anti-CD28, CDIIb, CD16, CD56 và CD57. Đáng ngạc nhiên là, tế bào T CD8+CD57+, một dấu hiệu đặc trưng của nhiễm CMV, không xuất hiện cho đến tháng thứ hai đến tháng thứ sáu của nhiễm CMV nguyên phát, và số lượng của chúng tăng dần sau đó. Chúng trở thành phân nhóm tế bào T CD8+ chủ yếu sau 6 tháng nhiễm bệnh và sự tồn tại của chúng trong vài (lên đến 4) năm có mối tương quan mạnh (r = 0-87) với sự mở rộng của các tế bào CD8+. Qua phân tích bằng MoAbs, không có ưu thế nào đối với việc sử dụng các gia đình gen TCR-Vβ cụ thể vào bất kỳ thời điểm nào trong nhiễm CMV nguyên phát. Do đó, sự tồn tại của tình trạng lymphocyt CD8 là mối liên hệ trực tiếp với tỷ lệ mở rộng của một phân nhóm CD8+ CD57- không phổ biến và sự thay thế tiến triển của nó bằng các tế bào T CD8+ CD57+ được kích thích mạn tính bởi CMV.
Từ khóa
Tài liệu tham khảo
Rocha, 1989, Peripheral T lymphocytes: expansion potential and homeostatic regulation of pool sizes and CD4/CD8 ratios in vivo, Eur J Immunol, 19, 905, 10.1002/eji.1830190518
Borysiewicz, 1988, Human cytomegalovirus-specific cytotoxic T cells: their precursor frequency and stage specificity, Eur J Immunol, 18, 269, 10.1002/eji.1830180214
Reusser, 1991, Cytotoxic Tlymphocyte response to cytomegalovirus after human allogeneic bone marrow transplantation: pattern of recovery and correlation with cytomegalovirus infection and disease, Blood, 78, 1373, 10.1182/blood.V78.5.1373.1373
Carney, 1981, Analysis of T lymphocyte subsets in cytomegalovirus mononucleosis, J Immunol, 126, 2114, 10.4049/jimmunol.126.6.2114
Gratama, 1987, The influence of cytomegalovirus carrier status on lymphocyte subsets and natural immunity, Clin Exp immunol, 68, 16
Schrier, 1985, Detection of human cytomegalovirus in peripheral blood lymphocytes in a natural infection, Science, 230, 1048, 10.1126/science.2997930
Braun, 1986, Replication of human eytomegalovirus in human peripheral blood T cells, J Virol, 60, 29, 10.1128/jvi.60.1.29-36.1986
Rubin, 1981, The effect of infection on T lymphocyte sub-populalions: a preliminary report, Int J Immunopharmacol, 3, 307, 10.1016/0192-0561(81)90024-2
Maher, 1985, Cytomegalovirus infection in cardiac transplant recipients associated with chronic T cell subset ratio inversion with expansion of a Leu-7+ Ts-e+ subset, Clin Exp Immunol, 62, 515
Yumada, 1985, Monoclonal antibody 9.3 and anti-CDll antibodies define reciprocal subsets of lymphocytes, Eur J Immunol, 15, 1164, 10.1002/eji.1830151204
Gratama, 1988, Flow eytometric and morphologic studies of HNKl+ (Leu-7+) lymphocytes in relation to cytomegalovirus carrier status, Clin Exp Immunol, 74, 190
Gratama, 1989, Phenotypic study of CD4+ and CD8+ lymphocyte subsets in relation to cytomegalovirus carrier status and its correlate with pokeweed mitogen-indueed B lymphocyte differentiation, Clin Exp Immunol, 77, 245
Forman, 1985, Increased Leu-7-positive T lymphocytes during cytomegalovirus infection following allogeneie bone marrow transplantation for hematologic malignancies, Transplantation, 41, 268
Würsch, 1985, The effect of cytomegalovirus infection on T lymphocytes after allogeneic bone marrow transplantation, Clin Exp Immunol, 62, 278
Renzi, 1987, Analysis of T cell subsets in normal adults. Comparison of whole blood lysis technique to Ficol-Hypaque separation by flow cytometry, J Immunol Methods, 98, 53, 10.1016/0022-1759(87)90434-0
Rees, 1989, Changes in lymphocyte subset distribution aid in the differential diagnosis of renal allograft dysfunction, J Clin Lab Anal, 3, 222, 10.1002/jcla.1860030406
Siegel, 1989, Discriminating rejection from CMV infection in renal allograft recipients using How cytometry, Clin Immunol Immunopathol, 51, 157, 10.1016/0090-1229(89)90016-0
Fujimoto, 1983, Spontaneous release of Leu-2 (T8) molecule from human T cells, J Exp Med, 159, 752, 10.1084/jem.158.3.752
Reddy, 1989, Elevated soluble CD8 levels in sera of human immunodeficiency virus-infected populations, J Clin Microbiol, 27, 257, 10.1128/jcm.27.2.257-260.1989
Meyers, 1990, Cytomegalovirus excretion as a predictor of cytomegalovirus disease after marrow transplantation: importance of cytomegalovirus viremia, J Infect Dis, 162, 373, 10.1093/infdis/162.2.373
Van Den Berg, 1992, Recovery from cytomegalovirus infection is associated with activation of peripheral blood lymphocytes, J Infect Dis, 166, 1228, 10.1093/infdis/166.6.1228
Van Den Berg, 1993, Prediction of recurrent cytomegalovirus disease after treatment with ganeiclovir in solid-organ transplant recipients, Transplantation, 55, 847, 10.1097/00007890-199304000-00031
Tilden, 1983, Suppressor cell function of human granular lymphocytes identified by the HNK-I (Leu-7) monoclonal antibody, J Immunol, 130, 1171, 10.4049/jimmunol.130.3.1171
Divine, 1988, Functional analysis of CD8 lymphocytes in long-term surviving patients after bone marrow transplantation, J Clin Immunol, 8, 140, 10.1007/BF00917902
Sadal-Sowti, 1991, A lectin-binding soluble factor released by CD8+ CD57+ lymphoeytes from AIDS patients inhibits T cell cytotoxicity, Eur J Immunol, 21, 737, 10.1002/eji.1830210329
McFarland, 1992, CDIlb (Mac-1): a marker for CD8+ cytotoxic T cell activation and memory in virus infection, J Immunol, 149, 1326, 10.4049/jimmunol.149.4.1326
Linsley, 1993, CD28 engagement by B7/BB-I induces transient down-regulation of CD28 synthesis and prolonged unresponsiveness to CD28 signaling, J Immunol, 150, 3161, 10.4049/jimmunol.150.8.3161
Azuma, 1993, CD28- T lymphocytes. Antigenic and functional properties, J Immunol, 150, 1147, 10.4049/jimmunol.150.4.1147
Kruse, 1984, Neural cell adhesion molecules and myetin-associated glycoprotein share a common carbohydrate moiety recognized by monoclonal antibodies L2 and HNK-1, Nature, 311, 153, 10.1038/311153a0