Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Hoạt Động Sinh Học Của Các Chiết Xuất Thực Vật Asteraceae (Achillea millefolium và Calendula officinalis) và Lamiaceae (Melissa officinalis và Origanum majorana)
Tóm tắt
Chiết xuất từ các loài thực vật họ Asteraceae (Achillea millefolium và Calendula officinalis) và Lamiaceae (Melissa officinalis và Origanum majorana) được thu được bằng hai quy trình chiết xuất liên tiếp: chiết xuất bằng chất lỏng siêu tới hạn với carbon dioxide, sau đó là chiết xuất hỗ trợ bằng sóng siêu âm sử dụng dung môi xanh (etano và etano:nước 50:50). Các chiết xuất này đã được phân tích về tổng hàm lượng các hợp chất phenolic và hàm lượng flavonoid; thành phần tinh dầu bay hơi của các chiết xuất siêu tới hạn được phân tích bằng sắc ký khí và khả năng chống oxi hóa cũng như độc tính tế bào đã được xác định. Các chiết xuất từ thực vật họ Lamiaceae có hàm lượng phenolic (và flavonoid) cao hơn so với các chiết xuất từ họ Asteraceae. Bất kể loài được nghiên cứu, các chiết xuất siêu tới hạn đều cho thấy hoạt tính chống oxi hóa thấp nhất và các chiết xuất từ etano:nước mang lại hoạt tính cao nhất, theo thứ tự Origanum majorana > Melissa officinalis ≈ Achillea millefolium > Calendula officinalis. Tuy nhiên, về hiệu ứng đối với độc tính tế bào, các chiết xuất siêu tới hạn của họ Asteraceae (đặc biệt là Achillea millefolium) thể hiện hiệu quả cao hơn mặc dù có hoạt tính chống oxi hóa thấp hơn. Những kết quả này chỉ ra rằng tác động đến khả năng sống sót của tế bào không liên quan đến hoạt tính chống oxi hóa của các chiết xuất.
Từ khóa
#Asteraceae #Lamiaceae #chiết xuất thực vật #hoạt tính sinh học #hợp chất phenolic #flavonoid #khả năng chống oxi hóa #độc tính tế bàoTài liệu tham khảo
Ìnanç T, Maskan M (2012) The potential application of plant essential oils/extracts as natural preservatives in oils during processing: a review. J Food Sci Eng 2:1–9. doi:10.1007/s11746-013-2351-8
Kähkönen MP, Hopia AI, Vuorela HJ, Rauha J, Pihlaja K, Kujala TS et al (1999) Antioxidant activity of plant extracts containing phenolic compounds. J Agric Food Chem 47(10):3954–3962. doi:10.1021/jf990146l
Rice-Evans CA, Miller NJ, Paganga G (1996) Structure-antioxidant activity relationships of flavonoids and phenolic acids. Free Radical Bio Med 20(7):933–956. doi:10.1016/0891-5849(95)02227-9
Dreher D, Junod AF (1996) Role of oxygen free radicals in cancer development. Eur J Cancer 32(1):30–38. doi:10.1016/0959-8049(95)00531-5
Sayin VI, Ibrahim MX, Larsson E, Nilsson JA, Lindahl P, Bergo MO (2014) Antioxidants accelerate lung cancer progression in mice. Sci Transl Med 6(221):221ra15. doi:10.1126/scitranslmed.3007653
Halliwell B (2012) Free radicals and antioxidants: updating a personal view. Nutr Rev 70(5):257–265. doi:10.1111/j.1753-4887.2012.00476.x
Paini M, Casazza AA, Aliakbarian B, Perego P, Binello A, Cravotto G (2016) Influence of ethanol/water ratio in ultrasound and high-pressure/high-temperature phenolic compound extraction from agri-food waste. Int J Food Sci Tech 51(2):349–358. doi:10.1111/ijfs.12956
Zhishen J, Mengcheng T, Jianming W (1999) The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals. Food Chem 64(4):555–559. doi:10.1016/S0308-8146(98)00102-2
Vicente G, Molina S, González-Vallinas M, García-Risco MR, Fornari T, Reglero G et al (2013) Supercritical rosemary extracts, their antioxidant activity and effect on hepatic tumor progression. J Supercrit Fluid 79:101–108. doi:10.1016/j.supflu.2012.07.006
Re R, Pellegrini N, Proteggente A, Pannala A, Yang M, Rice-Evans C (1999) Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Bio Med 26(9):1231–1237. doi:10.1016/S0891-5849(98)00315-3
Campos LM, Michielin EM, Danielski L, Ferreira SR (2005) Experimental data and modeling the supercritical fluid extraction of marigold (Calendula officinalis) oleoresin. Journal Supercrit Fluid 34(2):163–170. doi:10.1016/j.supflu.2004.11.010
Wiłkomirski B (1985) Pentacyclic triterpene triols from Calendula officinalis flowers. Phytochemistry 24(12):3066–3067. doi:10.1016/0031-9422(85)80062-5
Chalchat J, Garry RP, Michet A (1991) Chemical composition of essential oil of Calendula officinalis L.(pot marigold). Flavour Frag J 6(3):189–192. doi:10.1002/ffj.2730060306
Hamburger M, Adler S, Baumann D, Förg A, Weinreich B (2003) Preparative purification of the major anti-inflammatory triterpenoid esters from marigold (Calendula officinalis). Fitoterapia 74(4):328–338. doi:10.1016/S0367-326X(03)00051-0
Rahimmalek M, Tabatabaei BES, Etemadi N, Goli SAH, Arzani A, Zeinali H (2009) Essential oil variation among and within six Achillea species transferred from different ecological regions in Iran to the field conditions. Ind Crop Prod 29(2):348–355. doi:10.1016/j.indcrop.2008.07.001
Rohloff J, Skagen EB, Steen AH, Iversen T (2000) Production of yarrow (Achillea millefolium L.) in Norway: essential oil content and quality. J Agric Food Chem 48(12):6205–6209. doi:10.1021/jf000720p
Candan F, Unlu M, Tepe B, Daferera D, Polissiou M, Sökmen A et al (2003) Antioxidant and antimicrobial activity of the essential oil and methanol extracts of Achillea millefolium subsp. millefolium Afan. (Asteraceae). J Ethnopharmacol 87(2):215–220. doi:10.1016/S0378-8741(03)00149-1
Bocevska M, Sovová H (2007) Supercritical CO2 extraction of essential oil from yarrow. J Supercrit Fluids 40(3):360–367. doi:10.1016/j.supflu.2006.07.014
Topal U, Sasaki M, Goto M, Otles S (2008) Chemical compositions and antioxidant properties of essential oils from nine species of Turkish plants obtained by supercritical carbon dioxide extraction and steam distillation. Int J Food Sci Nutr 59(7–8):619–634. doi:10.1080/09637480701553816
Schnitzler P, Schuhmacher A, Astani A, Reichling J (2008) Melissa officinalis oil affects infectivity of enveloped herpesviruses. Phytomedicine 15(9):734–740. doi:10.1016/j.phymed.2008.04.018
Vagi E, Simandi B, Suhajda A, Hethelyi E (2005) Essential oil composition and antimicrobial activity of Origanum majorana L. extracts obtained with ethyl alcohol and supercritical carbon dioxide. Food Res Int 38(1):51–57. doi:10.1016/j.foodres.2004.07.006
Benedek B, Kopp B (2007) Achillea millefolium L. sl revisited: recent findings confirm the traditional use. Wien Med Wochenschr 157(13–14):312–314. doi:10.1007/s10354-007-0431-9
Benetis R, Radusiene J, Janulis V (2008) Variability of phenolic compounds in flowers of Achillea millefolium wild populations in Lithuania. Medicina (Kaunas) 44(10):775–781
Vitalini S, Beretta G, Iriti M, Orsenigo S, Basilico N, Dall’Acqua S et al (2011) Phenolic compounds from Achillea millefolium L. and their bioactivity. Acta Biochim Pol 58(2):203–219
Dastmalchi K, Dorman HD, Oinonen PP, Darwis Y, Laakso I, Hiltunen R (2008) Chemical composition and in vitro antioxidative activity of a lemon balm (Melissa officinalis L.) extract. LWT-Food Sci Technol 41(3):391–400. doi:10.1016/j.lwt.2007.03.007
Hossain MB, Camphuis G, Aguiló-Aguayo I, Gangopadhyay N, Rai DK (2014) Antioxidant activity guided separation of major polyphenols of marjoram (Origanum majorana L.) using flash chromatography and their identification by liquid chromatography coupled with electrospray ionization tandem mass spectrometry. J Sep Sci 37(22):3205–3213. doi:10.1002/jssc.201400597
Yesil-Celiktas O, Sevimli C, Bedir E, Vardar-Sukan F (2010) Inhibitory effects of rosemary extracts, carnosic acid and rosmarinic acid on the growth of various human cancer cell lines. Plant Foods Hum Nut 65(2):158–163. doi:10.1007/s11130-010-0166-4
González-Vallinas M, Molina S, Vicente G, de la Cueva A, Vargas T, Santoyo S et al (2013) Antitumor effect of 5-fluorouracil is enhanced by rosemary extract in both drug sensitive and resistant colon cancer cells. Pharmacol Res 72:61–68. doi:10.1016/j.phrs.2013.03.010