Hoạt động kháng plasmodial của các phân đoạn dung môi từ chiết xuất rễ methanol của Dodonaea angustifolia trên chuột nhiễm Plasmodium berghei

Wote Amelo1, Pushpa Nagpal2, Eyassu Makonnen2
1School of Pharmacy, Jimma University, Jimma, Ethiopia
2Department of Pharmacology, College of Health Sciences, Addis Ababa University, Addis Ababa, Ethiopia

Tóm tắt

Sốt rét là một trong những bệnh truyền nhiễm quan trọng nhất trên thế giới. Sự lựa chọn cho điều trị rất hạn chế, và một số loại thuốc có thể bị mất hiệu quả hoặc bị suy giảm do tình trạng kháng thuốc. Việc sử dụng thuốc từ thực vật trong điều trị sốt rét và các biểu hiện khác nhau của nó là một thực hành phổ biến ở nhiều quốc gia châu Phi, nơi mà bệnh này chủ yếu lưu hành. Ở Ethiopia, Dodonaea angustifolia được sử dụng theo truyền thống để phòng ngừa sốt rét. Nghiên cứu hiện tại nhằm đánh giá hoạt động kháng sốt rét của các phân đoạn dung môi từ chiết xuất rễ của D. angustifolia trên chuột nhiễm P. berghei. Trong nghiên cứu này, bài kiểm tra ức chế 4 ngày của Peter được sử dụng để xác định khả năng ức chế ký sinh trùng. Bài kiểm tra độc tính cấp tính cũng được thực hiện trên phân đoạn hoạt động nhất theo hướng dẫn của Tổ chức Hợp tác Kinh tế và Phát triển (OECD) bảng 425. Dữ liệu được phân tích bằng phần mềm Windows SPSS phiên bản 16 và được thể hiện dưới dạng trung bình ± SD cho mỗi mức liều. Phân tích ANOVA kết hợp với kiểm tra Tukey's HSD được sử dụng để so sánh kết quả giữa các nhóm điều trị và kiểm soát. Kiểm tra t của học sinh được sử dụng để kiểm tra ý nghĩa cho sự khác biệt giữa các kết quả ban đầu và cuối cùng trong cùng một nhóm. Tất cả ba phân đoạn cho thấy các mức độ hoạt động kháng plasmodial khác nhau. Phân đoạn n-butanol thể hiện mức độ ức chế tỷ lệ ký sinh trùng tương đối cao nhất (67,51%) với liều uống là 600 mg/kg. Các liều thấp hơn, 200 mg/kg và 400 mg/kg, của phân đoạn này cũng dẫn đến ức chế tỷ lệ ký sinh trùng lần lượt là 38,02% và 55,85%. Hoạt động hóa học ức chế của các phân đoạn chloroform và aq vụn ít hơn so với phân đoạn n-butanol. Cả ba phân đoạn đều thể hiện hoạt động kháng plasmodial đáng kể phụ thuộc vào liều lượng (P < 0.001) so với chứng. Thời gian sống sót được kéo dài trong trường hợp của n-butanol và phân đoạn chloroform. Không có độc tính đối với chuột được thấy với phân đoạn n-butanol cho đến liều 2000 mg/kg. Tất cả ba phân đoạn đều có hoạt động kháng plasmodial đáng kể so với nhóm kiểm soát. Phân đoạn n-butanol được tìm thấy là phân đoạn hoạt động nhất với độc tính tối thiểu và có thể chứa phân tử dẫn xuất tiềm năng cho sự phát triển của một loại thuốc mới điều trị sốt rét.

Từ khóa

#Dodonaea angustifolia #sốt rét #hoạt động kháng plasmodial #phân đoạn dung môi #chuột nhiễm P. berghei

Tài liệu tham khảo

Abdulelah HAA, Hesham MA, Adel AA, Rohela M: Antimalarial activity of methanolic leaf extract of Piper betle L. Molecules. 2011, 16: 107-118.

World Health Organization: World Malaria Report. 2011, Geneva, Switzerland

World Health Organization: World Malaria Report. 2012, Geneva, Switzerland

Nicholas JW: Antimalarial drug resistance. J Clin Invest. 2004, 113: 1084-1092. 10.1172/JCI21682.

World Health Organization: Global Report on Antimalarial Drug Efficacy and Drug Resistance 2000–2010. 2010, Geneva

Tekwani BL, Larry AW: Targeting the hemozoin synthesis for new antimalarial drug discovery: Technologies for invitro β-Hematin formation assay. Comb Chem High throughput Screening. 2005, 8 (1): 63-79. 10.2174/1386207053328101.

Ramazani A, Zakeri S, Sardari S, Astaran Khodakarim N, Djadidt N: In vitro and in vivo anti-malarial activity of Boerhavia elegans and Solanum surattense. Malar J. 2010, 9: 124-10.1186/1475-2875-9-124.

Petros Z: The need of standardized herbal remedies as alternate sources of antimalarial products in Ethiopia - updated review. Pharmacologyonline. 2011, 3: 1440-1447.

Akuodor GC, Usman I, Maryam AN, Odo E, Ugwu CT, Akpan JL, Gwotmut MD, Osunkwo UA: Invivo antimalarial activity of ethanolic leaf extract of Verbena hastate against Plasmodium berghei in mice. J Herb Med Tox. 2010, 4 (2): 17-23.

Ajaiyeoba E, Falade M, Ogbole O, Okpako L, Akinboye D: In vivo antimalarial activity and cytotoxic properties of Annona senegalensis extract. AfrJTradCAM. 2006, 3 (1): 137-141.

Nawal MAM, Ramzi AM, Matheeussen A, Paul PC: In vitro antiplasmodial, antileishmanial and antitrypanosomal activities of selected medicinal plants used in the traditional Arabian Peninsula region. BMC Complement Altern Med. 2012, 12: 49-10.1186/1472-6882-12-49.

Deressa T, Makonnen Y, Animut A: In Vivo anti- malarial activities of Clerodendrum myricoides, Dodonea angustifolia and Aloe debrana against Plasmodium berghei. Ethiop J Health Dev. 2010, 24 (1): 25-29.

Cunningham PL, Joubert DF, Adank W: Dodonaea angustifolia – an alien invasive to the Auas Mountains in Namibia?. Dinteria. 2004, 29: 11-18.

Tesfaye B: Plant Population Dynamics of Dodonaea angustifolia and Olea europaea ssp. cuspidata in Dry Afromontane Forests of Ethiopia. 2000, ACTA Universitatis Upsaliensis Uppsala: Comprehensive Summaries of Uppsala Dissertations from the Faculty of Science and Technology

Anilreddy B: Preparation, characterization and biological evaluation of some overview of Dodonaea Viscosa Linn. J Pharm Sci Technol. 2009, 1 (1): 1-9.

Mengistie B, Makonnen E, Urga K: Invivo antimalarial activity of Dodonaea Angustifolia seed extracts against Plasmodium berghei in mice model. MEJS. 2012, 4 (1): 47-63.

Amabeoku GJ, Eagles P, Scott G, Springfield EP, Mayeng I: Analgesic and antipyretic effects of Dodonaea angustifolia and Salvia africana-lutea. J Ethnopharmacol. 2001, 75 (2/3): 117-124.

Kavita V, Sanjay G: Herbal medicines for sexually transmitted diseases and AIDS. J Ethnopharmacol. 2002, 80: 49-66. 10.1016/S0378-8741(02)00009-0.

Getie A: MSc Thesis. Evaluation of Antimalarial Activity of Seeds of Dodonaea Angustifolia and Leaves of Entada Abyssinica Against Plasmodium Berghei in Swiss Albino Mice. 2010, Addis Ababa University: Biology Department

Tadesse Y: MSc Thesis. Bioactivity Guided Study on the Antimalarial Activities of Clerodendrum Myricoides and Dodonaea Angustifolia. 2011, Addis Ababa University: Department of Biology

David AF, Philip JR, Simon LC, Reto B, Solomon N: Antimalarial drug discovery: efficacy models for compound screening. Nature Rev. 2004, 3: 509-520.

Dikasso D, Makonnen E, Debella A, Abebe A, Urga K, Makonnen W, Melaku D, Kassa M, Guta M: Anti-malarial activity of Withania somnifera L. Dunal in mice Ethiop Med J. 2006, 44 (3): 279-285.

The Organization of Economic Co-operation and Development (OECD): The OECD Guideline for Testing of Chemical 425, Acute Oral Toxicity. 2001, France

Ramalivhana JN, Moyo SR, Obi CL: The possible role of medicinal plants in tackling resistant microbial pathogens in Limpopo Province. South Africa J Med Plants Res. 2010, 4 (11): 999-1002.

Kirandeep K, Meenakshi J, Tarandeep K, Rahul J: Antimalarials from nature. Bioorg Med Chem. 2009, 17: 3229-3256. 10.1016/j.bmc.2009.02.050.

Belay T: MSc Thesis. In Vivo Antimalarial Activity of the Root Extracts and Fractions of Clerodendrum Myricoides in Plasmodium Berghei Infected Mice. 2008, Addis Ababa University: Department of Pharmacology

Alexandru V, Balan M, Gaspar A, Coroiu V: Antioxidant activity, phenolics and flavonoid content of some selected Romanian medicinal plants. Planta Med. 2007, 73 (9): 797-1034.

Odeghe O, Uwakwe A, Monago C: Antiplasmodial activity of methanolic stem bark extract of Anthocleista grandiflora in mice. IJAST. 2012, 2 (4): 142-148.

Mingzhe G, Hongbin X: Activity-guided isolation of antioxidant compounds from Rhizophora apiculata. Molecules. 2012, 17: 10675-10682. 10.3390/molecules170910675.

Tanko Y, Mabrouk MA, Adelaiye AB, Fatihu MY, Musa KY: Anti-diabetic and some haematological effects of ethylacetate and n-butanol fractions of Indigofera pulchra extract on alloxan-induced diabetic Wistar rats. JDE. 2011, 2 (1): 1-7.

Udobre AS, Usifoh CO, Eseyin OA, Udoh AE, Awofisayo OA, Akpan AE: The wound healing activity of methanol extract of the stem bark of Nauclea latifolia. Int J Pharm Biomed Sci. 2012, 3 (3): 136-139.

Kwaghe AV, Ambali AG: Preliminary phytochemical screening of fresh and dried Moringa oleifera leaves and that of chloroform, ethylacetate and n-butanol fractions. AJOL. 2009, 8 (2):

Traore M, Guigemede A, Yago I, Nikiema B, Tinto H, Dakuyo Z, Ouedraogo JG: Investigation of antiplasmodial compounds from two Plants Cochlopermum tinctorium and Gardenia sokotensis. AfrJTradCAM. 2006, 3: 34-41.

Chinchilla M, Guerrero OM, Abarca G, Barrios M, Castro O: An in vivo model to study the anti-malaric capacity of plant extracts. Rev Biol Trop. 1998, 46 (1): 1-7.

Dikasso D, Makonnen E, Debella A, Urga K, Makonnen W, Melaku D: Antimalarials activity of hydroalcoholic extracts from Asparagus africanus Lam. in mice infected with Plasmodium berghei. Ethiop J Health Dev. 2006, 20 (2): 112-118.

The pre-publication history for this paper can be accessed here:http://www.biomedcentral.com/1472-6882/14/462/prepub