Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tiềm năng chống béo phì của Piperonal: điều hòa hứa hẹn về thành phần cơ thể, hồ sơ lipid và sự biểu hiện của các dấu hiệu béo phì ở chuột béo phì do chế độ ăn nhiều chất béo
Tóm tắt
Hạt tiêu đen hay Piper nigrum là một gia vị nổi tiếng, giàu các hợp chất sinh học đa dạng và được sử dụng rộng rãi trong nhiều nền ẩm thực trên toàn thế giới. Trong các hệ thống y học truyền thống của Ấn Độ, nó được sử dụng để điều trị các bệnh về dạ dày và hô hấp. Mục đích của nghiên cứu này là để khảo sát tác động chống tăng lipid máu và chống béo phì của piperonal ở chuột rat bị béo phì do chế độ ăn nhiều chất béo (HFD). Piperonal, một thành phần hoạt chất của hạt Piper nigrum, đã được tách ra và xác nhận bằng HPLC, 1H và 13C NMR. Những con chuột rat đực SD đã được cho ăn chế độ nhiều chất béo trong 22 tuần; Piperonal được bổ sung từ tuần thứ 16 như đã nêu trong thiết kế thí nghiệm. Sự thay đổi về trọng lượng cơ thể và thành phần cơ thể được đo bằng TOBEC, thành phần khoáng xương và mật độ được đo bằng DXA, và sự phân bố mô mỡ được đo bằng 7T-MRI. Mức plasma của glucose, insulin, insulin kháng và hồ sơ lipid của plasma, gan và thận, hormone adipocyte và chất chống oxy hóa của gan được đánh giá bằng các phương pháp kit tiêu chuẩn. Mức độ biểu hiện của các gen sinh lipid và béo phì như PPAR-γ, FAS, Fab-4, UCP-2, SREBP-1c, ACC, HMG-COA và TNF-α được đo bằng RT-PCR. Khám nghiệm mô bệnh học của mô mỡ và gan cũng được thực hiện trên chuột thí nghiệm. HFD đã làm tăng đáng kể trọng lượng cơ thể, phần trăm mỡ, kích thước adipocyte, hồ sơ lipid tuần hoàn và mô. Nó làm tăng mức insulin của plasma, kháng insulin và leptin nhưng làm giảm mức adiponectin, BMC và BMD. Sự biểu hiện tăng của PPAR-γ, FAS, Fab-4, UCP-2, SREBP-1c, ACC và TNF-α được quan sát thấy ở những con chuột ăn HFD. Tuy nhiên, việc bổ sung piperonal (20, 30 và 40 mg/kg khối lượng cơ thể) trong 42 ngày làm giảm đáng kể và theo liều lượng các thay đổi gây ra bởi HFD, với tác dụng điều trị tối đa được quan sát thấy ở liều 40 mg/kg khối lượng cơ thể. Piperonal đã làm giảm đáng kể trọng lượng cơ thể và các thay đổi sinh hóa do HFD gây ra thông qua việc điều chỉnh các gen chuyển hóa lipid chủ chốt và gen gây béo phì. Những phát hiện của chúng tôi chứng minh hiệu lực của piperonal như một tác nhân chống béo phì mạnh mẽ, cung cấp bằng chứng khoa học cho việc sử dụng truyền thống của nó và đề xuất cơ chế hoạt động có thể xảy ra.
Từ khóa
#Piperonal #béo phì #lipid #chuột rat #chế độ ăn nhiều chất béoTài liệu tham khảo
Hotamisligil GS, Erbay E. Nutrient sensing and inflammation in metabolic disease. Nat Rev Immunol. 2008;8(12):9232–4.
Balaji M, Ganjayi MS, Hanuma Kumar GE, Parim BN, Mopuri R, Dasari SA. Review on possible therapeutic targets to contain obesity: the role of phytochemicals. Obes Res Clin Pract. 2016;10(4):363–80.
Spiegelman BM, Flier JS. Obesity and the regulation of energy balance. Cell. 2001;104(4):531–43.
Foufelle F, Ferre P. New perspectives in the regulation of hepatic glycolytic and lipogenic genes by insulin and glucose: a role for the transcription factor SREBP-1c. Biochem J. 2002;366:377–91.
OECD obesity Update 2014: ww.oecd.org/health/obesity-update.html.
Boissonneault GA. Obesity: the current treatment protocols. JAAPA. 2009;22:18–9.
Gopalan C. The changing nutrition scenario. Indian J Med Res. 2013;138(3):392–7.
Jia H, Lubetkin EI. Obesity related quality adjusted life years in lost in the U.S. from 1993 to 2008. Am J Prev Med. 2010;39(3):220–7.
Gonzalez-Castejon M, Rodriguez-Casado A. Dietary phytochemicals and their potential effects on obesity: a review. Pharmacol Res. 2011;64(5):438–55.
Vermaak I, Viljoen AM, Hamman JH. Natural products in antiobesity therapy. Nat Prod Rep. 2011;28(9):1493–533.
Wang S, Moustaid-Moussa N, Chen L, Mo H, Shastri A, Su R, Bapat R, Kwun I, Shen CL. Novel insights of dietary polyphenols and obesity. J Nutr Biochem. 2014;25(1):1–18.
Brahma Naidu P, Uddandrao VV, Ravindar Naik R, Suresh P, Meriga B, Begum MS, Pandiyan R, Saravanan G. Ameliorative potential of gingerol: Promising modulation of inflammatory factors and lipid marker enzymes expressions in HFD induced obesity in rats. Mol Cell Endocrinol. 2016;419:139–47.
Kliewer SA, HE W, Lambert MH, Willson TM. Peroxisome proliferator activated receptors: from genes to physiology. Recent Prog Horm Res. 2001;56:239–63.
Seo JB, Moon HM, Noh MJ, Lee YS, Jeong HW, Yoo EJ, Kim WS, Park J, Youn BS, Kim JW, Park SD, Kim JB. Adipocyte determination and differentiation dependent factor1/sterol regulatory element binding protein 1c regulates mouse adiponectin expression. J Biol Chem. 2002;279(21):22108–17.
Christodoulides C, Vidal-Pulg APPAR. Adipocyte function. Mol Cell Endocrinol. 2010;318(1–2):61–8.
Stienstra R, Duval C, Mullaer M, Kersten SPPAR. Obesity, and inflammation. PPAR Res. 2007:95974.
Berger J, Moller DE. The mechanisms of action of PPARs. Annu Rev Med. 2002;53:409–35.
Lenhard JM. Lipogenic enzymes as therapeutic targets for obesity and diabetes. Curr Pharm Des. 2011;17(4):325–31.
Butt MS, Pasha I, Sultan MT, Randhawa MA, Saeed F, Ahmed W. Black pepper and health claims: a comprehensive treatise. Crit Rev Food Sci Nutr. 2013;53(9):875–86.
Samykutty A, Shetty AV, Dakshinamoorthy G, Bartik MM, Johnson GL, Webb B, Zheng G, Chen A, Kalyanasundaram R, Munirathinam G. Piperine, a bioactive component of pepper spice exerts therapeutic effects on androgen dependent and androgen independent prostate cancer cells. PLoS One. 2013;8(6):e65889.
Santiago VS, Alvero RG, Vilasenor IM. Aedes Aegypti larvivide from the ethanolic extract of Piper nigrum black peppercorns. Nat Prod Res. 2015;29(5):441–3.
Chonpathompikunlert P, Wattanathorn J, Muchimapura S. Piperine: the main alkaloid of Thai black pepper, protects against neurodegenration and cognitive impairment in animal model of cognitive deficit like condition of Alzheimer’s disease. Food Chem Toxicol. 2010;48(3):798–802.
Srinivasan K, Patole PS, Kaul C, Ramarao P. Reversal of glucose intolerance by pioglitazone in high fat diet fed rats. Exp. Clin Pharmacol. 2004;26(5):327–33.
Meghwal M, Goswami TK. Piper nigrum and piperine: an update. Phytother Res. 2013;8:1121–30.
Li X, Choi Y, Yanakawa Y, Park T. Piperonal prevents high fat diet induced hepatic steatosis and insulin resistance in mice via activation of adiponectin/AMPK pathway. Int J Obes. 2014;38(1):140–7.
BrahmaNaidu P, Nemani H, Meriga B, Mehar SK, Pothana S, Ramgopalarao S. Mitigating efficacy of piperine in the physiological derangements of high fat diet induced obesity in Sprague dawley rats. Chem Biol Interact. 2014;221:42–51.
Rao VR, Raju SS, Sarma VU, Sabine F, Babu KH, Babu KS, Rao JM. Simultaneous determination of bioactive compounds in Piper nigrum L. and a species comparision study using HPLC-PDA. Nat Prod Res. 2011;25(13):1288–94.
Morbach CA, Brans YW. Determination of body composition in growing rats by total body electrical conductivity. J Pedia Gastro Nutr. 1992;14:2873–92.
Montero M, Diaz-Curiel M, Guede D, Caeiro JR, Martin-Fernandez M, Rubert M, Navarro D, De la Piewdra C. Effect of Kalsis, a dietary supplement, on bone metabolism in the ovariectomized rats. J Osteopros 2012: 639427.
Floch J, Lees M, Sloane Stanley GHA. Simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. J Biol Chem. 1957;226(1):497–509.
Taylor BA, Phillips SJ. 1996. Detection of obesity QTLs on mouse chromosomes 1 and 7 by selective DNA pooling. Genomics. 1996;34(3):389–98.
Fraga CG, Leibouitz BE, Toppel AL. Lipid peroxidation measured as TBARS in tissue slices: characterization and comparison with homogenates and microsomes. Free Radic Biol Med. 1988;4(3):155–61.
Aebi H. Catalase in vitro. Meth Enzymol. 1984;105:121–6.
Ellman GL. Tissue sulfhydryl groups. Arch Biochem Biophys. 1959;82:70–7.
Kakkar B, Das P, Viswanathan N. A modified spectrophotometric assay of SOD. Ind J Biochem Biophy. 1984;21:130–2.
Paglia D, Valentine W. Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte glutathione peroxidase. J Lab Clin Med. 1967;70:158.169.
Esser N, Legrand-Poels S, Scheen AJ, Paquot N. Inflammation as a link between obesity, metabolic syndrome and type 2 diabetes. Diab Res Clin Pract. 2014;105(2):141–50.
Uma B, Vinay K, Naresh K. The effect of high fat diet induced obesity on cardiovascular toxicity in wistar albino rats. Hum Exp Toxicol. 2011;30(9):1313–21.
Kyung JK, Myoung-Su L, Keunae J. Piperonal alkaloids from Piper Retrofractum Piper Retrofractum Vahl. Protect against high fat diet induced obesity by regulating lipid metabolism and activating AMP-activated protein kinase. Bioche Biophys Res Commun. 2011;411:219–25.
Colditz GA, Willett WC, Stampfer MJ, Manson JE, Hennekens CH, Arky RA, Speizer FE. Weight as a risk factor for clinical diabetes in women. Am J Epidemilo. 1990;132(3):510–3.
Despina H, Antoine Diane V. Populus balsamifera L. (Salicaceae) mitigates the development of obesity and improves insulin sensitivity in a diet-induced obese mouse model. J Ethnopharmacol. 2012;141(3):1012–20.
Floh B, Floh R. Basic principles and emerging concepts in the redox control of transcription factors. Antioxid Redox Signal. 2011;15:2335–81.
Parim B, Harishankar N, Balaji M, Pothana S, Sajjalaguddam RR. Effects of Piper Nigrum extracts: restorative perspectives of high fat diet induced changes on lipid profile, body composition, and hormones in Sprague-dawley rats. Pharmaceutical Biol. 2015;53(9):1318–28.
Srinivasan K. Black pepper and its pungent principle piperine: a review of diverse physiological effects. Crit Rev Food Sci. 2007;47(8):735–48.
Sung YY, Yoon T, Kyang W. Anti-obesity effects of Geranium Thunbergii extract via improvement of lipid metabolism in high-fat diet-induced obese mice. Mol Med Rep. 2011;4:1107–13.
Staiger H, Haring HU. Adipocytokines: fat-derived humoral mediators of metabolic homeostasis. Exp Clin Endocrinol Diabetes. 2005;113(2):67–79.
Saravanan G, Ponmurugan P, Deepa MA, Senthilkumar B. Anti-obesity action of gingerol: effect on lipid profile, insulin, leptin, amylase and lipase in male obese rats induced by a high-fat diet. J Sci food Agri. 2014;94(14):2972–7.
Magana MM, Osborne TF. Two tandem binding sites for sterol regulatory element binding proteins are required for sterol regulation of fatty-acid synthase promoter. J Biol Chem. 1996;271:32689–94.