Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Sàng lọc chống tiêu chảy của cây ăn được vùng Himalaya Begonia rubrovenia và dấu ấn của nó được xác thực thông qua phân tích tính toán
Tóm tắt
Tiêu chảy đã trở thành một trong những vấn đề chính đáng lo ngại do tỷ lệ tử vong cao, khiến nó trở thành nguyên nhân gây chết người lớn thứ hai trên thế giới. Để khám phá hiệu quả của cây thuốc, nghiên cứu hiện tại đã được thực hiện để minh chứng một cách khoa học cho tuyên bố truyền thống về chiết xuất rễ ethanolic của cây Begonia rubrovenia (EBV) chống lại tiêu chảy. EBV đã được chuẩn hóa bằng HPLC với quercetin là dấu ấn và được tiến hành nghiên cứu thải phân bình thường với liều 100, 200 và 300 mg/kg, đường uống (p.o.) cùng với quercetin và loperamide. Nghiên cứu đã xác nhận hiệu quả của EBV ở liều 200 và 300 mg/kg, tiếp theo là quercetin. Trong mô hình chuột bị tiêu chảy do dầu thầu dầu, EBV ở liều 200 và 300 mg/kg đã làm chậm đáng kể thời gian khởi phát tiêu chảy, giảm lượng phân tiêu chảy, góp phần vào tỷ lệ bảo vệ cao hơn. Hiệu quả của EBV ở liều 200 mg/kg cũng đã được xác nhận thông qua các thử nghiệm động học tiêu hóa, tích lũy dịch và thử nghiệm tích tụ ruột được kích thích bởi PGE2. EBV và dấu ấn của nó là quercetin cũng đã giảm mức tăng cao của NO và cytokine và phục hồi các thay đổi trong enzym chống oxi hóa, ion và tăng cường hoạt động của Na+/K+–ATPase. Nghiên cứu phân tử docking, động học và dược lý mạng đã xác nhận vai trò của quercetin trong việc điều chỉnh các chất trung gian viêm IL-1β, TNF-α và thụ thể prostanoid EP3, trong đó quercetin tạo thành phức hợp ổn định hơn với thụ thể prostanoid EP3. Nghiên cứu đã xác minh một cách khoa học việc sử dụng truyền thống cây B. rubrovenia trong việc điều trị tiêu chảy, trong đó quercetin đóng vai trò quan trọng trong tiềm năng chống tiêu chảy quan sát được của B. rubrovenia, góp phần duy trì cân bằng điện giải, trạng thái chống oxi hóa và ức chế các chất trung gian viêm.
Từ khóa
#tiêu chảy; cây thuốc; Begonia rubrovenia; quercetin; HPLC; cytokine; Na+/K+–ATPase; nghiên cứu phân tửTài liệu tham khảo
da Costa DS, dos Santos Negreiros P, da Silva VG, Nunes DB, Acha BT, Quintans-Junior LJ, de Souza Araújo AA, Araújo TDSL, de Melo Sousa FB, Medeiros JVR, Lima FDCA (2020) Antidiarrheal activity of farnesol in rodents: pharmacological actions and molecular docking. Eur J Pharmacol 874:172986
Birru EM, Asrie AB, Adinew GM, Tsegaw A (2016) Antidiarrheal activity of crude methanolic root extract of Idigofera spicata Forssk (Fabaceae). BMC Complement Altern Med 16(272):1–7
Pessoa MMB, Neto HD, de Oliveira LE, Batista LM (2020) Antifungal activity and antidiarrheal activity via antimotility mechanisms of (-)-fenchone in experimental models. World J Gastroenterol 26(43):6795–6809
UNICEF (2015) Geneva: prevention and control of cholera outbreaks: Who policy and recommendations. pp. 90–115
Greenland K, Chipungu J, Chilengi R, Curtis V (2016) Theory-based formative research on oral rehydration salts and zinc use in Lusaka, Zambia. BMC Public Health 16:312. https://doi.org/10.1186/s12889-016-2984-2
Wu PE, Juurlink DN (2017) Clinical review: loperamide toxicity. Ann Emerg Med 70:245–252. https://doi.org/10.1016/j.annemergmed.2017.04.008. (PMID: 28506439)
Zarghami M, Rezapour M (2017) Loperamide dependency: a case report. Addict Health 9:59–63 (PMID: 29026504)
Kumari A, Baskaran P, Staden JV (2017) In vitro regeneration of Begonia homonyma—a threatened plant. S Afr J Bot 109:174–177
Jaiswal (2010) Culture and ethnobotany on Jaintia tribal community of Meghalaya Northeast India—a mini review. Indian J Tradit Knowl 9:38–44
Kayang H (2007) Tribal knowledge on wild edible plants of Meghalaya, Northeast India. Indian J Tradit Knowl 6:177–181
Laloo D, Hemalatha S (2011) Ethnomedicinal plants used for diarrhea by tribals of Meghalaya, Northeast India. Pharmacogn Rev 5:147–154
Prasad RS, Dhaswadikar SR, Laloo D, Dhobi M, Itankar PR, Prasad SK (2022) Quality control profiling, nutritional analysis and phytochemical standardization of a vegetable root Begonia roxburghii. Vegetos. https://doi.org/10.1007/s42535-022-00446-8
Trease GE, Evans WC (2002) Pharmacognosy. W.B. Saunders Company Ltd., Elsevier Publication, London
Hirudkar JR, Parmar KM, Prasad RS, Sinha SK, Lomte AD, Itankar PR, Prasad SK (2020) The antidiarrhoeal evaluation of Psidium guajava L. against enteropathogenic Escherichia coli induced infectious diarrhoea. J Ethnopharmacol 251:112561
Prasad SK, Laloo D, Kumar M, Hemalatha S (2013) Antidiarrhoeal evaluation of root extract, its bioactive fraction and lupinifolin isolated from Eriosema chinense. Planta Med 79:1620–1627
Christudas S, Duraipandiyan V, Agastian P, Ignacimuthu S (2013) Antidiabetic effect of plumbagin isolated from Plumbago zeylanica L. root and its effect on GLUT4 translocation in streptozotocin-induced diabetic rats. Food Chem Toxicol 50:4356–4363
Tangpu V, Yadav AK (2004) Antidiarrhoeal activity of Rhus javanica ripen fruit extract in Albino mice. Fitoterapia 75:39–44
Adeyemi OO, Akindele AJ, Ogunleye EA (2009) Evaluation of the antidiarrhoeal effect of Sanseviera liberica gerome & Labroy (Agavaceae) root extract. J Ethnopharmacol 123:459–463
Prasad RS, Yenorkar NY, Dhaswadikar SR, Sinha SK, Rai N, Sharma P, Kulkarni O, Kumar N, Dhobi M, Laloo D, Gurav SS, Itankar PR, Prasad SK (2023) A systematic antidiarrhoeal evaluation of a vegetable root Begonia roxburghii and its marker flavonoids against nonpathogenic and pathogenic diarrhoea. Food Biosci 53:102672
Rao CV, Vijayakumar M, Sairam K, Kumar V (2008) Antidiarrhoeal activity of the standardized extract of Cinnamomum tamala in experimental rats. J Nat Med 62:396–402
Gal-Garber O, Mabjeesh SJ, Sklan D, Uni Z (2003) Nutrient transport in the small intestine: Na+, K+-ATPase expression and activity in the small intestine of the chicken as influenced by dietary sodium. Poult Sci 82:1127–1133
Parmar KM, Bhagwat DS, Sinha SK, Katare NT, Prasad SK (2019) The potency of eriosematin E from Eriosema chinense Vogel. against enteropathogenic Escherichia coli induced diarrhoea using preclinical and molecular docking studies. Acta Trop 193:84–91
Green LC, Wagner DA, Glogowski J, Skipper PL, Wishnok JS, Tannenbaum SR (1982) Analysis of nitrate, nitrite, and [15N] nitrate in biological fluids. Anal Biochem 126:131–138
Yemm EW, Willis AJ (1954) The estimation of carbohydrates in plant extracts by Anthrone. Biochem J 57:508–514
Burton K (1956) A study of the conditions and mechanism of the diphenylamine reaction for the colorimetric estimation of deoxyribonucleic acid. Biochem J 62:315–323
Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr AL, Randall RT (1951) Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem 193:265–276
Laloo D, Prasad SK, Sairam K, Hemalatha S (2013) Gastroprotective activity of ethanolic root extract of Potentilla fulgens wall. Ex Hook J Ethnopharmacol 148:505–514
Johari S, Sharma A, Sinha S, Das A (2019) Integrating pharmacophore mapping, virtual screening, density functional theory, molecular simulation towards the discovery of novel apolipoprotein (apoE ε4) inhibitors. Comput Biol Chem 79:83–90
Lin CH, Chang TT, Sun MF, Chen HY, Tsai FJ, Chang KL, Fisher M, Chen CYC (2011) Potent inhibitor design against H1N1 swine influenza: structure-based and molecular dynamics analysis for M2 inhibitors from traditional Chinese medicine database. J Biomol Struct Dyn 28(4):471–482
Szklarczyk D, Morris JH, Cook H, Kuhn M, Wyder S, Simonovic M, Santos A, Doncheva NT, Roth A, Bork P, Jensen LJ, von Mering C (2017) The STRING database in 2017: quality-controlled protein–protein association networks, made broadly accessible. Nucleic Acids Res 45:D362–D368
Shannon P (2003) Cytoscape: a software environment for integrated models of biomolecular interaction networks. Genome Res 13:2498–2504
dos Santos Negreiros P, da Costa DS, da Silva VG, de Carvalho Lima IB, Nunes DB, de Melo Sousa FB, Araújo TDSL, Medeiros JVR, Dos Santos RF, Oliveira RDCM (2019) Antidiarrheal activity of α-terpineol in mice. Biomed Pharmacother 110:631–640
Tagne MAF, Akaou H, Noubissi PA, Fondjo AF, Rékabi Y, Wambe H, Kamgang R, Oyono JE (2019) Effect of the hydroethanolic extract of Bixa orellana Linn (Bixaceae) leaves on castor oil-induced diarrhoea in Swiss albino mice. Gastroenterol Res Pract 2019:6963548
Ma YL, Wu ZM, Liu X, Lan JE, Zai WJ, Jin X, Xie H, Mu Q, Hong-Rui Liu HR (2022) Antidiarrheal activity of the extracts of Valeriana jatamansi Jones on castor oil-induced diarrhoea mouse by regulating multiple signal pathways. J Ethnopharmacol 298:115560
Vanjari H, Mohan MM, Saudagar P, Guthal G, Dalvi M (2020) Protective effect of SKB Gutbiotic against castor oil and E. coli induced diarrohea in laboratory animals. Microb Pathog 143:104078
Prasad SK, Parmar KM, Danta CC, Laloo D, Hemalatha S (2017) Antidiarrhoeal activity of eriosematin E isolated from the roots of Eriosema chinense Vogel. Phytomedicine 24:127–133
Mesaik AM, Poh HW, Bin OY, Elawad I, Alsayed B (2018) In vivo anti-inflammatory, anti-bacterial and anti-diarrhoeal activity of Ziziphus Jujuba fruit extract. Open Access Maced J Med Sci 6:757–766
Ahmad I, Alotaibi BS, Malak N, Asad F, Ullah B, Nasreen N, Khan A, Chen CC (2023) Antidiarrheal potential of Viola canescens: in vivo and in silico approaches. Pharmaceuticals 16:489. https://doi.org/10.3390/ph16040489