Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Hoạt tính chống tiêu chảy của chiết xuất methanol 80% từ phần trên mặt đất của Ajuga remota Benth (Lamiaceae) ở chuột
Tóm tắt
Trong y học truyền thống Ethiopia, phần trên mặt đất của Ajuga remota Benth được sử dụng trong điều trị tiêu chảy. Có nhiều cơ chế mà Ajuga remota có thể mang lại tác động chống tiêu chảy. Một số cơ chế khả dĩ bao gồm hoạt động trị sán và kháng khuẩn. Nghiên cứu hiện tại nhằm đánh giá xem tác dụng chống tiêu chảy của cây có bao gồm cả tác động chống co bóp và chống bài tiết hay không, bằng cách sử dụng chiết xuất methanol 80% của A. remota (MEAR). MEAR được dùng qua đường uống với liều 200, 400, 600 và 800 mg/kg cho bốn nhóm chuột (sáu con mỗi nhóm) trong mô hình tiêu chảy do dầu thầu dầu. Tác động của chiết xuất trên việc tích tụ dịch ruột và mô hình vận chuyển đường tiêu hóa cũng được đánh giá với cùng nhóm và liều dùng. Hai nhóm khác, một nhóm làm đối chứng và một nhóm tiêu chuẩn (loperamide 5 mg/kg) được sử dụng để so sánh với các nhóm điều trị. Chiết xuất ở các liều 400, 600 và 800 mg/kg đã tạo ra sự ức chế có ý nghĩa phụ thuộc vào liều lượng cả về tần suất và khởi phát tiêu chảy. Tỷ lệ tần suất tẩy xổ lần lượt là 53,4%, 66,7%, 79,6% và 66,7% (p < 0,001) tại ba liều MEAR (400, 600 và 800 mg/kg) và với loperamide (5 mg/kg). Tỷ lệ ức chế tích tụ dịch trong ruột lần lượt là 42,5%, 62,1% và 74,2% (p < 0,001) ở các liều 400, 600 và 800 mg/kg của MEAR. MEAR cũng đã ức chế quá trình vận chuyển thức ăn trong ruột ở các mức độ phụ thuộc vào liều cả trong điều kiện bình thường và trong mô hình vận chuyển ruột bị tác động bởi dầu thầu dầu. Nghiên cứu này đã chỉ ra rằng chiết xuất methanol 80% từ A. remota chứa các chất có hoạt tính sinh học với tác động chống co bóp và chống bài tiết có ý nghĩa, góp phần vào hoạt tính chống tiêu chảy của nó.
Từ khóa
#Ajuga remota #chiết xuất methanol #hoạt tính chống tiêu chảy #mô hình chuột #tác động chống co bóp #tác động chống bài tiếtTài liệu tham khảo
Regassa R. Assessment of indigenous knowledge of medicinal plant practice and mode of service delivery in Hawassa city, southern Ethiopia. J Med Plant Res. 2013;7(9):517–35.
Najmur RMA, Muhammad R, Mehjabeen, Noor J, Rizwan A. Phytochemical, antimicrobial, insecticidal and brine shrimp lethality bioassay of the crude methanolic extract of Ajuga parviflora Benth. Pak J Pharm Sci. 2013;26:751–6.
Palombo EA. Review article; phytochemicals from traditional medicinal plants used in the treatment of diarrhea: modes of action and effects on intestinal function. Phytother Res. 2006;20:717–24.
Kuria KAM, De Coster S, Muriuki G, Masengo W, Kibwage I, Hoogmartens J. Antimalarial activity of Ajuga remota Benth (labiatae) and Caesalpinia volkensii harms (Caesalpiniaceae): in vitro confirmation of ethnopharmacological use. J Ethnopharmacol. 2001;74:141–8.
Parvez N, Yadav S. Ethnopharmacology of single herbal preparations of medicinal plants in Asendabo district, Jimma, Ethiopia. Indian J Traditional Med. 2010;9(4):724–9.
Hedberg I, Kelbessa E, Edwards S, Demissew S, Person E. Flora of Ethiopia and Eritrea: gentianaceae to cyclocheilaceae (volume 5). Addis Ababa, Uppsala: Addis Ababa University; 2006.
Kubo I, Lee YW, Balogh-Nair V, Nakanish K, Chapya A. Structure of ajugarins. J Chem Soc Chem Commun. 1976;949–50.
Manguro LOA, Ogur JA, Okora DM, Wagai SO, Lemmen P. Further flavonol and iridoid glycosides from Ajuga remota aerial parts. J Asian Nat Prod Res. 2007;9(7):617–29.
Manguro LOA, Lemmen P, Hao P. Iridoid glycosides from underground parts of Ajuga remota. Rec Nat Prod. 2011;5(3):147–57.
Israili ZH, Lyoussi B. Ethnopharmacology of the plants of genus Ajuga. Pak J Pharm Sci. 2009;22(4):425–62.
Hailu W, Engidawork E. Evaluation of the diuretic activity of the aqueous and 80% methanol extracts of Ajuga remota Benth (Lamiaceae) leaves in mice. BMC Complement Altern Med. 2014;14(135):1–8.
Pascaline J, Charles M, Lukhoba C, George O. Phytochemical constituents of some medicinal plants used by the Nandis of South Nandi District, Kenya. J Animal Plant Sci. 2011;9(3):1201–10.
Makonnen E, Debella A, Abebe D, Teka F. Analgesic properties of some Ethiopian medicinal plants in different models of nociception in mice. Phytother Res. 2003;17:1108–12.
Asres K, Bucar F, Kartnig T, Witvrouw M, Pannecouque C, De Clercq E. Antiviral activity against human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) and type 2 (HIV-2) of Ethnobotanically selected Ethiopian medicinal plants. Phytother Res. 2001;15:62–9.
Nasser I, Getachew M, Tesfaye B, Mudiey K, Teka F. Anti-oxidant activity of 80% methanol extracts from Clerodendron myricoides, Satureja punctata, Urtica dioica, Ajuga remota and Gnidia stenophylla. Revista CENIC. Ciencias Biológicas. 2010;41:17.
Wagate CG, Mbaria JM, Gakuya DW, Nanyingi MO, Kareru PG, Njuguna A, et al. Screening of some Kenyan medicinal plants for antibacterial activity. Phytother Res. 2010;24:150–3.
Vogel HG, Vogel WH, Scholkens BA, Sandow J, Muller G, Vogel WF. Drug discovery and evaluation: pharmacological assays. 2nd ed. Berlin: Springer-Verlag Heidelberg; 2002.
Yadav AK, Tangpu V. Antidiarrheal activity of Lithocarpus dealbata and Urena lobata extracts:therapeutic implications. Pharm Biol. 2007;45(3):223–9.
Maxwell EI, Ihechiluru EI, Kelechi MG, Nkiru UE, Iheanacho UA, Stella AC, et al. Antidiarrheal activity of Pterocarpus erinaceus methanol leaf extract in experimentally-induced diarrhea. Asian Pac J Trop Med. 2012;20:147–50.
Bakare RI, Magbagbeola OA, Akinwande AI, Okunowo OW, Green M. Antidiarrhoeal activity of aqueous leaf extract of Momordica charantia in rats. J Pharmacogn Phytother. 2011;3(1):1–7.
Shakuntala, Bharti P, Sachan N, Chandra P, Gahlot K. Evaluation of antidiarrhoeal activity of extract from roots of Rumex hastatus (family: Polygonaceae) on experimental animals. J Appl Pharm Sci. 2011;1(6):182–5.
Al-Taher AY. Possible antidiarrhoeal effect of the date palm (Phoenix Dactylifera L) spathe aqueous extract in rats. Sci J King Faisal University (Basic and Applied Sciences). 2008;9(1):131–8.
Hussain Z, Amresh G, Singh S, Rao CV. Antidiarrheal and antiulcer activity of Amaranthus spinosus in experimental animals. Pharm Biol. 2009;47(10):932–9.
Iqbal PJ. Phytochemical screening of certain plant species of Agra city. J Drug Deliv Ther. 2012;2(4):135–8.
Trease GE, Evans WC. A textbook of pharmacognosy. 14th ed. London: Bailliere Tindall Ltd; 1996.
Meite S, N’guessan JD, Bahi C, Yapi HF, Djaman AJ, Guede Guina F. Antidiarrheal activity of the ethyl acetate extract of Morinda morindoides in rats. Trop J Pharm Res. 2009;8(3):201–7.
Islam AMT, Uddin ME, Chowdhury MAU, Rahman MM, Habib MR, Rahman MA. In vivo Antidiarrheal and cytotoxic potential of different fractions of Pandanus Foetidus leaves. Am J Biomed Sci. 2013;5(3):208–16.
Karimulla S, Kumar BP. Pharmacological studies on anti-diarrhoeal activity of Morinda citrifolia (L.) in experimental animals. Int J Exp Pharmacol. 2011;1(1):12–6.
Mein EA, Richards DG, McMillin DL, Nelson CD. Transdermal absorption of castor oil. Evidence Based Integrative Med. 2005;2(4):239–44.
Rode MS, Kalaskar MG, Gond NY, Surana SJ. Evaluation of Antidiarrheal activity of diospyros malabarica bark extract. Bangladesh J Pharmaco. 2013;8:49–53.
Sarin RV, Bafna PA. Herbal antidiarrhoeals: a review. Int J Res Pharmaceut Biomed Sci. 2012;3:637–49. ISSN: 2229–3701.
Bhyrapur Mathad VS, Chandanam S, Thirumala Setty SR, Ramaiyan D, Veeranna B, Lakshminarayanasettry ABV. Antidiarrheal evaluation of Benincasa hispida (thunb.) cogn. Fruit extracts. IJPT. 2005;4:24–7.
Awouters F, Niemegeers CJE, Lenaerts FN, Janscen PA. Delay of castor Oil diarrhea in rats: a New Way to evaluate inhibitors of prostaglandin biosynthesis. J Pharm Pharmacol. 1978;30:41–5.
Brun IY, Wang XP, Willemot J, Sevenet T, Demenge P. Experimental study of Antidiarrheal activity of Salicairine. Fundam Clin Pharmacol. 1998;12:30–60.
Ezenwali MO, Njoku OU, Okoli CO. Studies on the Antidiarrheal properties of seed extract of Monodora tenuifolia. Int J Appl Res Nat Products. 2010;2:20–6.
Pandey P, Mehta A, Hajra S. Antidiarrhoeal activity of ethanolic extracts of Ruta graveolens leaves and stem. Asian J Pharm Clin Res. 2012;5(4):65–8.
Agbon AN, Kwaneshie HO, Hamman WO. Antidiarrheal activity of aqueous fruit extract of Phoenix dactylifera (DATE PALM) in Wistar rats. Br J Pharmacol Toxicol. 2013;4(3):121–7.
Gilani AH, Rehman N, Malik, Mehmood MH, Alkharfy KM. Species differences in the Antidiarrheal and antispasmodic activities of Lepidium sativum and insight into underlying mechanisms. Phytother Res. 2013;27:1086–94.
Pramod PS, Vishnu AN. Evaluation of anti-diarrheal activity of Ficus Glomerata in castor Oil induced diarrhoea in rats. J Mar Sci. 2011;1(1):26–30.