Tính chất chống oxi hóa và chống viêm của các chiết xuất methanol từ các loại cây trồng khác nhau

Springer Science and Business Media LLC - Tập 22 - Trang 265-272 - 2013
Jung-Min Hwang1,2, Ki-Choon Choi3, Sung-Jun Bang1, Young-Ok Son4, Beom-Tae Kim1, Dong-Hern Kim4, Gi Jun Choi3, Da Hye Kim3, Xianglin Shi4, Jeong-Chae Lee1,2
1Research Center of Bioactive Materials, Chonbuk National University, Jeonju, Jeonbuk, Korea
2Institute of Oral Biosciences and BK21 Program, Chonbuk National University, Jeonju, Jeonbuk, Korea
3Grassland and Forages Research Center, National Institute of Animal Science, Cheonan, Chungnam, Korea
4Graduate Center for Toxicology, College of Medicine, University of Kentucky, Lexington, USA

Tóm tắt

Ngô, cao lương, đại mạch, cỏ Nhật Bản (IRG) và cỏ linh lăng đã được sử dụng lâu đời trong chế độ ăn uống của con người và/hoặc động vật. Trong khi thông tin dinh dưỡng của chúng có sẵn rộng rãi, tiềm năng của chúng trong việc chống oxi hóa, chống viêm và chống khối u còn chưa được khám phá nhiều. Trong nghiên cứu hiện tại, một số chiết xuất tuần tự đã được chuẩn bị từ các chiết xuất 70% methanol của các loại cây thức ăn này và tiềm năng sinh học của chúng đã được nghiên cứu thông qua các hệ thống thử nghiệm không tế bào và tế bào. Các chiết xuất chloroform trong nghiên cứu này nói chung cho thấy hoạt động mạnh mẽ hơn trong việc quét các gốc hydroxyl và anion siêu oxit hơn so với các chiết xuất butanol hoặc nước. Các chiết xuất chloroform từ IRG và cao lương đặc biệt gần như hoàn toàn ức chế sản xuất oxide nitric trung gian bởi lipopolysaccharide, yếu tố hoại tử khối u-α, và interleukin-6. Những chiết xuất này cũng ức chế mạnh mẽ tính sống sót và tổng hợp DNA của các tế bào dermatofibrosarcoma ở da người mà không có tác hại độc hại đối với các tế bào kiểm soát nuôi cấy ban đầu. Những tác động có lợi này dường như có liên quan đến lượng flavonoid có trong các chiết xuất.

Từ khóa

#chống oxi hóa #chống viêm #chiết xuất methanol #ngô #cao lương #đại mạch #cỏ Nhật Bản #cỏ linh lăng

Tài liệu tham khảo

Mates JM, Sanchez-Jimenez FM. Role of reactive oxygen species in apoptosis: Implications for cancer therapy. Int. J. Biochem. Cell Biol. 32: 157–170 (2000) Gandhi S, Abramov AY. Mechanism of oxidative stress in neurodegeneration. Oxid. Med. Cell Longev. 2012: 428010 (2012) Lee JC, Son YO, Pratheeshkumar P, Shi X. Oxidative stress and metal carcinogenesis. Free Radical Bio. Med. 53: 742–757 (2012) Rice-Evans CA, Miller NJ, Bolwell PG, Bramley PM, Pridham JB. The relative antioxidant activities of plant-derived polyphenolic flavonoids. Free Radical Res. 22: 375–383 (1995) van Poppel G, van den Berg H. Vitamins and cancer. Cancer Lett. 114: 195–202 (1997) Jomova K, Valko M. Advances in metal-induced oxidative stress and human disease. Toxicology 283: 65–87 (2011) Firuzi O, Miri R, Tavakkoli M, Saso L. Antioxidant therapy: Current status and future prospects. Curr. Med. Chem. 18: 3871–3888 (2011) Awika JM, Rooney LW. Sorghum phytochemicals and their potential impact on human health. Phytochemistry 65: 1199–1221 (2004) Cuevas Montilla E, Hillebrand S, Antezana A, Winterhalter P. Soluble and bound phenolic compounds in different Bolivian purple corn (Zea mays L.) cultivars. J. Agr. Food Chem. 59: 7068–7074 (2011) Zilić S, Serpen A, Akıllıoğlu G, Gökmen V, Vančetović J. Phenolic compounds, carotenoids, anthocyanins, and antioxidant capacity of colored maize (Zea mays L.) kernels. J. Agr. Food Chem. 60: 1224–1231 (2012) Quinde-Axtell Z, Baik BK. Phenolic compounds of barley grain and their implication in food product discoloration. J. Agr. Food Chem. 54: 9978–9984 (2006) Gray AM, Flatt PR. Pancreatic and extra-pancreatic effects of the traditional anti-diabetic plant, Medicago sativa (lucerne). Brit. J. Nutr. 78: 325–334 (1997) Bora KS, Sharma A. Phytochemical and pharmacological potential of Medicago sativa: A review. Pharm. Biol. 49: 211–220 (2011) Halliwell B, Gutteridge JMC, Aruoma OI. The deoxyribose method: Simple “test-tube” assay for determination of rate constants for reactions of hydroxyl radicals. Anal. Biochem. 165: 215–219 (1987) Gotoh N, Niki E. Rates of interactions of superoxide with vitamin E, vitamin C, and related compounds as measured by chemiluminescence. Biochim. Biophys. Acta 1115: 201–207 (1992) Baek JA, Son YO, Fang M, Lee YJ, Cho HK, Whang WK, Lee JC. Catechin-7-O-β-d-glucopyranoside scavenges free radicals and protects human B lymphoma BJAB cells on H2O2-mediated oxidative stress. Food Sci. Biotechnol. 20: 151–158 (2011) Kook SH, Son YO, Choe Y, Kim JH, Jeon YM, Heo JS, Kim JG, Lee JC. Mechanical force augments the anti-osteoclastogenic potential of human gingival fibroblasts in vitro. J. Periodontal Res. 44: 402–410 (2009) Kujala TS, Loponen JM, Klika KD, Pihlaja K. Phenolics and betacyanins in red beetroot (Beta vulgaris) root: Distribution and effect of cold storage on the content of total phenolics and three individual compounds. J. Agr. Food Chem. 48: 5338–5342 (2000) Qawasmeh A, Obied HK, Raman A, Wheatley W. Influence of fungal endophyte infection on phenolic content and antioxidant activity in grasses: Interaction between Lolium perenne and different strains of Neotyphodium lolii. J. Agr. Food Chem. 60: 3381–3388 (2012) Hu C, Kitts DD. Studies on the antioxidant activity of Echinacea root extract. J. Agr. Food Chem. 48: 1466–1472 (2000) von Harsdorf R, Li PF, Dietz R. Signaling pathway in reactive oxygen species-induced cardiomyocyte apoptosis. Circulation 99: 2934–2941 (1999) Lee JC, Lim KT, Jang YS. Identification of Rhus verniciflua Stokes compounds that exhibit free radical scavenging and anti-apoptotic properties. Biochim. Biophys. Acta 1570: 181–191 (2002) Chan PC, Xia Q, Fu PP. Ginkgo biloba leave extract: Biological, medicinal, and toxicological effects. J. Environ. Sci. Heal. C 25: 211–244 (2007) Ferretti G, Bacchetti T, Belleggia A, Neri D. Cherry antioxidants: From farm to table. Molecules 15: 6993–7005 (2010) Izzi V, Masuelli L, Tresoldi I, Sacchetti P, Modesti A, Galvano F, Bei R. The effects of dietary flavonoids on the regulation of redox inflammatory networks. Front. Biosci. 17: 2396–2418 (2012) Yu JY, Kim JH, Kim TG, Kim BT, Jang YS, Lee JC. (E)-1-(3,4-Dihydroxyphenethyl)-3-styrylurea inhibits proliferation of MCF-7 cells through G1 cell cycle arrest and mitochondria-mediated apoptosis. Mol. Cell 30: 303–310 (2010) Choi KC, Chung WT, Kwon JK, Jang YS, Yu JY, Park SM, Lee JC. Chemoprevention of a flavonoid fraction from Rhus verniciflua Stokes on aflatoxin B1-induced hepatic damage in mice. J. Appl. Toxicol. 31: 150–156 (2011) Rice-Evans CA, Miller NJ, Paganga G. Structure-antioxidant activity relationships of flavonoids and phenolic acids. Free Radical Bio. Med. 20: 933–956 (1996) Kim SS, Son YO, Chun JC, Kim SE, Chung GH, Hwang KJ, Lee JC. Antioxidant property of an active component purified from the leaves of paraquat-tolerant Rehmannia glutinosa. Redox Rep. 10: 311–318 (2005) Stochmal A, Piacente S, Pizza C, De Riccardis F, Leitz R, Oleszek W. Alfalfa (Medicago sativa L.) flavonoids. 1. Apigenin and luteolin glycosides from aerial parts. J. Agr. Food Chem. 49: 753–758 (2001) Shukla S, Gupta S. Apigenin: A promising molecule for cancer prevention. Pharm. Res. 27: 962–978 (2010)