Nội dung được dịch bởi AI, chỉ mang tính chất tham khảo
Tiêm phân đoạn mạch tế bào stroma nguồn gốc mỡ sau khi thông tắc lõi và cấy ghép xương nhân tạo sinh hóa trong thiếu máu xương ở đầu xương đùi
Tóm tắt
Mục đích của nghiên cứu này là xác định cách thức tiêm phân đoạn mạch tế bào stroma nguồn gốc mỡ (SVF) sau khi thông tắc lõi (CD) và cấy ghép xương nhân tạo sinh hóa ảnh hưởng đến kết quả ở bệnh nhân mắc thiếu máu xương ở đầu xương đùi (ONFH). Tổng cộng có 19 bệnh nhân (28 hông) ở giai đoạn I-IIIA ONFH được tiêm SVF từ mỡ kết hợp với thông tắc lõi và cấy ghép xương nhân tạo sinh hóa, theo dõi trong ít nhất hai năm. Tiến triển bệnh được đánh giá theo hệ thống phân giai đoạn của Hiệp hội Nghiên cứu Tuần hoàn Xương (ARCO), và tỷ lệ khối lượng tổn thương hoại tử so với khối lượng đầu xương đùi được tính toán bằng MRI trước và sau phẫu thuật. Tại lần theo dõi cuối cùng, 15 hông vẫn ổn định, và 13 hông có sự tiến triển, theo hệ thống phân giai đoạn ARCO. Tổng cộng có tám hông (5 ở giai đoạn II ARCO và 3 ở giai đoạn IIIA khi bắt đầu) tiến triển đến giai đoạn sau sụp đổ (giai đoạn IIIB-IV). Trong tổng số đó, bảy hông trong giai đoạn sau sụp đổ và một hông ở giai đoạn IIIA tại lần theo dõi đã được chuyển đổi sang thay khớp háng toàn phần (THA) với thời gian trung bình là 17,5 tháng (từ 11 đến 68 tháng) sau phẫu thuật. Tỷ lệ trung bình của thể tích tổn thương hoại tử so với đầu xương đùi đã giảm đáng kể ở các hông ở giai đoạn I ARCO (17,9±3,0% xuống 9,8±1,3%, p=0,012, Δ tỷ lệ hoại tử=8,1±4,2%) và giai đoạn II (22,7±6,3% xuống 17,1±9,4%, p=0,001, Δ tỷ lệ hoại tử=5,7±6,6%) ở đầu. Đối với tám hông tiến triển đến giai đoạn sau sụp đổ, tỷ lệ hoại tử trung bình tăng từ 27,4±5,4% lên 31,1±4,0% (p=0,146), Δ tỷ lệ hoại tử=−3,7±3,9%. Đối với 20 hông khác vẫn sống sót trên hình ảnh, tỷ lệ hoại tử trung bình cải thiện từ 19,9±4,4% xuống 11,8±3,3% (p<0,001), với Δ tỷ lệ hoại tử=8,1±4,9%. Tiêm SVF từ mỡ sau khi thông tắc lõi và cấy ghép xương nhân tạo sinh hóa là an toàn và có thể phục hồi hiệu quả tổn thương hoại tử và làm chậm tiến triển bệnh ở bệnh nhân mắc ONFH giai đoạn đầu.
Từ khóa
#thiếu máu xương #tiêm SVF #cấy ghép xương nhân tạo #thông tắc lõi #hoại tử xương #giai đoạn ARCOTài liệu tham khảo
Mont MA, Hungerford DS (1995) Non-traumatic avascular necrosis of the femoral head. J Bone Joint Surg Am 77:459–474. https://doi.org/10.2106/00004623-199503000-00018
Lieberman JR (2004) Core decompression for osteonecrosis of the hip Clin Orthop Relat Res 29–33. https://doi.org/10.1097/00003086-200401000-00006
Hernigou P, Beaujean F (2002) Treatment of osteonecrosis with autologous bone marrow grafting Clin Orthop Relat Res 14–23. https://doi.org/10.1097/00003086-200212000-00003
Zuk PA, Zhu M, Mizuno H, Huang J, Futrell JW, Katz AJ, Benhaim P, Lorenz HP, Hedrick MH (2001) Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Eng 7:211–228. https://doi.org/10.1089/107632701300062859
Wyles CC, Houdek MT, Crespo-Diaz RJ, Norambuena GA, Stalboerger PG, Terzic A, Behfar A, Sierra RJ (2015) Adipose-derived mesenchymal stem cells are phenotypically superior for regeneration in the setting of osteonecrosis of the femoral head. Clin Orthop Relat Res 473:3080–3090. https://doi.org/10.1007/s11999-015-4385-8
Bourin P, Bunnell BA, Casteilla L, Dominici M, Katz AJ, March KL, Redl H, Rubin JP, Yoshimura K, Gimble JM (2013) Stromal cells from the adipose tissue-derived stromal vascular fraction and culture expanded adipose tissue-derived stromal/stem cells: a joint statement of the International Federation for Adipose Therapeutics and Science (IFATS) and the International Society for Cellular Therapy (ISCT). Cytotherapy 15:641–648. https://doi.org/10.1016/j.jcyt.2013.02.006
Fodor PB, Paulseth SG (2016) Adipose derived stromal cell (ADSC) injections for pain management of osteoarthritis in the human knee joint. Aesthet Surg J 36:229–236. https://doi.org/10.1093/asj/sjv135
Yokota N, Yamakawa M, Shirata T, Kimura T, Kaneshima H (2017) Clinical results following intra-articular injection of adipose-derived stromal vascular fraction cells in patients with osteoarthritis of the knee. Regen Ther 6:108–112. https://doi.org/10.1016/j.reth.2017.04.002
Yokota N, Hattori M, Ohtsuru T, Otsuji M, Lyman S, Shimomura K, Nakamura N (2019) Comparative clinical outcomes after intra-articular injection with adipose-derived cultured stem cells or noncultured stromal vascular fraction for the treatment of knee osteoarthritis. Am J Sports Med 47:2577–2583. https://doi.org/10.1177/0363546519864359
Hong Z, Chen J, Zhang S, Zhao C, Bi M, Chen X, Bi Q (2019) Intra-articular injection of autologous adipose-derived stromal vascular fractions for knee osteoarthritis: a double-blind randomized self-controlled trial. Int Orthop 43:1123–1134. https://doi.org/10.1007/s00264-018-4099-0
Gangji V, Hauzeur JP, Schoutens A, Hinsenkamp M, Appelboom T, Egrise D (2003) Abnormalities in the replicative capacity of osteoblastic cells in the proximal femur of patients with osteonecrosis of the femoral head. J Rheumatol 30:348–351
Hernigou P, Dubory A, Homma Y, Guissou I, FlouzatLachaniette CH, Chevallier N, Rouard H (2018) Cell therapy versus simultaneous contralateral decompression in symptomatic corticosteroid osteonecrosis: a thirty year follow-up prospective randomized study of one hundred and twenty five adult patients. Int Orthop 42:1639–1649. https://doi.org/10.1007/s00264-018-3941-8
Hauzeur JP, De Maertelaer V, Baudoux E, Malaise M, Beguin Y, Gangji V (2018) Inefficacy of autologous bone marrow concentrate in stage three osteonecrosis: a randomized controlled double-blind trial. Int Orthop 42:1429–1435. https://doi.org/10.1007/s00264-017-3650-8
Riddle DL, Stratford PW (2013) Unilateral vs bilateral symptomatic knee osteoarthritis: associations between pain intensity and function. Rheumatology (Oxford) 52:2229–2237. https://doi.org/10.1093/rheumatology/ket291
Yoon PW, Kang JY, Kim CH, Lee SJ, Yoo JJ, Kim HJ, Kang SK, Min JH, Yoon KS (2021) Culture-expanded autologous adipose-derived mesenchymal stem cell treatment for osteonecrosis of the femoral head. Clin Orthop Surg 13:37–46. https://doi.org/10.4055/cios20128
Nan K, Zhang Y, Zhang X, Li D, Zhao Y, Jing Z, Liu K, Shang D, Geng Z, Fan L (2021) Exosomes from miRNA-378-modified adipose-derived stem cells prevent glucocorticoid-induced osteonecrosis of the femoral head by enhancing angiogenesis and osteogenesis via targeting miR-378 negatively regulated suppressor of fused (Sufu). Stem Cell Res Ther 12:331. https://doi.org/10.1186/s13287-021-02390-x
Veronesi F, Maglio M, Tschon M, Aldini NN, Fini M (2014) Adipose-derived mesenchymal stem cells for cartilage tissue engineering: state-of-the-art in in vivo studies. J Biomed Mater Res A 102:2448–2466. https://doi.org/10.1002/jbm.a.34896
Wang X, Wang Y, Gou W, Lu Q, Peng J, Lu S (2013) Role of mesenchymal stem cells in bone regeneration and fracture repair: a review. Int Orthop 37:2491–2498. https://doi.org/10.1007/s00264-013-2059-2
Schiavone Panni A, Vasso M, Braile A, Toro G, De Cicco A, Viggiano D, Lepore F (2019) Preliminary results of autologous adipose-derived stem cells in early knee osteoarthritis: identification of a subpopulation with greater response. Int Orthop 43:7–13. https://doi.org/10.1007/s00264-018-4182-6
Natali S, Screpis D, Farinelli L, Iacono V, Vacca V, Gigante A, Zorzi C (2021) The use of intra-articular injection of autologous micro-fragmented adipose tissue as pain treatment for ankle osteoarthritis: a prospective not randomized clinical study. Int Orthop 45:2239–2244. https://doi.org/10.1007/s00264-021-05093-3
Lin K, Matsubara Y, Masuda Y, Togashi K, Ohno T, Tamura T, Toyoshima Y, Sugimachi K, Toyoda M, Marc H, Douglas A (2008) Characterization of adipose tissue-derived cells isolated with the celution system. Cytotherapy 10:417–426. https://doi.org/10.1080/14653240801982979